Дзякуй за наведванне Nature.com.Версія браўзера, якую вы выкарыстоўваеце, мае абмежаваную падтрымку CSS.Для найлепшага вопыту мы рэкамендуем вам выкарыстоўваць абноўлены браўзер (або адключыць рэжым сумяшчальнасці ў Internet Explorer).Тым часам, каб забяспечыць бесперапынную падтрымку, мы будзем візуалізаваць сайт без стыляў і JavaScript.
Некантралюемае крывацёк - адна з асноўных прычын смерці.Дасягненне хуткага гемастазу забяспечвае выжыванне суб'екта ў якасці першай дапамогі падчас баявых дзеянняў, дарожна-транспартных здарэнняў і аперацый па зніжэнні смяротнасці.Нанапорысты армаваны валокнамі кампазітны каркас (NFRCS), атрыманы з простай гемостаціческой плёнкаўтваральнай кампазіцыі (HFFC), як бесперапынная фаза, можа выклікаць і ўзмацніць гемастаз.Распрацоўка NFRCS заснавана на канструкцыі крыла страказы.Структура крыла страказы складаецца з папярочных і падоўжных крылаў, а мембраны крылаў злучаны паміж сабой для захавання цэласнасці мікраструктуры.HFFC раўнамерна пакрывае паверхню валакна плёнкай нанаметровай таўшчыні і злучае выпадкова размеркаваную таўшчыню бавоўны (Ct) (дысперсную фазу), утвараючы нанапорістую структуру.Спалучэнне бесперапыннай і дысперснай фаз зніжае кошт прадукту ў дзесяць разоў у параўнанні з прадукцыяй, даступнай у продажы.Мадыфікаваныя NFRCS (тампоны або бранзалеты) можна выкарыстоўваць у розных біямедыцынскіх мэтах.Даследаванні in vivo прыйшлі да высновы, што распрацаваны Cp NFRCS запускае і ўзмацняе працэс каагуляцыі ў месцы нанясення.NFRCS можа мадуляваць мікраасяроддзе і дзейнічаць на клеткавым узроўні дзякуючы сваёй нанапорыстай структуры, што прыводзіць да лепшага гаення ран у мадэлі эксцызійнай раны.
Некантралюемае крывацёк у баявых, интраоперационных і экстраных сітуацыях можа прадстаўляць сур'ёзную пагрозу для жыцця параненых1.Гэтыя стану ў далейшым прыводзяць да агульнага павышэнню перыферычнага судзінкавага супраціву, што прыводзіць да гемарагічнага шоку.Адпаведныя меры па спыненні крывацёку падчас і пасля аперацыі лічацца патэнцыйна небяспечнымі для жыцця2,3.Пашкоджанне буйных сасудаў прыводзіць да масіўнай страты крыві, што прыводзіць да смяротнасці ≤ 50% у баі і 31% падчас аперацыі1.Масіўная кровопотеря прыводзіць да памяншэння аб'ёму цела, што зніжае сардэчны выкід.Павышэнне агульнага перыферычнага судзінкавага супраціву і прагрэсавальнае парушэнне мікрацыркуляцыі прыводзяць да гіпаксіі ў органах жыццезабеспячэння.Гемарагічны шок можа ўзнікнуць, калі стан працягваецца без эфектыўнага ўмяшання1,4,5.Іншыя ўскладненні ўключаюць прагрэсаванне гіпатэрміі і метабалічнага ацыдоз, а таксама парушэнне згортвання крыві, якое перашкаджае працэсу згортвання.Цяжкі гемарагічны шок звязаны з больш высокай рызыкай смерці6,7,8.Пры шоку III ступені (прагрэсавальны) пераліванне крыві мае важнае значэнне для выжывання пацыента падчас интраоперационной і пасляаперацыйнай захворвання і смяротнасці.Каб пераадолець усе вышэйпералічаныя сітуацыі, якія пагражаюць жыццю, мы распрацавалі кампазітны каркас, армаваны нанапорістымі валокнамі (NFRCS), у якім выкарыстоўваецца мінімальная канцэнтрацыя палімера (0,5%) з выкарыстаннем камбінацыі вадараспушчальных гемастатычных палімераў.
З выкарыстаннем армавання валакном можна распрацоўваць эканамічна эфектыўныя прадукты.Хаатычна размешчаныя валакна нагадваюць структуру крыла страказы, ураўнаважанага гарызантальнымі і вертыкальнымі палосамі на крылах.Папярочныя і падоўжныя жылкі крыла паведамляюцца з крылавой перапонкай (мал. 1).NFRCS складаецца з узмоцненага Ct як сістэмы каркаса з лепшай фізічнай і механічнай трываласцю (малюнак 1).З-за даступнасці і майстэрства хірургі аддаюць перавагу выкарыстоўваць баваўняныя ніткі (Ct) падчас аперацый і перавязак. Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай цэлюлозы (дадае ўзмацнення гемастатычнага актыўнасці), Ct быў выкарыстаны ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай цэлюлозы (дадае ўзмацнення гемастатычнага актыўнасці), Ct быў выкарыстаны ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы яго шматлікавыя перавагі, у тым ліку > 90% крышталічнай целлюлозы (удзельнічае ў павышэнні гемостатической актыўнасці), Ct выкарыстоўвалі ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10. Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку >90% крышталічнай цэлюлозы (удзельнічае ў павышэнні гемастатычнага актыўнасці), Ct быў выкарыстаны ў якасці шкілетнай сістэмы NFRCS9,10.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止血活性，，Ct 被用作NFRCS9 ,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%Такім чынам, улічваючы яго шматлікія перавагі, у тым ліку больш за 90% крышталічнай цэлюлозы (дапамагае ўзмацніць гемостаціческое дзеянне), Ct быў выкарыстаны ў якасці каркаса для NFRCS9,10.Ct быў павярхоўна пакрыты (назіралася адукацыя нана-тоўстай плёнкі) і злучаны з гемостаціческое пленкообразующим складам (HFFC).HFFC дзейнічае як матрыгель, утрымліваючы выпадкова размешчаныя Ct разам.Распрацаваная канструкцыя перадае напружанне ў дысперснай фазе (армуючых валокнах).Цяжка атрымаць нанапорыстыя структуры з добрай механічнай трываласцю, выкарыстоўваючы мінімальныя канцэнтрацыі палімераў.Акрамя таго, няпроста наладзіць розныя формы для розных біямедыцынскіх прымянення.
На малюнку паказана схема канструкцыі NFRCS на аснове структуры крыла страказы (A).На гэтым малюнку паказана параўнальная аналогія будовы крыла страказы (перасякальныя і падоўжныя жылкі крыла злучаныя паміж сабой) і мікрафатаграфія папярочнага разрэзу Cp NFRCS (B).Схематычнае адлюстраванне NFRCS.
NFRC былі распрацаваны з выкарыстаннем HFFC у якасці бесперапыннай фазы для ліквідацыі вышэйзгаданых абмежаванняў.HFFC складаецца з розных плёнкавых гемастатычных палімераў, уключаючы хітазан (у якасці асноўнага гемастатычнага палімера) з метылацэлюлозай (MC), гидроксипропилметилцеллюлозой (HPMC 50 cp) і полівінілавым спіртам (PVA)) (125 кДа) у якасці апорнага палімера, які спрыяе адукацыі тромбаў.фарміраванне.Даданне полівінілпіралідзіну K30 (PVP K30) палепшыла здольнасць NFRCS да паглынання вільгаці.Поліэтыленгліколь 400 (PEG 400) быў дададзены для паляпшэння сшывання палімераў у звязаных палімерных сумесях.Тры розныя гемастатычныя кампазіцыі HFFC (Cm HFFC, Ch HFFC і Cp HFFC), а менавіта хитозан з MC (Cm), хитозан з HPMC (Ch) і хитозан з PVA (Cp), былі ўжытыя да Ct.Розныя даследаванні характарыстык in vitro і in vivo пацвердзілі гемостаціческое і ранозажыўляюшчае дзеянне NFRCS.Кампазітныя матэрыялы, прапанаваныя NFRCS, могуць быць выкарыстаны для адаптацыі розных формаў будаўнічых лясоў у адпаведнасці з канкрэтнымі патрэбамі.
Акрамя таго, NFRCS можа быць мадыфікаваны ў выглядзе бінта або рулона, каб пакрыць усю вобласць пашкоджання ніжніх канечнасцяў і іншых частак цела.Спецыяльна для баявых траўмаў канечнасцяў распрацаваную канструкцыю NFRCS можна змяніць на палову рукі або ўсю нагу (дадатковы малюнак S11).NFRCS можа быць зроблены ў бранзалет з клеем для тканак, які можа быць выкарыстаны для спынення крывацёку з цяжкіх суіцыдальных траўмаў запясця.Наша галоўная мэта складаецца ў тым, каб распрацаваць NFRCS з як мага меншай колькасцю палімера, які можа быць дастаўлены вялікай колькасці насельніцтва (за рысай беднасці) і які можна змясціць у аптэчку першай дапамогі.Просты, эфектыўны і эканамічны па сваёй канструкцыі NFRCS прыносіць карысць мясцовым супольнасцям і можа мець глабальны ўплыў.
Хитозан (малекулярная маса 80 кДа) і амарант былі набыты ў Merck, Індыя.Гидроксипропилметилцеллюлоза 50 Cp, поліэтыленгліколь 400 і метылцэлюлоза былі набыты ў Loba Chemie Pvt.ТАА, Мумбаі.Полівінілавы спірт (малекулярная маса 125 кДа) (гідралізаваны на 87-90%) быў набыты ў National Chemicals, Гуджарат.Полівінілпіралідзін K30 быў набыты ў Molychem, Мумбаі, стэрыльныя тампоны былі набыты ў Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd., Таміл Наду, з вадой Milli Q (сістэма ачысткі вады Direct-Q3, Merck, Індыя) у якасці носьбіта.
NFRCS быў распрацаваны з выкарыстаннем метаду лиофилизации11,12.Усе кампазіцыі HFFC (табл. 1) былі падрыхтаваны з дапамогай механічнай мешалкі.Рыхтуюць 0,5% раствор хитозана з дапамогай 1% раствора воцатнай кіслаты ў вадзе бесперапынным мяшаннем пры 800 аб / мін на механічнай мешалцы.Дакладны вага загружанага палімера, паказаны ў табліцы 1, дадаваўся да раствора хитозана і змешваўся да атрымання празрыстага раствора палімера.Да атрыманай сумесі дабаўлялі PVP K30 і PEG 400 у колькасцях, указаных у табліцы 1, і працягвалі перамешванне да атрымання празрыстага глейкага раствора палімера.Атрыманую ванну палімернага раствора апрацоўвалі ультрагукам на працягу 60 хвілін, каб выдаліць захопленыя бурбалкі паветра з палімернай сумесі.Як паказана на дадатковым малюнку S1(b), Ct быў раўнамерна размеркаваны ў кожнай лунцы 6-лункавага пласціны (формы), дапоўненай 5 мл HFFC.
Шасцілункавы пласціну апрацоўвалі ультрагукам на працягу 60 хвілін для дасягнення раўнамернага змочвання і размеркавання HFFC ў сетцы Ct.Затым замарозьце шасцілункавы пласціну пры -20°C на 8-12 гадзін.Пласціны для замарожвання ліяфілізавалі на працягу 48 гадзін, каб атрымаць розныя склады NFRCS.Тая ж працэдура выкарыстоўваецца для вырабу розных формаў і структур, такіх як тампоны або цыліндрычныя тампоны, або любой іншай формы для рознага прымянення.
Дакладна ўзважаны хитозан (80 кДа) (3%) раствараюць у 1% воцатнай кіслаце з дапамогай магнітнай мешалкі.Да атрыманага раствору хитозана дадаюць 1% ПЭГ 400 і змешваюць на працягу 30 хвілін.Пераліце ​​атрыманы раствор у квадратную або прастакутную ёмістасць і замарозьце пры -80°C на 12 гадзін.Замарожаныя ўзоры лиофилизировали на працягу 48 гадзін для атрымання порыстага Cs13.
Распрацаваны NFRCS быў падвергнуты эксперыментам з выкарыстаннем інфрачырвонай спектраскапіі з пераўтварэннем Фур'е (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Токіо, Японія), каб пацвердзіць хімічную сумяшчальнасць хитозана з іншымі палімерамі14,15.Спектры FTIR (шырыня спектральнага дыяпазону ад 400 да 4000 см-1) усіх доследных узораў былі атрыманы шляхам выканання 32 сканаванняў.
Хуткасць паглынання крыві (BAR) для ўсіх складаў ацэньвалі з дапамогай метаду, апісанага Chen et al.16 з невялікімі зменамі.Распрацаваныя NFRK усіх кампазіцый сушылі ў вакуумнай печы пры 105 ° C на працягу ночы для выдалення рэшткаў растваральніка.30 мг NFRCS (пачатковая маса ўзору - W0) і 30 мг Ct (станоўчы кантроль) былі змешчаны ў асобныя стравы, якія змяшчаюць прэмікс 3,8% цытрата натрыю.Праз зададзеныя прамежкі часу, г.зн. праз 5, 10, 20, 30, 40 і 60 секунд, NFRCS выдалялі, а іх паверхні ачышчалі ад неабсорбаванай крыві шляхам размяшчэння ўзораў на Ct на 30 секунд.Канчатковы вага крыві, паглынутай NFRCS 16, лічыўся (W1) у кожны момант часу.Разлічыце працэнт BAR па наступнай формуле:
Час згортвання крыві (BCT) вызначалі, як паведамляюць Wang et al.17 .Час, неабходны для згортвання суцэльнай крыві (крыві пацукоў, папярэдне змешанай з 3,8% цытрата натрыю) у прысутнасці NFRCS, разлічвалі як BCT доследнага ўзору.Розныя кампаненты NFRCS (30 мг) змяшчалі ў флаконы з закручваецца вечкам па 10 мл і інкубавалі пры 37°C.У флакон дадаюць кроў (0,5 мл) і дадаюць 0,3 мл 0,2 М CaCl2 для актывацыі згортвання крыві.Нарэшце, перагортвайце флакон кожныя 15 секунд (да 180°), пакуль не ўтворыцца цвёрды згустак.BCT ўзору ацэньваецца па колькасці перагортвання vails17,18.На аснове BCT былі абраны дзве аптымальныя кампазіцыі з NFRCS Cm, Ch і Cp для далейшых даследаванняў характарыстык.
BCT Ch NFRCS і Cp NFRCS кампазіцый вызначалі шляхам прымянення метаду, апісанага Li et al.19 .Змесціце 15 х 15 мм2 Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs (станоўчы кантроль) у асобныя чашкі Петры (37 °C).Кроў, якая змяшчае 3,8% цытрата натрыю, змешваюць з 0,2 М CaCl2 у аб'ёмным суадносінах 10:1, каб пачаць працэс згортвання крыві.20 мкл сумесі крыві пацукі 0,2 М CaCl2 наносілі на паверхню ўзору і змяшчалі ў пустую чашку Петры.Кантролем была кроў, налітая ў пустыя чашкі Петры без Ct.Праз фіксаваныя інтэрвалы ў 0, 3 і 5 хвілін спыняйце згортванне, дадаючы 10 мл дэіянізаванай (DI) вады ў пробу, якая змяшчае посуд, не парушаючы згустак.Некоагулированные эрытрацыты (эрытрацыты) падвяргаюцца гемолізу ў прысутнасці деионизированной вады і вызваляюць гемаглабін.Гемаглабін у розныя моманты часу (HA(t)) вымяралі пры 540 нм (λmax гемаглабіну) з дапамогай спектрафатометра UV-Vis.За эталон прымалі абсалютнае паглынанне гемаглабіну (AH(0)) за 0 мін 20 мкл крыві ў 10 мл дэіянізаванай вады.Адноснае паглынанне гемаглабіну (RHA) каагуляванай крыві разлічвалі па суадносінах HA(t)/HA(0) з выкарыстаннем той жа партыі крыві.
З дапамогай аналізатара тэкстуры (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Брукфілд, ЗША) вызначалі адгезійныя ўласцівасці НФРК да пашкоджанай тканіны.Прыцісніце цыліндрычны посуд з адкрытым дном да ўнутранай паверхні свіной скуры (без пласта тлушчу).Узоры (Ch NFRCS і Cp NFRCS) наносілі з дапамогай канюлі ў цыліндрычныя формы для стварэння адгезіі да скуры свінні.Пасля 3-хвіліннай інкубацыі пры пакаёвай тэмпературы (RT) (25°C) трываласць адгезіі NFRCS была зафіксавана з пастаяннай хуткасцю 0,5 мм/сек.
Галоўнай асаблівасцю хірургічных герметыкаў з'яўляецца павышэнне згусальнасці крыві пры памяншэнні кровастраты.Каагуляцыю без страт пры NFRCS ацэньвалі з выкарыстаннем раней апублікаванага метаду з невялікімі мадыфікацыямі 19 .Зрабіце мікрацэнтрыфужную прабірку (2 мл) (унутраны дыяметр 10 мм) з адтулінай 8 × 5 мм2 на адным баку цэнтрыфужнай прабіркі (якая ўяўляе сабой адкрытую рану).NFRCS выкарыстоўваецца для закрыцця адтуліны, а стужка выкарыстоўваецца для герметызацыі вонкавых краёў.Дадайце 20 мкл 0,2 М CaCl2 у мікрацэнтрыфужную прабірку, якая змяшчае 3,8% прэмікс цытрата натрыю.Праз 10 хвілін микроцентрифужные прабіркі вымалі з посуду і вызначалі павелічэнне масы посуду за кошт адтоку крыві з НФРК (n = 3).Кровапотерю Ch NFRCS і Cp NFRCS параўноўвалі з Cs.
Мокрая цэласнасць NFRCS была вызначана на аснове метаду, апісанага Mishra і Chaudhary21 з невялікімі мадыфікацыямі.Змесціце NFRCS у колбу Эрленмейера аб'ёмам 100 мл з 50 мл вады і круціце на працягу 60 с, не даючы верху.Візуальны агляд і вызначэнне прыярытэту фізічнай цэласнасці ўзораў на аснове збору.
Трываласць звязвання HFFC з Ct была вывучана з выкарыстаннем раней апублікаваных метадаў з невялікімі мадыфікацыямі.Цэласнасць павярхоўнага пакрыцця ацэньвалася шляхам уздзеяння NFRK на акустычныя хвалі (знешні раздражняльнік) у прысутнасці вады milliQ (Ct).Распрацаваныя NFRCS Ch NFRCS і Cp NFRCS былі змешчаны ў шклянку, напоўнены вадой, і апрацаваны ультрагукам на працягу 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 і 30 хвілін адпаведна.Пасля сушкі працэнтная розніца паміж пачатковай і канчатковай масай NFRCS выкарыстоўвалася для разліку працэнтнай страты матэрыялу (HFFC).In vitro BCT дадаткова падтрымліваў трываласць звязвання або страту матэрыялаў паверхні.Эфектыўнасць звязвання HFFC з Ct забяспечвае згусальнасць крыві і эластычнае пакрыццё на паверхні Ct22.
Аднастайнасць распрацаванай NFRCS была вызначана BCT узораў (30 мг), узятых з выпадкова выбраных агульных месцаў NFRCS.Выканайце згаданую раней працэдуру BCT, каб вызначыць адпаведнасць NFRCS.Блізкасць паміж усімі пяццю ўзорамі забяспечвае раўнамернае пакрыццё паверхні і адклад HFFC у сетцы Ct.
Намінальная плошча кантакту з крывёй (NBCA) была вызначана, як паведамлялася раней, з некаторымі мадыфікацыямі.Згортвайце кроў, заціснуўшы 20 мкл крыві паміж двума паверхнямі Ct, Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs.Праз 1 гадзіну дзве часткі стэнты падзялілі і ўручную вымералі плошчу згустку.Сярэдняе значэнне трох паўтораў лічылася NBCA NFRCS19.
Аналіз дынамічнай сорбцыі пароў (DVS) быў выкарыстаны для ацэнкі эфектыўнасці NFRCS для паглынання вады з вонкавага асяроддзя або з месца пашкоджання, адказнага за пачатак каагуляцыі.DVS ацэньвае або запісвае паглынанне і страты пары ва ўзоры гравіметрычна з дапамогай звышадчувальных вагаў з дазволам па масе ±0,1 мкг.Парцыяльны ціск пары (адносная вільготнасць) ствараецца электронным кантролерам масавага расходу вакол узору шляхам змешвання насычаных і сухіх газаў-носьбітаў. У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі, на аснове адсотка паглынання вільгаці ўзорамі, узоры былі падзелены на 4 катэгорыі (0–0,012% мас./мас. − негіграскапічныя, 0,2–2% мас./мас. злёгку гіграскапічныя, 2–15% умерана гіграскапічныя і > 15% вельмі гіграскапічныя)23. У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі, на аснове адсотка паглынання вільгаці ўзорамі, узоры былі падзелены на 4 катэгорыі (0–0,012% мас./мас. − негіграскапічныя, 0,2–2% мас./мас. злёгку гіграскапічныя, 2–15% умерана гіграскапічныя і > 15% вельмі гіграскапічныя)23.У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі ў залежнасці ад працэнта паглынання вільгаці ўзорамі ўзоры былі падзелены на 4 катэгорыі (0-0,012% мас. – негіграскапічныя, 0,2-2% мас./мас. слабагіграскапічныя, 2-15 %).% умерана гіграскапічны і > 15% вельмі гіграскапічны)23. % умерана гіграскапічным і > 15% вельмі гіграскапічным)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0,012% w/w- 非吸湿性、0,2-2% w/w /w 轻微吸湿性、2-15 % 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23。.根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分为 分为 分为 类 （（0-0,012% W/w- 吸湿 性 、 、 、 、 0,2-2% вагі 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15 %非常吸湿）23。У адпаведнасці з рэкамендацыямі Еўрапейскай фармакапеі ўзоры дзеляць на 4 класа ў залежнасці ад працэнта вільгаці, паглынутага пробай (0-0,012% па масе - негіграскапічныя, 0,2-2% па масе слабагіграскапічныя, 2-15% па масе).% умерана гіграскапічны, > 15 % вельмі гіграскапічны) 23. % умерана гіграскапічны, > 15% вельмі гіграскапічны) 23.Гіграскапічную эфектыўнасць NFCS X NFCS і ЦН NFCS вызначалі на аналізатары DVS TA TGA Q5000 SA.Падчас гэтага працэсу былі атрыманы час працы, адносная вільготнасць (RH) і вага ўзору ў рэальным часе пры 25°C24.Утрыманне вільгаці разлічваецца шляхам дакладнага аналізу масы NFRCS з выкарыстаннем наступнага ўраўнення:
MC - вільготнасць NFRCS.m1 – сухая маса НПВС.m2 - маса NFRCS у рэальным часе пры дадзенай адноснай вільготнасці.
Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту з вадкім азотам пасля апаражнення узораў пры 25 °C на працягу 10 гадзін (<7 × 10–3 Torr). Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту з вадкім азотам пасля апаражнення узораў пры 25 °C на працягу 10 гадзін (<7 × 10–3 Torr). Агульная плошча паверхні ацэньвалася з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту вадкім азотам пасля апаражэння ўзораў пры 25 °С на працягу 10 гадзін (< 7 × 10–3 Торр). Агульная плошча паверхні была ацэненая з дапамогай эксперыменту па адсорбцыі азоту з вадкім азотам пасля таго, як ўзоры былі спустошаны пры 25 ° C на працягу 10 гадзін (<7 × 10–3 Torr).Тэмпература да 25°C пры 10 градусах (< 7 × 10-3 Тор)Тэмпература да 25°C Агульная плошча паверхні ацэньвалася з выкарыстаннем эксперыментаў па адсорбцыі азоту жыдкім азотам пасля апаражэння пробаў на працягу 10 гадзін пры 25°C (< 7 × 10-3 торр). Агульная плошча паверхні была ацэненая з выкарыстаннем эксперыментаў па адсорбцыі азоту з вадкім азотам пасля таго, як узоры апаражняліся на працягу 10 гадзін пры 25°C (<7 х 10-3 тор).Агульная плошча паверхні, аб'ём пор і памер пор NFRCS вызначаліся з дапамогай Quantachrome ад NOVA 1000e, Аўстрыя, з выкарыстаннем праграмнага забеспячэння RS 232.
Прыгатуйце 5% эрытрацытаў (фізічны раствор у якасці растваральніка) з суцэльнай крыві.Затым перанясіце аліквоту HFFC (0,25 мл) у 96-лункавы пласціну і 5% масы эрытрацытаў (0,1 мл).Інкубуйце сумесь пры 37°C на працягу 40 хвілін.Сумесь эрытрацытаў і сыроваткі лічылася станоўчым кантролем, а сумесь фізіялагічнага раствора і эрытрацытаў - адмоўным кантролем.Гемагглютинацию вызначалі па шкале Стажицкого.Прапанаваныя маштабы наступныя: + + + + шчыльныя крупчастыя агрэгаты;+ + + гладкія ніжнія калодкі з загнутымі бакамі;+ + гладкія ніжнія калодкі з ірванымі бакамі;+ вузкія чырвоныя кольцы па краях гладкіх падушачак;– (адмоўны) дыскрэтная чырвоная кнопка 12 у цэнтры ніжняга калодзежа.
Гемосовместимость NFRCS вывучалася па методыцы Міжнароднай арганізацыі па стандартызацыі (ISO) (ISO10993-4, 1999)26,27.Гравіметрычны метад, апісаны Сінгхам і інш.Нязначныя мадыфікацыі былі зроблены для ацэнкі адукацыі тромбаў у прысутнасці або на паверхні NFRCS.500 мг Cs, Ch NFRCS і Cp NFRCS інкубавалі ў фасфатным буферным растворы (PBS) на працягу 24 гадзін пры 37°C.Праз 24 гадзіны PBS выдалялі, а NFRCS апрацоўвалі 2 мл крыві, якая змяшчае 3,8% цытрата натрыю.На паверхні NFRCS дадайце 0,04 мл 0,1 М CaCl2 да інкубаваных узораў.Праз 45 хвілін дадаюць 5 мл дыстыляванай вады для спынення каагуляцыі.Згарнула кроў на паверхні НФРК апрацоўвалі 36-38% растворам фармальдэгіду.Згусткі, фіксаваныя фармальдэгідам, высушвалі і ўзважвалі.Працэнт тромбаўтварэння ацэньвалі шляхам разліку масы шклянкі без крыві і пробы (адмоўны кантроль) і шклянкі з крывёй (станоўчы кантроль).
У якасці першапачатковага пацверджання ўзоры былі візуалізаваны пад аптычным мікраскопам, каб зразумець здольнасць павярхоўнага пакрыцця HFFC, узаемазвязанага Ct і сеткі Ct утвараць пары.Тонкія зрэзы Ch і Cp з NFRCS былі абрэзаны лязом скальпеля.Атрыманы зрэз змяшчалі на прадметнае шкло, накрывалі покрыўным шклом і фіксавалі краю клеем.Падрыхтаваныя слайды праглядалі пад аптычным мікраскопам і рабілі фатаграфіі з розным павелічэннем.
Адклад палімера ў сетках Ct візуалізавалі з дапамогай флуарэсцэнтнай мікраскапіі на аснове метаду, апісанага Райсам і інш.29. Кампазіцыю HFFC, якая выкарыстоўвалася для рэцэптуры, змешвалі з флуоресцентным фарбавальнікам (амарант), а NFRCS (Ch & Cp) рыхтавалі ў адпаведнасці з метадам, згаданым раней. Кампазіцыю HFFC, якая выкарыстоўвалася для рэцэптуры, змешвалі з флуоресцентным фарбавальнікам (амарант), а NFRCS (Ch & Cp) рыхтавалі ў адпаведнасці з метадам, згаданым раней.Кампазіцыю HFFC, якая выкарыстоўвалася для падрыхтоўкі, змешвалі з флуоресцентным фарбавальнікам (амарант) і NFRCS (Ch і Cp) атрымлівалі ў адпаведнасці з раней згаданым метадам.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的方法制备NFRCS（Ch & Cp）。将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的方法制备NFRCS（Ch & Cp）。Кампазіцыю HFFC, выкарыстаную ў рэцэптуры, змешвалі з флуоресцентным фарбавальнікам (амарант) і атрымлівалі NFRCS (Ch і Cp), як згадвалася раней.З атрыманых узораў выразалі тонкія зрэзы НФРК, змяшчалі на прадметныя шкла і накрывалі покрыўнымі шкламі.Назірайце падрыхтаваныя прадметныя шкла пад люмінесцэнтным мікраскопам з выкарыстаннем зялёнага фільтра (310-380 нм).Выявы былі зроблены пры 4-кратным павелічэнні, каб зразумець ўзаемасувязь Ct і залішняе адкладанне палімера ў сетцы Ct.
Рэльеф паверхні NFRCS Ch і Cp вызначалі з дапамогай атамна-сілавога мікраскопа (АСМ) са звышрэзкай кансолью TESP у рэжыме націскання: 42 Н/м, 320 кГц, ROC 2-5 нм, Bruker, Тайвань.Шурпатасць паверхні вызначалася сярэднеквадратычным (RMS) з дапамогай праграмнага забеспячэння (Scanning Probe Image Processor).Розныя месцы NFRCS былі адлюстраваны на 3D-малюнках, каб праверыць аднастайнасць паверхні.Стандартнае адхіленне адзнакі для дадзенай вобласці вызначаецца як шурпатасць паверхні.Ураўненне RMS выкарыстоўвалася для колькаснага вызначэння шурпатасці паверхні NFRCS31.
Даследаванні на аснове FESEM былі праведзены з выкарыстаннем FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Tokyo, каб зразумець марфалогію паверхні Ch NFRCS і Cp NFRCS, якія паказалі лепшы BCT, чым Cm NFRCS.Даследаванне FESEM праводзілася па методыцы, апісанай Zhao et al.32 з невялікімі зменамі.NFRCS Ад 20 да 30 мг Ch NFRCS і Cp NFRCS былі папярэдне змешаны з 20 мкл 3,8% цытрата натрыю, папярэдне змешанага з крывёй пацукоў.20 мкл 0,2 М CaCl2 дадавалі да апрацаваных узораў крыві, каб ініцыяваць каагуляцыю, і ўзоры інкубавалі пры пакаёвай тэмпературы на працягу 10 хвілін.Акрамя таго, лішак эрытрацытаў выдалялі з паверхні NFRCS шляхам прамывання фізіялагічным растворам.
Наступныя ўзоры апрацоўвалі 0,1% глутаральдэгідам і затым сушылі ў духоўцы з гарачым паветрам пры 37°C для выдалення вільгаці.Высушаныя ўзоры пакрывалі і аналізавалі 32 .Іншыя выявы, атрыманыя падчас аналізу, - гэта адукацыя згустку на паверхні асобных валокнаў бавоўны, адклад палімера паміж Ct, марфалогія (форма) эрытрацытаў, цэласнасць згустку і марфалогія эрытрацытаў у прысутнасці NFRCS.Неапрацаваныя ўчасткі NFRCS і ўчасткі NFRCS, апрацаваныя Ch і Cp, інкубаваныя з крывёю, былі сканаваныя на элементарныя іёны (натрый, калій, азот, кальцый, магній, цынк, медзь і селен)33.Параўнайце працэнты элементарных іёнаў паміж апрацаванымі і неапрацаванымі ўзорамі, каб зразумець назапашванне элементарных іёнаў падчас адукацыі згустку і аднастайнасць згустку.
Таўшчыня павярхоўнага пакрыцця Cp HFFC на паверхні Ct была вызначана з дапамогай FESEM.Папярочныя зрэзы Cp NFRCS былі выразаны з каркаса і пакрытыя напыленнем.Атрыманыя ўзоры напыленага пакрыцця назіраліся з дапамогай FESEM і вымяралася таўшчыня павярхоўнага пакрыцця 34, 35, 36.
Рэнтгенаўскі мікра-КТ забяспечвае 3D неразбуральны малюнак з высокім дазволам і дазваляе вывучаць ўнутранае структурнае размяшчэнне НФРК.Мікра-КТ выкарыстоўвае рэнтгенаўскі прамень, які праходзіць праз узор, для запісу лакальнага лінейнага каэфіцыента паслаблення рэнтгенаўскага выпраменьвання ва ўзоры, што дапамагае атрымаць марфалагічную інфармацыю.Унутранае размяшчэнне Ct у Cp NFRCS і апрацаванай крыві Cp NFRCS было даследавана з дапамогай мікра-КТ, каб зразумець эфектыўнасць паглынання і згусальнасць крыві ў прысутнасці NFRCS37,38,39.3D-структуры апрацаваных і неапрацаваных узораў Cp NFRCS былі рэканструяваны з дапамогай мікра-КТ (V|tome|x S240, Phoenix, Германія).З дапамогай праграмнага забеспячэння VG STUDIO-MAX версіі 2.2 было зроблена некалькі рэнтгенаўскіх здымкаў з розных вуглоў (у ідэале з ахопам 360°) для стварэння 3D-выяў для NFRCS.Сабраныя дадзеныя праекцыі былі рэканструяваны ў 3D-аб'ёмныя выявы з дапамогай адпаведнага простага праграмнага забеспячэння 3D ScanIP Academic.
Акрамя таго, каб зразумець размеркаванне згустку, 20 мкл папярэдняй цытратнай крыві і 20 мкл 0,2 М CaCl2 былі дададзены ў NFRCS для ініцыяцыі згортвання крыві.Падрыхтаваныя ўзоры пакідаюць застываць.Паверхню NFRK апрацоўвалі 0,5% глутаральдегидом і сушылі ў духоўцы з гарачым паветрам пры 30-40 ° C на працягу 30 хвілін.Згустак крыві, які ўтварыўся на NFRCS, быў адсканаваны, рэканструяваны і візуалізавана 3D-малюнак тромба.
Антыбактэрыйныя аналізы праводзіліся на Cp NFRCS (лепш за ўсё ў параўнанні з Ch NFRCS) з выкарыстаннем раней апісанага метаду з невялікімі мадыфікацыямі.Антыбактэрыйную актыўнасць Cp NFRCS і Cp HFFC вызначалі з выкарыстаннем трох розных тэст-мікраарганізмаў [S.aureus (грамположительные бактэрыі), E.coli (грамотріцательных бактэрыі) і белая Candida (C.albicans)], якія растуць на агары ў чашках Петры ў інкубатары.На агаризованное асяроддзе раўнамерна пасеяць 50 мл разведзенай завісі бактэрыяльнай культуры ў канцэнтрацыі 105-106 КОЕ мл-1.Выліце асяроддзе ў чашку Петры і дайце яму застыць.На паверхні пласціны з агарам былі зроблены лункі для запаўнення HFFC (3 лункі для HFFC і 1 для адмоўнага кантролю).Дадайце 200 мкл HFFC у 3 лункі і 200 мкл pH 7,4 PBS у 4-ю лунку.З іншага боку кубкі Петры пастаўце 12-міліметровы дыск Cp NFRCS на застылы агар і намочыце PBS (pH 7,4).Таблеткі цыпрафлаксацыну, ампіцыліну і флуканазолаў лічацца стандартамі для залацістага стафілакока, кішачнай палачкі і Candida albicans.Вымерайце зону забароны ўручную і зрабіце лічбавы здымак зоны забароны.
Пасля інстытуцыйнага этычнага адабрэння даследаванне было праведзена ў Медыцынскім каледжы адукацыі і даследаванняў Кастурба ў Маніпале, штат Карнатака, на поўдні Індыі.Эксперыментальны пратакол TEG in vitro быў разгледжаны і зацверджаны Інстытуцыйным камітэтам па этыцы медыцынскага каледжа Кастурба, Маніпал, Карнатака (IEC: 674/2020).Суб'екты былі набраны з ліку добраахвотных донараў крыві (ва ўзросце ад 18 да 55 гадоў) з банка крыві бальніцы.Акрамя таго, была атрымана форма інфармаванай згоды ад добраахвотнікаў на збор узораў крыві.Натыўны TEG (N-TEG) ​​быў выкарыстаны для вывучэння ўплыву прэпарата Cp HFFC на суцэльную кроў, папярэдне змешаную з цытратам натрыю.N-TEG шырока прызнаны сваёй роляй у рэанімацыі на месцы медыцынскай дапамогі, што стварае праблемы для клініцыстаў з-за магчымасці клінічна значнай затрымкі вынікаў (руцінныя тэсты на каагуляцыю).Аналіз N-TEG праводзіўся з выкарыстаннем суцэльнай крыві.Інфармаваная згода і падрабязная гісторыя хваробы былі атрыманы ад усіх удзельнікаў.Даследаванне не ўключала ўдзельнікаў з гемастатычнымі або тромбатычнымі ўскладненнямі, такімі як цяжарнасць / пасля родаў або захворванні печані.Суб'екты, якія прымаюць прэпараты, якія ўплываюць на каскад каагуляцыі, таксама былі выключаны з даследавання.Асноўныя лабараторныя аналізы (гемаглабін, протромбиновое час, актываваны тромбапластын і колькасць трамбацытаў) былі выкананы ўсім удзельнікам у адпаведнасці са стандартнымі працэдурамі.N-TEG вызначае вязкаэластычнасць згустку крыві, пачатковую структуру згустку, узаемадзеянне часціц, умацаванне згустку і лізіс згустку.Аналіз N-TEG дае графічныя і лікавыя дадзеныя аб сукупным уздзеянні некалькіх клетачных элементаў і плазмы.Аналіз N-TEG праводзіўся на двух розных аб'ёмах Cp HFFC (10 мкл і 50 мкл).У выніку да 10 мкл Cp HFFC дадаюць 1 мл суцэльнай крыві з цытрынавай кіслатой.Дадайце 1 мл (Cp HFFC + цытратная кроў), 340 мкл змешанай крыві ў 20 мкл 0,2 М CaCl2, які змяшчае ТЭГ.Пасля гэтага чашкі для ТЭГ загружалі ў TEG® 5000, ЗША для вымярэння R, K, вугла альфа, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30% узораў крыві ў прысутнасці Cp HFFC41.
Пратакол даследавання in vivo быў разгледжаны і зацверджаны Інстытуцыйным камітэтам па этыцы жывёл (IAEC), Медыцынская школа Кастурба, Інстытут вышэйшай адукацыі Маніпал, Маніпал (IAEC/KMC/69/2020).Усе эксперыменты на жывёл праводзіліся ў адпаведнасці з рэкамендацыямі Камітэта па кантролі і наглядзе за эксперыментамі на жывёл (CPCSEA).Усе даследаванні NFRCS in vivo (2 × 2 см2) праводзіліся на самках пацукоў Wistar (вагой ад 200 да 250 г).Усе жывёлы акліматызаваліся пры тэмпературы 24-26 ° С, жывёлы мелі вольны доступ да стандартнага корму і вадзе ad libitum.Усе жывёлы былі выпадковым чынам падзеленыя на розныя групы, кожная група складалася з трох жывёл.Усе даследаванні праводзіліся ў адпаведнасці з Даследаваннямі на жывёл: справаздача аб эксперыментах in vivo 43.Перад даследаваннем жывёл анестэзіравалі шляхам внутрибрюшинного (IP) сумесі 20-50 мг кетамін (на 1 кг масы цела) і 2-10 мг ксилазина (на 1 кг масы цела).Пасля даследавання аб'ём крывацёку разлічвалі шляхам ацэнкі розніцы паміж пачатковай і канчатковай масай узораў, за аб'ём крывацёку ўзору прымалі сярэдняе значэнне, атрыманае з трох пробаў.
Мадэль ампутацыі пацучынага хваста была рэалізавана, каб зразумець патэнцыял NFRCS для мадуляцыі крывацёку пры траўмах, баях або дарожна-транспартных здарэннях (мадэль пашкоджанняў).Адрэжце лязом скальпеля 50% хваста і пастаўце на паветра на 15 секунд, каб забяспечыць нармальнае крывацёк.Акрамя таго, тэставыя ўзоры былі змешчаны на хвост пацукі шляхам прымянення ціску (Ct, Cs, Ch NFRCS і Cp NFRCS).Крывацёк і ПКТ былі зарэгістраваныя для доследных узораў (n = 3)17,45.
Эфектыўнасць кантролю ціску NFRCS ў баі даследавалася на мадэлі павярхоўнай сцегнавой артэрыі.Сцегнавую артэрыю выкрываюць, пункціруюць троакар 24G і пускаюць кроў на працягу 15 секунд.Пасля назірання некантралюемага крывацёку доследны ўзор змяшчаюць на месца праколу з націскам.Адразу пасля нанясення доследнага ўзору рэгістравалі час згортвання і на працягу наступных 5 хвілін назіралі гемостаціческое эфектыўнасць.Тая ж працэдура паўтаралася з Cs і Ct46.
Даўлінг і інш.47 прапанавалі мадэль пашкоджання печані для ацэнкі гемастатычнага патэнцыялу гемостаціческое матэрыялаў у кантэксце интраоперационного крывацёку.BCT быў запісаны для узораў Ct (адмоўны кантроль), каркаса Cs (станоўчы кантроль), узораў Ch NFRCS і узораў Cp NFRCS.Надпеченочной полую вену пацукі выкрылі шляхам выканання сярэдняй лапаратаміі.Пасля гэтага нажніцамі выразалі дыстальны аддзел левай долі.Зрабіце надрэз печані лязом скальпеля і дайце ёй сыходзіць крывёй на некалькі секунд.Дакладна ўзважаныя тэставыя ўзоры Ch NFRCS і Cp NFRCS размяшчалі на пашкоджанай паверхні без станоўчага ціску і запісвалі BCT.Затым кантрольная група (Ct) прыклала ціск, а затым Cs 30 s47, не парушаючы траўмы.
Аналізы гаення ран in vivo праводзіліся з выкарыстаннем мадэлі эксцызійнай раны для ацэнкі ранозажыўляюшчых уласцівасцей распрацаваных NFRCS на палімернай аснове.Мадэлі эксцизионных ран былі выбраны і выкананы ў адпаведнасці з раней апублікаванымі метадамі з невялікімі мадыфікацыямі19,32,48.Усе жывёлы былі пад наркозам, як апісана раней.Перфаратарам для біяпсіі (12 мм) зрабіце круглы глыбокі разрэз скуры спіны.Падрыхтаваныя месцы раны былі перавязаны Cs (станоўчы кантроль), Ct (прызнаючы, што ватовыя дыскі перашкаджаюць гаенню), Ch NFRCS і Cp NFRCS (эксперыментальная група) і адмоўны кантроль без якой-небудзь апрацоўкі.У кожны дзень даследавання ва ўсіх пацукоў вымяралі плошчу раны.З дапамогай лічбавай камеры сфатаграфуйце вобласць раны і надзеньце новую павязку.Працэнт закрыцця раны вымяраўся па наступнай формуле:
Зыходзячы з працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання, скура пацукоў лепшай групы была выразана ((Cp NFRCS) і кантрольная група) і вывучана афарбоўваннем H&E і афарбоўкай трыхром па Масане. Зыходзячы з працэнта закрыцця раны на 12-ы дзень даследавання, скура пацукоў лепшай групы была выразана ((Cp NFRCS) і кантрольная група) і вывучана афарбоўваннем H&E і афарбоўкай трыхром па Масане.Зыходзячы з працэнта закрыцця раны на 12-е суткі даследавання, у пацукоў лепшай групы ((Cp NFRCS) і кантрольнай групы) была высечана скура і даследавана афарбоўкай гематоксилин-эозином і трихромом Масона.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和Mas сын三色染色研究。根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大鼠皮肤，进行H&E染色和眳组)Пацукі ў лепшай групе ((Cp NFRCS) і кантрольныя групы) былі выразаны для афарбоўвання гематаксілін-эазінам і афарбоўвання трыхромам Масана на аснове працэнта закрыцця раны на 12 дзень даследавання.Рэалізаваная працэдура афарбоўвання была праведзена ў адпаведнасці з раней апісанымі метадамі49,50.Карацей кажучы, пасля фіксацыі ў 10% фармаліне ўзоры былі абязводжаны з дапамогай шэрагу градуяваных спіртоў.Выкарыстоўвайце мікратом, каб атрымаць тонкія зрэзы (таўшчынёй 5 мкм) высечанай тканіны.Тонкія серыйныя зрэзы кантрольных і Cp NFRCS апрацоўвалі гематаксілінам і эазінам для вывучэння гистопатологических змяненняў.Для выяўлення адукацыі коллагеновых фібрыл выкарыстоўвалася трихромная афарбоўка па Массону.Атрыманыя вынікі былі ўсляпую вывучаны патолагаанатамамі.
Стабільнасць узораў Cp NFRCS вывучалася пры пакаёвай тэмпературы (25°C ± 2°C/60% адноснай вільготнасці ± 5%) на працягу 12 месяцаў51.Cp NFRCS (змяненне колеру паверхні і рост мікробаў) быў візуальна правераны і пратэставаны на ўстойлівасць да зносу і BCT у адпаведнасці з вышэйзгаданымі метадамі, выкладзенымі ў раздзеле "Матэрыялы і метады".
Маштабаванасць і ўзнаўляльнасць Cp NFRCS была праверана шляхам падрыхтоўкі Cp NFRCS памерам 15×15 см2.Акрамя таго, 30 мг узораў (n = 5) былі выразаны з розных фракцый Cp NFRCS і BCT даследаваных узораў быў ацэнены, як апісана раней у раздзеле Метады.
Мы паспрабавалі распрацаваць розныя формы і структуры з выкарыстаннем кампазіцый Cp NFRCS для розных біямедыцынскіх прыкладанняў.Такія формы або канфігурацыі ўключаюць канічныя тампоны для насавых крывацёкаў, стаматалагічных працэдур і цыліндрычныя тампоны для вагінальных крывацёкаў.
Усе наборы дадзеных выяўляюцца як сярэдняе ± стандартнае адхіленне і былі прааналізаваны з дапамогай ANOVA з выкарыстаннем Prism 5.03 (GraphPad, Сан-Дыега, Каліфорнія, ЗША) з наступным тэстам некалькіх параўнанняў Банфероні (*p<0,05).
Усе працэдуры, выкананыя ў даследаваннях на людзях, адпавядалі стандартам Інстытута і Нацыянальнага даследчага савета, а таксама Хельсінкскай дэкларацыі 1964 г. і наступнымі папраўкамі да яе, або падобным этычным нормам.Усе ўдзельнікі былі праінфармаваныя аб асаблівасцях даследавання і яго добраахвотнасці.Даныя аб удзельніках пасля іх збору застаюцца канфідэнцыйнымі.Эксперыментальны пратакол TEG in vitro быў разгледжаны і зацверджаны Інстытуцыйным камітэтам па этыцы медыцынскага каледжа Кастурба, Маніпал, Карнатака (IEC: 674/2020).Валанцёры падпісалі інфармаваную згоду на збор узораў крыві.
Усе працэдуры, праведзеныя ў даследаваннях на жывёл, праводзіліся ў адпаведнасці з інструкцыямі медыцынскага факультэта Кастубы Інстытута вышэйшай адукацыі Маніпала (IAEC/KMC/69/2020).Усе распрацаваныя эксперыменты на жывёл праводзіліся ў адпаведнасці з рэкамендацыямі Камітэта па кантролі і наглядзе за эксперыментамі на жывёл (CPCSEA).Усе аўтары прытрымліваюцца прынцыпаў ARRIVE.
Спектры FTIR усіх NFRCS былі прааналізаваны і параўнаны са спектрам хітазану, паказаным на малюнку 2A.Характэрныя спектральныя пікі хітазану (запісаны) пры 3437 см-1 (расцягванне OH і NH, перакрыцце), 2945 і 2897 см-1 (расцягванне CH), 1660 см-1 (дэфармацыя NH2), 1589 см-1 (згінанне N–H), 1157 см-1 (расцягванне моста O-), 1067 см-1 (расцяжэнне C–O, другасная гідра ксил), 993 см-1 (расцяжка CO, Bo-OH) 52.53.54.У дадатковай табліцы S1 паказаны значэнні спектру паглынання FTIR NFRCS для хітазану (рэпарцёр), чыстага хітазану, Cm, Ch і Cp.Спектры FTIR усіх NFRCS (Cm, Ch і Cp) паказалі тыя ж характэрныя паласы паглынання, што і чыстага хітазану, без істотных змен (мал. 2A).Вынікі FTIR пацвердзілі адсутнасць хімічных або фізічных узаемадзеянняў паміж палімерамі, якія выкарыстоўваліся для распрацоўкі NFRCS, што паказвае на тое, што палімеры, якія выкарыстоўваюцца, інэртныя.
Характарыстыка in vitro Cm NFRCS, Ch NFRCS, Cp NFRCS і Cs.(A) уяўляе сабой камбінаваныя спектры FTIR кампазіцый хітазану і Cm NFRCS, Ch NFRCS і Cp NFRCS пры сціску.(B) a) Хуткасць паглынання NFRCS Cm, Ch, Cp і Cg з суцэльнай крыві (n = 3);Узоры Ct паказалі больш высокі BAR, таму што ватовы тампон мае больш высокую эфектыўнасць паглынання;б) Кроў пасля паглынання крыві Ілюстрацыя паглынутага ўзору.Графічнае прадстаўленне BCT тэставага ўзору C (Cp NFRCS меў найлепшы BCT (15 с, n = 3)). Дадзеныя ў C, D, E і G былі паказаны як сярэдняе ± SD, а паласы памылак прадстаўляюць SD, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G былі паказаны як сярэдняе ± SD, а паласы памылак прадстаўляюць SD, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G прадстаўлены як сярэдняе ± стандартнае адхіленне, а планкі пагрэшнасцей уяўляюць стандартнае адхіленне, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G прадстаўлены як сярэдняе ± стандартнае адхіленне, а паласы памылак прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p<0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе значэнне ± стандартнае адхіленне, планкі пагрэшнасцяў прадстаўляюць стандартнае адхіленне, ***p <0,0001. Дадзеныя ў C, D, E і G паказаны як сярэдняе ± стандартнае адхіленне, паласы памылак уяўляюць сабой стандартнае адхіленне, ***p<0,0001.