از بازدید شما از Nature.com سپاسگزاریم.نسخه مرورگری که استفاده می کنید پشتیبانی محدودی از CSS دارد.برای بهترین تجربه، توصیه می کنیم از یک مرورگر به روز شده استفاده کنید (یا حالت سازگاری را در اینترنت اکسپلورر غیرفعال کنید).در عین حال، برای اطمینان از پشتیبانی مداوم، سایت را بدون استایل و جاوا اسکریپت ارائه می کنیم.
خونریزی کنترل نشده یکی از علل اصلی مرگ و میر است.دستیابی به هموستاز سریع بقای آزمودنی را به عنوان کمک اولیه در هنگام جنگ، حوادث رانندگی و عملیات کاهش مرگ تضمین می کند.داربست کامپوزیتی تقویت‌شده با الیاف نانومتخلخل (NFRCS) مشتق شده از یک ترکیب تشکیل‌دهنده فیلم هموستاتیک ساده (HFFC) به عنوان یک فاز پیوسته می‌تواند هموستاز را تحریک و تقویت کند.توسعه NFRCS بر اساس طراحی بال سنجاقک است.ساختار بال سنجاقک از بال های عرضی و طولی تشکیل شده است و غشاهای بال برای حفظ یکپارچگی ریزساختار به یکدیگر متصل شده اند.HFFC به طور یکنواخت سطح فیبر را با لایه ای به ضخامت نانومتر می پوشاند و ضخامت پنبه ای که به طور تصادفی توزیع شده است (Ct) (فاز پراکنده) را به هم متصل می کند تا ساختاری نانومتخلخل ایجاد کند.ترکیب فازهای پیوسته و پراکنده باعث کاهش ده برابری قیمت تمام شده محصول در مقایسه با محصولات تجاری می شود.NFRCS اصلاح شده (تامپون یا مچ بند) را می توان در انواع کاربردهای زیست پزشکی استفاده کرد.مطالعات in vivo به این نتیجه رسیده اند که Cp NFRCS توسعه یافته باعث تحریک و افزایش فرآیند انعقاد در محل استفاده می شود.NFRCS می‌تواند ریزمحیط را تعدیل کند و در سطح سلولی به دلیل ساختار نانومتخلخل خود عمل کند که منجر به بهبود زخم در مدل زخم برداشتن می‌شود.
خونریزی کنترل نشده در هنگام جنگ، حین عمل و شرایط اضطراری می تواند جان مجروحان را با خطر جدی مواجه کند.این شرایط بیشتر منجر به افزایش کلی مقاومت عروق محیطی می شود که منجر به شوک هموراژیک می شود.اقدامات مناسب برای کنترل خونریزی حین و بعد از عمل جراحی به طور بالقوه تهدید کننده زندگی در نظر گرفته می شود.آسیب به عروق بزرگ منجر به از دست دادن خون گسترده می شود که منجر به مرگ و میر ≤ 50٪ در جنگ و 31٪ در طول جراحی می شود.از دست دادن شدید خون منجر به کاهش حجم بدن می شود که برون ده قلبی را کاهش می دهد.افزایش مقاومت کلی عروق محیطی و اختلال پیشرونده میکروسیرکولاسیون منجر به هیپوکسی در اندام های حمایت کننده از زندگی می شود.اگر شرایط بدون مداخله موثر ادامه یابد ممکن است شوک هموراژیک رخ دهد 1،4،5.سایر عوارض شامل پیشرفت هیپوترمی و اسیدوز متابولیک و همچنین اختلال انعقادی است که روند انعقاد را مختل می کند.شوک هموراژیک شدید با خطر بالاتر مرگ همراه است 6،7،8.در شوک درجه III (پیشرونده)، انتقال خون برای بقای بیمار در طول عمل جراحی و عوارض و مرگ و میر بعد از عمل ضروری است.برای غلبه بر تمام موقعیت‌های تهدیدکننده حیات بالا، ما یک داربست کامپوزیتی تقویت‌شده با الیاف نانومتخلخل (NFRCS) ساخته‌ایم که از حداقل غلظت پلیمر (0.5٪) با استفاده از ترکیبی از پلیمرهای هموستاتیک محلول در آب استفاده می‌کند.
با استفاده از تقویت کننده الیاف می توان محصولات مقرون به صرفه تولید کرد.الیاف چیده شده به طور تصادفی شبیه ساختار بال سنجاقک است که توسط نوارهای افقی و عمودی روی بال ها متعادل می شود.رگه های عرضی و طولی بال با غشای بال ارتباط برقرار می کنند (شکل 1).NFRCS از Ct تقویت شده به عنوان یک سیستم داربست با مقاومت فیزیکی و مکانیکی بهتر تشکیل شده است (شکل 1).به دلیل مقرون به صرفه بودن و مهارت، جراحان ترجیح می دهند از سنج های نخ پنبه ای (Ct) در طول عمل و پانسمان استفاده کنند. از این رو، با توجه به مزایای متعدد آن، از جمله سلولز کریستالی بیش از 90٪ (در افزایش فعالیت هموستاتیک، Ct به عنوان یک سیستم اسکلتی NFRCS9،10 استفاده شد. از این رو، با توجه به مزایای متعدد آن، از جمله سلولز کریستالی بیش از 90٪ (در افزایش فعالیت هموستاتیک، Ct به عنوان یک سیستم اسکلتی NFRCS9،10 استفاده شد. Следовательно, учитывая его многочисленные преимущества, в том числе > 90% ?? بنابراین، با توجه به مزایای فراوان آن، از جمله سلولز کریستالی بیش از 90 درصد (که در افزایش فعالیت هموستاتیک نقش دارد)، Ct به عنوان سیستم اسکلتی NFRCS استفاده شد.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止觼S的结晶纤维素（有助于增强止血9,10 عکس.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%بنابراین، با توجه به مزایای فراوان آن، از جمله بیش از 90٪ سلولز کریستالی (به افزایش فعالیت هموستاتیک کمک می کند)، Ct به عنوان داربست برای NFRCS9،10 استفاده شد.Ct به طور سطحی پوشش داده شد (تشکیل فیلم نانو ضخیم مشاهده شد) و با یک ترکیب تشکیل دهنده فیلم هموستاتیک (HFFC) به هم متصل شد.HFFC مانند یک ماتریژل عمل می کند و Ct را به طور تصادفی کنار هم نگه می دارد.طراحی توسعه یافته تنش را در فاز پراکنده (الیاف تقویت کننده) منتقل می کند.دستیابی به ساختارهای نانومتخلخل با مقاومت مکانیکی خوب با استفاده از حداقل غلظت پلیمر دشوار است.علاوه بر این، سفارشی کردن قالب های مختلف برای کاربردهای مختلف زیست پزشکی آسان نیست.
شکل، نموداری از طراحی NFRCS بر اساس ساختار بال سنجاقک (A) را نشان می دهد.این تصویر یک قیاس مقایسه ای از ساختار بال سنجاقک را نشان می دهد (رگه های متقاطع و طولی بال به هم متصل هستند) و یک میکروگراف مقطعی از Cp NFRCS (B).نمایش شماتیک NFRCS.
NFRC ها با استفاده از HFFC به عنوان یک فاز پیوسته برای رفع محدودیت های فوق توسعه یافتند.HFFC از انواع پلیمرهای هموستاتیک تشکیل دهنده فیلم از جمله کیتوزان (به عنوان پلیمر هموستاتیک اصلی) با متیل سلولز (MC)، هیدروکسی پروپیل متیل سلولز (HPMC 50 cp) و پلی وینیل الکل (PVA)) (125 کیلو دالتون) به عنوان یک پلیمر پشتیبانی که تشکیل ترومبوز را تقویت می کند، تشکیل شده است.تشکیل.افزودن پلی وینیل پیرولیدین K30 (PVP K30) ظرفیت جذب رطوبت NFRCS را بهبود بخشید.پلی اتیلن گلیکول 400 (PEG 400) برای بهبود اتصال عرضی پلیمری در مخلوط های پلیمری پیوندی اضافه شد.سه ترکیب مختلف هموستاتیک HFFC (Cm HFFC، Ch HFFC و Cp HFFC)، یعنی کیتوزان با MC (Cm)، کیتوزان با HPMC (Ch)، و کیتوزان با PVA (Cp)، به Ct اعمال شد.مطالعات مختلف خصوصیات in vitro و in vivo فعالیت هموستاتیک و ترمیم زخم NFRCS را تایید کرده‌اند.مواد کامپوزیت ارائه شده توسط NFRCS را می توان برای سفارشی کردن اشکال مختلف داربست برای رفع نیازهای خاص استفاده کرد.
علاوه بر این، NFRCS را می توان به عنوان یک باند یا رول تغییر داد تا کل ناحیه آسیب دیدگی اندام تحتانی و سایر قسمت های بدن را بپوشاند.به طور خاص برای آسیب‌های اندام رزمی، طراحی NFRCS طراحی شده را می‌توان به نیم دست یا پا کامل تغییر داد (شکل تکمیلی S11).NFRCS را می توان با چسب بافتی به مچ بند تبدیل کرد که می تواند برای جلوگیری از خونریزی ناشی از آسیب های شدید مچ دست خودکشی استفاده شود.هدف اصلی ما ایجاد یک NFRCS با کمترین پلیمر ممکن است که بتواند به جمعیت زیادی (زیر خط فقر) تحویل داده شود و بتوان آن را در جعبه کمک‌های اولیه قرار داد.در طراحی ساده، کارآمد و مقرون به صرفه، NFRCS برای جوامع محلی مفید است و می تواند تأثیری جهانی داشته باشد.
کیتوزان (وزن مولکولی 80 کیلو دالتون) و آمارانت از مرک هند خریداری شد.هیدروکسی پروپیل متیل سلولز 50 Cp، پلی اتیلن گلیکول 400 و متیل سلولز از Loba Chemie Pvt خریداری شد.LLC، بمبئیپلی وینیل الکل (وزن مولکولی 125 کیلو دالتون) (87-90٪ هیدرولیز شده) از National Chemicals، گجرات خریداری شد.پلی وینیل پیرولیدین K30 از Molychem، بمبئی، سواب های استریل از Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd.، تامیل نادو، با آب Milli Q (سیستم تصفیه آب مستقیم-Q3، Merck، هند) به عنوان حامل خریداری شد.
NFRCS با استفاده از روش لیوفیلیزاسیون 11،12 توسعه داده شد.تمام ترکیبات HFFC (جدول 1) با استفاده از همزن مکانیکی تهیه شد.محلول 0.5% کیتوزان را با استفاده از اسید استیک 1% در آب با هم زدن مداوم در 800 دور در دقیقه روی همزن مکانیکی تهیه کنید.وزن دقیق پلیمر بارگذاری شده نشان داده شده در جدول 1 به محلول کیتوزان اضافه شد و تا زمانی که یک محلول پلیمری شفاف به دست آمد هم زده شد.PVP K30 و PEG 400 در مقادیر نشان داده شده در جدول 1 به مخلوط حاصل اضافه شدند و هم زدن تا زمانی که محلول پلیمری شفاف ویسکوز به دست آمد ادامه یافت.حمام حاصل از محلول پلیمری به مدت 60 دقیقه تحت فراصوت قرار گرفت تا حباب های هوای به دام افتاده از مخلوط پلیمری حذف شود.همانطور که در شکل تکمیلی S1 (b) نشان داده شده است، Ct به طور مساوی در هر چاه یک صفحه 6 چاهی (قالب) تکمیل شده با 5 میلی لیتر HFFC توزیع شد.
صفحه شش چاهی به مدت 60 دقیقه برای دستیابی به مرطوب شدن و توزیع یکنواخت HFFC در شبکه Ct سونیک شد.سپس صفحه شش چاهک را در دمای 20- درجه سانتیگراد به مدت 12-8 ساعت منجمد کنید.پلیت های فریز به مدت 48 ساعت لیوفیلیز شدند تا فرمول های مختلف NFRCS به دست آید.از همین روش برای تولید اشکال و ساختارهای مختلف مانند تامپون یا تامپون استوانه ای یا هر شکل دیگری برای کاربردهای مختلف استفاده می شود.
کیتوزان با وزن دقیق (80 کیلو دالتون) (3%) با استفاده از همزن مغناطیسی در اسید استیک 1% حل می شود.به محلول کیتوزان به دست آمده 1% PEG 400 اضافه و به مدت 30 دقیقه هم زده شد.محلول به دست آمده را در ظرفی مربع یا مستطیل بریزید و به مدت 12 ساعت در دمای 80- درجه سانتی گراد فریز کنید.نمونه های منجمد به مدت 48 ساعت برای به دست آوردن Cs13 متخلخل لیوفیلیز شدند.
NFRCS توسعه‌یافته تحت آزمایش‌هایی با استفاده از طیف‌سنجی فروسرخ تبدیل فوریه (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR، توکیو، ژاپن) قرار گرفت تا سازگاری شیمیایی کیتوزان با سایر پلیمرها تأیید شود14،15.طیف FTIR (عرض محدوده طیفی از 400 تا 4000 سانتی متر-1) از تمام نمونه های آزمایش شده با انجام 32 اسکن به دست آمد.
نرخ جذب خون (BAR) برای همه فرمول‌ها با استفاده از روشی که توسط Chen و همکارانش توصیف شد، ارزیابی شد.16 با تغییرات جزئی.NFRKهای توسعه یافته از همه ترکیبات در یک کوره خلاء در دمای 105 درجه سانتیگراد یک شبه خشک شدند تا حلال باقیمانده حذف شود.30 میلی گرم NFRCS (وزن نمونه اولیه - W0) و 30 میلی گرم Ct (کنترل مثبت) در ظروف جداگانه حاوی یک پیش مخلوط 3.8٪ سیترات سدیم قرار داده شد.در فواصل زمانی از پیش تعیین شده یعنی 5، 10، 20، 30، 40 و 60 ثانیه، NFRCS ها خارج شده و با قرار دادن نمونه ها بر روی Ct به مدت 30 ثانیه، سطوح آنها از خون جذب نشده پاکسازی شد.وزن نهایی خون جذب شده توسط NFRCS 16 (W1) در هر نقطه زمانی در نظر گرفته شد.با استفاده از فرمول زیر درصد BAR را محاسبه کنید:
زمان لخته شدن خون (BCT) همانطور که توسط وانگ و همکاران گزارش شده تعیین شد.17 .زمان لازم برای لخته شدن خون کامل (خون موش صحرایی با 8/3 درصد سیترات سدیم) برای لخته شدن در حضور NFRCS به عنوان BCT نمونه آزمایش محاسبه شد.اجزای مختلف NFRCS (30 میلی‌گرم) در ویال‌های 10 میلی‌لیتری درپوش پیچی قرار داده و در دمای 37 درجه سانتی‌گراد انکوبه شدند.خون (0.5 میلی لیتر) به ویال اضافه شد و 0.3 میلی لیتر از 0.2 مولار CaCl2 برای فعال کردن انعقاد خون اضافه شد.در نهایت، ویال را هر 15 ثانیه (تا 180 درجه) برعکس کنید تا لخته محکمی تشکیل شود.BCT نمونه با تعداد 17 و 18 ویل برگردان تخمین زده می شود.بر اساس BCT، دو ترکیب بهینه از NFRCS Cm، Ch و Cp برای مطالعات خصوصیات بیشتر انتخاب شدند.
BCT ترکیبات Ch NFRCS و Cp NFRCS با اجرای روش توصیف شده توسط Li و همکاران تعیین شد.19 .15×15 میلی متر مربع Ch NFRCS، Cp NFRCS و Cs (کنترل مثبت) را در ظروف پتری جداگانه (37 درجه سانتیگراد) قرار دهید.خون حاوی 3.8 درصد سیترات سدیم با 0.2 مولار CaCl2 در نسبت حجمی 10:1 مخلوط شد تا فرآیند لخته شدن خون آغاز شود.20 میکرولیتر از مخلوط خون 2/0 مولار CaCl2 موش صحرایی روی سطح نمونه اعمال شد و در ظرف پتری خالی قرار داده شد.کنترل خون در ظروف پتری خالی بدون Ct ریخته شد.در فواصل ثابت 0، 3 و 5 دقیقه، با افزودن 10 میلی لیتر آب دیونیزه (DI) به نمونه حاوی ظرف بدون ایجاد اختلال در لخته، لخته شدن را متوقف کنید.گلبول های قرمز لخته نشده (گلبول های قرمز) در حضور آب دیونیزه شده همولیز می شوند و هموگلوبین آزاد می کنند.هموگلوبین در نقاط زمانی مختلف (HA(t)) در طول موج 540 نانومتر (λmax هموگلوبین) با استفاده از اسپکتروفتومتر UV-Vis اندازه گیری شد.جذب مطلق هموگلوبین (AH(0)) در 0 دقیقه از 20 میکرولیتر خون در 10 میلی لیتر آب دیونیزه به عنوان استاندارد مرجع در نظر گرفته شد.جذب نسبی هموگلوبین (RHA) خون منعقد شده از نسبت HA(t)/HA(0) با استفاده از همان دسته خون محاسبه شد.
با استفاده از یک تحلیلگر بافت (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, USA)، خواص چسبندگی NFRK به بافت آسیب دیده تعیین شد.یک ظرف استوانه ای ته باز را به داخل پوست خوک (بدون لایه چربی) فشار دهید.نمونه‌ها (Ch NFRCS و Cp NFRCS) از طریق کانول در قالب‌های استوانه‌ای برای ایجاد چسبندگی به پوست خوک استفاده شدند.پس از 3 دقیقه انکوباسیون در دمای اتاق (RT) (25 درجه سانتیگراد)، استحکام چسب NFRCS با سرعت ثابت 0.5 میلی متر بر ثانیه ثبت شد.
ویژگی اصلی سیلانت های جراحی افزایش لخته شدن خون و در عین حال کاهش از دست دادن خون است.انعقاد بدون اتلاف در NFRCS با استفاده از روشی که قبلا منتشر شده بود با تغییرات جزئی ارزیابی شد 19 .یک لوله میکرو سانتریفیوژ (2 میلی لیتر) (قطر داخلی 10 میلی متر) با سوراخ 8 × 5 میلی متر مربع در یک طرف لوله سانتریفیوژ (که نشان دهنده یک زخم باز است) بسازید.از NFRCS برای بستن دهانه و نوار چسب برای آب بندی لبه های بیرونی استفاده می شود.20 میکرولیتر از 0.2 مولار CaCl2 را به لوله میکرو سانتریفیوژ حاوی 3.8 درصد پیش مخلوط سیترات سدیم اضافه کنید.پس از 10 دقیقه، لوله های میکروسانتریفیوژ از ظروف خارج شد و افزایش جرم ظروف به دلیل خروج خون از NFRK تعیین شد (n = 3).از دست دادن خون Ch NFRCS و Cp NFRCS با Cs مقایسه شد.
یکپارچگی مرطوب NFRCS بر اساس روش توصیف شده توسط Mishra و Chaudhary21 با تغییرات جزئی تعیین شد.NFRCS را در یک فلاسک 100 میلی لیتری ارلن با 50 میلی لیتر آب قرار داده و به مدت 60 ثانیه بدون تشکیل قسمت بالایی بچرخانید.بازرسی بصری و اولویت بندی نمونه ها برای یکپارچگی فیزیکی بر اساس جمع آوری.
قدرت اتصال HFFC به Ct با استفاده از روش‌های منتشر شده قبلی با تغییرات جزئی مورد مطالعه قرار گرفت.یکپارچگی پوشش سطحی با قرار دادن NFRK در معرض امواج صوتی (محرک خارجی) در حضور میلی‌کیو آب (Ct) ارزیابی شد.NFRCS Ch NFRCS و Cp NFRCS توسعه یافته در یک بشر پر از آب قرار گرفتند و به ترتیب به مدت 1، 2، 3، 4، 5، 6، 7، 8، 9، 10 و 30 دقیقه تحت سونیک قرار گرفتند.پس از خشک شدن، درصد اختلاف بین وزن اولیه و نهایی NFRCS برای محاسبه درصد تلفات مواد (HFFC) استفاده شد.BCT در شرایط آزمایشگاهی از استحکام اتصال یا از دست دادن مواد سطحی پشتیبانی می کند.کارایی اتصال HFFC به Ct باعث انعقاد خون و یک پوشش الاستیک بر روی سطح Ct22 می شود.
همگنی NFRCS توسعه یافته توسط BCT نمونه ها (30 میلی گرم) که از مکان های عمومی به طور تصادفی انتخاب شده از NFRCS انتخاب شده بودند، تعیین شد.برای تعیین انطباق NFRCS از روش BCT که قبلا ذکر شد پیروی کنید.نزدیکی بین هر پنج نمونه، پوشش سطحی یکنواخت و رسوب HFFC در مش Ct را تضمین می کند.
ناحیه تماس اسمی خون (NBCA) همانطور که قبلاً با برخی تغییرات گزارش شده بود تعیین شد.خون را با بستن 20 میکرولیتر خون بین دو سطح Ct، Ch NFRCS، Cp NFRCS و Cs منعقد کنید.پس از 1 ساعت، دو قسمت استنت جدا شده و به صورت دستی مساحت لخته اندازه گیری شد.مقدار متوسط ​​سه تکرار NBCA NFRCS19 در نظر گرفته شد.
تجزیه و تحلیل جذب بخار پویا (DVS) برای ارزیابی اثربخشی NFRCS برای جذب آب از محیط خارجی یا از محل آسیب مسئول شروع انعقاد استفاده شد.DVS جذب و تلفات بخار را در یک نمونه با استفاده از یک تعادل فوق حساس با وضوح جرم ± 0.1 میکروگرم ارزیابی یا ثبت می کند.یک فشار بخار جزئی (رطوبت نسبی) توسط یک کنترل کننده جریان جرم الکترونیکی در اطراف نمونه با مخلوط کردن گازهای حامل اشباع و خشک ایجاد می شود. طبق دستورالعمل فارماکوپی اروپا، بر اساس درصد جذب رطوبت توسط نمونه‌ها، نمونه‌ها در 4 دسته (0-0.012% w/w- غیر رطوبت گیر، 0.2-2% w/w کمی مرطوب، 2-15% نسبتاً مرطوب) و 235% بسیار مرطوب طبقه‌بندی شدند. طبق دستورالعمل‌های فارماکوپی اروپا، بر اساس درصد جذب رطوبت توسط نمونه‌ها، نمونه‌ها به 4 دسته (0-0.012% w/w- غیر رطوبت گیر، 0.2-2% w/w کمی مرطوب، 2-15% نسبتاً مرطوب) و 235% بسیار مرطوب طبقه‌بندی شدند.مطابق با توصیه‌های فارماکوپه اروپا، بسته به درصد جذب رطوبت توسط نمونه‌ها، نمونه‌ها به 4 دسته تقسیم شدند (012/0-0 درصد وزنی-غیر رطوبت سنجی، 2/0-2 درصد وزنی بر وزن کم رطوبت، 2-15 درصد).% متوسطно گیگروسکوپیک و > 15% очень گیگروسکوپیک)23. درصد رطوبت نسبتاً مرطوب و > 15 درصد بسیار مرطوب)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0.012% 遞2% w. /w 轻微吸湿性、2-15% 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23。根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分为 分为 爆为 分为 爆为 分为 爆为0%w.湿 性 、 、 、 、 0.2-2% وزنی / وزنی 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15% 非常吸湿）23。مطابق با توصیه های فارماکوپه اروپا، نمونه ها بسته به درصد رطوبت جذب شده توسط نمونه به 4 کلاس تقسیم می شوند (0-0.012% وزنی – غیر رطوبت سنجی، 0.2-2% وزنی کمی مرطوب، 2-15% وزنی).% متوسطно گیگروسکوپیک، > 15 % очень گیگروسکوپیک) 23. درصد رطوبت نسبتاً مرطوب، > 15 درصد بسیار مرطوب) 23.راندمان رطوبت سنجی NFCS X NFCS و TsN NFCS بر روی یک آنالایزر DVS TA TGA Q5000 SA تعیین شد.در طی این فرآیند، زمان اجرا، رطوبت نسبی (RH) و وزن نمونه بلادرنگ در دمای 25 درجه سانتی گراد به دست آمد.میزان رطوبت با آنالیز دقیق جرم NFRCS با استفاده از معادله زیر محاسبه می شود:
MC رطوبت NFRCS است.m1 - وزن خشک NSAID ها.متر مربع جرم NFRCS بلادرنگ در یک RH معین است.
سطح کل با استفاده از آزمایش جذب نیتروژن با نیتروژن مایع پس از تخلیه نمونه ها در دمای 25 درجه سانتی گراد به مدت 10 ساعت (<7 × 10-3 Torr) برآورد شد. سطح کل با استفاده از آزمایش جذب نیتروژن با نیتروژن مایع پس از تخلیه نمونه ها در دمای 25 درجه سانتی گراد به مدت 10 ساعت (<7 × 10-3 Torr) برآورد شد. امتیازهای مثبت امتیازی با استفاده از تجربیات تجربی با استفاده از آزوتوم پس از تغییر در دمای 25 درجه سانتیگراد در دمای 10 ساعت (< 7 × 10-3 تار). سطح کل با استفاده از آزمایش جذب نیتروژن با نیتروژن مایع پس از تخلیه نمونه ها در دمای 25 درجه سانتی گراد به مدت 10 ساعت (<7 × 10-3 Torr) برآورد شد.在25 درجه سانتی گراد 清空样品10 小时（< 7 × 10-3 Torr）后，使用液氮的氮吸附实靌估计总表✨ 25 درجه سانتی گراد با استفاده از تجربیات آزمایشی در دمای 10 ساعت در دمای 25 درجه سانتیگراد (< 7 × 10-3 درجه سانتیگراد) مشاهده می شود. پس از تخلیه نمونه ها به مدت 10 ساعت در دمای 25 درجه سانتی گراد (<7 x 10-3 torr) سطح کل با استفاده از آزمایش های جذب نیتروژن با نیتروژن مایع تخمین زده شد.سطح کل، حجم منافذ و اندازه منافذ NFRCS با کوانتاکروم از NOVA 1000e، اتریش با استفاده از نرم افزار RS 232 تعیین شد.
5% گلبول های قرمز (سالین به عنوان رقیق کننده) از خون کامل تهیه کنید.سپس مقدار کمی از HFFC (0.25 میلی لیتر) را به یک صفحه 96 چاهی و 5٪ جرم RBC (0.1 میلی لیتر) منتقل کنید.مخلوط را به مدت 40 دقیقه در دمای 37 درجه سانتیگراد انکوبه کنید.مخلوطی از گلبول قرمز و سرم به عنوان کنترل مثبت و مخلوطی از نمک و گلبول قرمز به عنوان کنترل منفی در نظر گرفته شد.هماگلوتیناسیون بر اساس مقیاس استاجیتزکی تعیین شد.مقیاس های پیشنهادی به شرح زیر است: + + + + سنگدانه های دانه ای متراکم.+ + + لنت های کف صاف با لبه های منحنی؛+ + لنت های کف صاف با لبه های پاره شده؛+ حلقه های قرمز باریک در اطراف لبه های پدهای صاف؛– (منفی) دکمه قرمز گسسته 12 در مرکز چاه پایینی.
همسازگاری NFRCS بر اساس روش سازمان بین المللی استاندارد (ISO) (ISO10993-4, 1999) 26،27 مورد مطالعه قرار گرفت.روش وزن سنجی توصیف شده توسط سینگ و همکاران.تغییرات جزئی برای ارزیابی تشکیل ترومبوز در حضور یا روی سطح NFRCS انجام شد.500 میلی گرم از Cs، Ch NFRCS و Cp NFRCS در سالین بافر فسفات (PBS) به مدت 24 ساعت در دمای 37 درجه سانتی گراد انکوبه شدند.پس از 24 ساعت، PBS برداشته شد و NFRCS با 2 میلی لیتر خون حاوی 3.8 درصد سیترات سدیم تیمار شد.در سطح NFRCS، 0.04 میلی لیتر CaCl2 0.1 مولار را به نمونه های انکوبه شده اضافه کنید.پس از 45 دقیقه، 5 میلی لیتر آب مقطر برای توقف انعقاد اضافه شد.خون منعقد شده روی سطح NFRK با محلول فرمالدئید 36-38 درصد تیمار شد.لخته های تثبیت شده با فرمالدئید خشک و وزن شدند.درصد ترومبوز با محاسبه وزن لیوان بدون خون و نمونه (کنترل منفی) و لیوان با خون (کنترل مثبت) برآورد شد.
به عنوان تایید اولیه، نمونه‌ها در زیر میکروسکوپ نوری برای درک توانایی پوشش سطح HFFC، Ct به هم پیوسته و شبکه Ct برای تشکیل منافذ مشاهده شدند.بخش های نازک Ch و Cp از NFRCS با تیغه چاقوی جراحی بریده شد.بخش به دست آمده روی یک اسلاید شیشه ای قرار داده شد، با یک روکش پوشانده شد و لبه ها با چسب ثابت شدند.اسلایدهای آماده شده در زیر میکروسکوپ نوری مشاهده و عکس هایی با بزرگنمایی های مختلف گرفته شد.
رسوب پلیمر در شبکه های Ct با استفاده از میکروسکوپ فلورسانس بر اساس روشی که توسط رایس و همکارانش توضیح داده شده است، مشاهده شد. ترکیب HFFC مورد استفاده برای فرمولاسیون با یک رنگ فلورسنت (آمارانت) مخلوط شد و NFRCS (Ch & Cp) طبق روشی که قبلا ذکر شد تهیه شد. ترکیب HFFC مورد استفاده برای فرمولاسیون با یک رنگ فلورسنت (آمارانت) مخلوط شد و NFRCS (Ch & Cp) طبق روشی که قبلا ذکر شد تهیه شد.ترکیب HFFC مورد استفاده برای فرمولاسیون با رنگ فلورسنت (آمارانت) مخلوط شد و NFRCS (Ch و Cp) طبق روش ذکر شده قبلی به دست آمد.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶方将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的戶方ترکیب HFFC استفاده شده در فرمولاسیون با رنگ فلورسنت (آمارانت) مخلوط شد و NFRCS (Ch و Cp) را دریافت کرد، همانطور که قبلا ذکر شد.مقاطع نازکی از NFRK از نمونه های به دست آمده بریده شد، روی لام های شیشه ای قرار گرفت و با لام های پوششی پوشانده شد.اسلایدهای آماده شده را با استفاده از فیلتر سبز رنگ (310-380 نانومتر) زیر میکروسکوپ فلورسنت مشاهده کنید.تصاویر با بزرگنمایی 4 برابر برای درک روابط Ct و رسوب پلیمر اضافی در شبکه Ct گرفته شد.
توپوگرافی سطح NFRCS Ch و Cp با استفاده از یک میکروسکوپ نیروی اتمی (AFM) با یک کنسول فوق تیز TESP در حالت ضربه زدن تعیین شد: 42 نیوتن بر متر، 320 کیلوهرتز، ROC 2-5 نانومتر، بروکر، تایوان.زبری سطح با استفاده از نرم افزار (Scanning Probe Image Processor) با استفاده از ریشه میانگین مربع (RMS) تعیین شد.مکان های مختلف NFRCS بر روی تصاویر سه بعدی برای بررسی یکنواختی سطح ارائه شد.انحراف استاندارد امتیاز برای یک منطقه معین به عنوان زبری سطح تعریف می شود.برای تعیین کمیت زبری سطح NFRCS31 از معادله RMS استفاده شد.
مطالعات مبتنی بر FESEM با استفاده از FESEM، SU8000، HI-0876-0003، هیتاچی، توکیو، برای درک مورفولوژی سطح Ch NFRCS و Cp NFRCS انجام شد، که BCT بهتری را نسبت به Cm NFRCS نشان داد.مطالعه FESEM با توجه به روش توصیف شده توسط ژائو و همکاران انجام شد.32 با تغییرات جزئی.NFRCS 20 تا 30 میلی گرم Ch NFRCS و Cp NFRCS با 20 میکرولیتر سیترات سدیم 3.8 درصد از قبل مخلوط شده با خون موش پیش مخلوط شدند.برای شروع انعقاد، 20 میکرولیتر از 0.2 مولار CaCl2 به نمونه های تیمار شده با خون اضافه شد و نمونه ها به مدت 10 دقیقه در دمای اتاق انکوبه شدند.علاوه بر این، گلبول های قرمز اضافی با شستشو با سالین از سطح NFRCS حذف شدند.
نمونه های بعدی با گلوتارآلدئید 1/0 درصد تیمار شدند و سپس در آون با هوای گرم در دمای 37 درجه سانتی گراد خشک شدند تا رطوبت از بین برود.نمونه های خشک شده پوشش داده شده و مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند 32 .سایر تصاویر به‌دست‌آمده در طول تجزیه و تحلیل، تشکیل لخته بر روی سطح الیاف پنبه، رسوب پلیمر بین Ct، مورفولوژی گلبول‌های قرمز (شکل)، یکپارچگی لخته و مورفولوژی گلبول قرمز در حضور NFRCS بود.نواحی NFRCS درمان نشده و نواحی NFRCS تیمار شده با Ch و Cp که با خون انکوبه شده بودند برای یون های عنصری (سدیم، پتاسیم، نیتروژن، کلسیم، منیزیم، روی، مس و سلنیوم) اسکن شدند.برای درک تجمع یون عنصری در طول تشکیل لخته و همگنی لخته، درصد یون عنصری را بین نمونه‌های تیمار شده و تیمار نشده مقایسه کنید.
ضخامت پوشش سطح Cp HFFC روی سطح Ct با استفاده از FESEM تعیین شد.سطح مقطع Cp NFRCS از چارچوب برش داده شد و پوشش داده شد.نمونه‌های پوشش کندوپاش حاصل توسط FESEM مشاهده شد و ضخامت پوشش سطح 34، 35، 36 اندازه‌گیری شد.
میکرو سی تی اشعه ایکس تصویربرداری سه بعدی غیر مخرب با وضوح بالا را ارائه می دهد و به شما امکان می دهد آرایش ساختاری داخلی NFRK را مطالعه کنید.Micro-CT از یک پرتو اشعه ایکس که از نمونه عبور می کند برای ثبت ضریب تضعیف خطی موضعی اشعه ایکس در نمونه استفاده می کند که به دستیابی به اطلاعات مورفولوژیکی کمک می کند.مکان داخلی Ct در Cp NFRCS و Cp NFRCS درمان شده با خون توسط میکرو CT برای درک کارایی جذب و لخته شدن خون در حضور NFRCS37،38،39 مورد بررسی قرار گرفت.ساختارهای سه بعدی نمونه‌های Cp NFRCS تیمار شده با خون و تیمار نشده با استفاده از میکرو CT (V|tome|xS240، Phoenix، آلمان) بازسازی شدند.با استفاده از نرم افزار VG STUDIO-MAX نسخه 2.2، چندین تصویر اشعه ایکس از زوایای مختلف (به طور ایده آل پوشش 360 درجه) برای توسعه تصاویر سه بعدی برای NFRCS گرفته شد.داده های طرح ریزی جمع آوری شده با استفاده از نرم افزار 3D ScanIP Academic ساده به تصاویر حجمی سه بعدی بازسازی شد.
علاوه بر این، برای درک توزیع لخته، 20 میکرولیتر خون سیترات شده از قبل مخلوط شده و 20 میکرولیتر از 0.2 مولار CaCl2 به NFRCS اضافه شد تا لخته شدن خون آغاز شود.نمونه های آماده شده را می گذاریم تا سفت شوند.سطح NFRK با 0.5٪ گلوتارآلدئید تیمار شد و در یک آون با هوای گرم در دمای 30-40 درجه سانتیگراد به مدت 30 دقیقه خشک شد.لخته خون تشکیل شده بر روی NFRCS اسکن شد، بازسازی شد و یک تصویر سه بعدی از لخته خون مشاهده شد.
سنجش آنتی باکتریال بر روی Cp NFRCS (بهترین در مقایسه با Ch NFRCS) با استفاده از روش توصیف شده قبلی با تغییرات جزئی انجام شد.فعالیت ضد باکتریایی Cp NFRCS و Cp HFFC با استفاده از سه میکروارگانیسم آزمایشی مختلف [S.aureus (باکتری گرم مثبت)، E.coli (باکتری گرم منفی) و کاندیدا سفید (C.albicans)] در حال رشد روی آگار در ظروف پتری در انکوباتور تعیین شد.50 میلی لیتر از سوسپانسیون کشت باکتریایی رقیق شده را با غلظت 105-106 CFU ml-1 به طور یکنواخت روی محیط آگار تلقیح کنید.محیط را در ظرف پتری بریزید و بگذارید سفت شود.چاه هایی روی سطح صفحه آگار ساخته شد تا با HFFC پر شود (3 چاه برای HFFC و 1 چاه برای کنترل منفی).200 میکرولیتر HFFC را به 3 چاهک و 200 میکرولیتر pH 7.4 PBS را به چاه چهارم اضافه کنید.در طرف دیگر پتری دیش، یک دیسک Cp NFRCS 12 میلی متری را روی آگار جامد شده قرار دهید و با PBS (pH 7.4) مرطوب کنید.قرص سیپروفلوکساسین، آمپی سیلین و فلوکونازول استانداردهای مرجع برای استافیلوکوکوس اورئوس، اشریشیا کلی و کاندیدا آلبیکنس در نظر گرفته می شوند.ناحیه بازدارندگی را به صورت دستی اندازه گیری کنید و یک تصویر دیجیتالی از ناحیه بازداری بگیرید.
پس از تأیید اخلاقی سازمانی، این مطالعه در کالج پزشکی آموزش و پژوهش کاستوربا در مانیپال، کارناتاکا، در جنوب هند انجام شد.پروتکل آزمایشی TEG در شرایط آزمایشگاهی توسط کمیته اخلاق نهادی کالج پزشکی کاستوربا، مانیپال، کارناتاکا (IEC: 674/2020) بررسی و تایید شده است.آزمودنی ها از اهداکنندگان خون داوطلب (18 تا 55 ساله) از بانک خون بیمارستان انتخاب شدند.همچنین فرم رضایت آگاهانه از داوطلبان جهت جمع آوری نمونه خون اخذ شد.از TEG (N-TEG) ​​بومی برای بررسی اثر فرمول Cp HFFC بر روی خون کامل مخلوط شده با سیترات سدیم استفاده شد.N-TEG به طور گسترده ای به دلیل نقشش در احیا در نقطه مراقبت شناخته شده است، که به دلیل احتمال تاخیر بالینی قابل توجه در نتایج (تست های معمول انعقاد) مشکلاتی را برای پزشکان ایجاد می کند.آنالیز N-TEG با استفاده از خون کامل انجام شد.رضایت آگاهانه و شرح حال دقیق پزشکی از همه شرکت کنندگان اخذ شد.این مطالعه شامل شرکت‌کنندگانی با عوارض هموستاتیک یا ترومبوتیک مانند بارداری/پس از زایمان یا بیماری کبدی نمی‌شد.افراد مصرف کننده داروهایی که بر آبشار انعقادی تأثیر می گذارد نیز از مطالعه حذف شدند.تست‌های آزمایشگاهی پایه (هموگلوبین، زمان پروترومبین، ترومبوپلاستین فعال و تعداد پلاکت‌ها) بر روی همه شرکت‌کنندگان طبق روش‌های استاندارد انجام شد.N-TEG ویسکوالاستیسیته لخته خون، ساختار لخته اولیه، برهمکنش ذرات، تقویت لخته و لیز لخته را تعیین می کند.تجزیه و تحلیل N-TEG داده های گرافیکی و عددی را در مورد اثرات جمعی چندین عنصر سلولی و پلاسما فراهم می کند.آنالیز N-TEG بر روی دو حجم مختلف Cp HFFC (10 میکرولیتر و 50 میکرولیتر) انجام شد.در نتیجه، 1 میلی لیتر خون کامل با اسید سیتریک به 10 میکرولیتر Cp HFFC اضافه شد.1 میلی لیتر (Cp HFFC + خون سیتراته)، 340 میکرولیتر خون مخلوط را به 20 میکرولیتر CaCl2 0.2 مولار حاوی ظرف TEG اضافه کنید.پس از آن، ظروف TEG در TEG® 5000، US برای اندازه گیری R، K، زاویه آلفا، MA، G، CI، TPI، EPL، LY 30 درصد از نمونه های خون در حضور Cp HFFC41 بارگذاری شدند.
پروتکل مطالعه in vivo توسط کمیته اخلاق حیوانی سازمانی (IAEC)، دانشکده پزشکی Kasturba، موسسه آموزش عالی Manipal، Manipal (IAEC/KMC/69/2020) بررسی و تایید شد.تمام آزمایش‌های حیوانی مطابق با توصیه‌های کمیته کنترل و نظارت بر آزمایش‌های حیوانی (CPCSEA) انجام شد.همه مطالعات in vivo NFRCS (2 × 2 سانتی‌متر مربع) روی موش‌های صحرایی ماده ویستار (با وزن 200 تا 250 گرم) انجام شد.همه حیوانات در دمای 24-26 درجه سانتیگراد سازگار شدند، حیوانات به طور آزاد به غذا و آب استاندارد دسترسی داشتند.همه حیوانات به طور تصادفی به گروه های مختلف تقسیم شدند که هر گروه شامل سه حیوان بود.همه مطالعات مطابق با Animal Studies: Report of In Vivo Experiments 43 انجام شد.قبل از مطالعه، حیوانات با تزریق داخل صفاقی (IP) مخلوطی از 20-50 میلی گرم کتامین (به ازای هر 1 کیلوگرم وزن بدن) و 2-10 میلی گرم زایلازین (به ازای هر 1 کیلوگرم وزن بدن) بیهوش شدند.پس از مطالعه، حجم خونریزی با ارزیابی تفاوت بین وزن اولیه و نهایی نمونه ها محاسبه شد، مقدار متوسط ​​به دست آمده از سه آزمایش به عنوان حجم خونریزی نمونه در نظر گرفته شد.
مدل قطع دم موش برای درک پتانسیل NFRCS برای تعدیل خونریزی در تروما، جنگ یا تصادف ترافیکی (مدل آسیب) اجرا شد.50 درصد دم را با تیغه چاقوی جراحی بریده و به مدت 15 ثانیه در هوا قرار دهید تا از خونریزی طبیعی اطمینان حاصل شود.علاوه بر این، نمونه های آزمایشی با اعمال فشار (Ct، Cs، Ch NFRCS و Cp NFRCS) روی دم موش قرار داده شد.خونریزی و PCT برای نمونه های آزمایش (n=3) 17،45 گزارش شد.
اثربخشی کنترل فشار NFRCS در نبرد بر روی مدلی از شریان فمورال سطحی مورد بررسی قرار گرفت.شریان فمورال نمایان می شود، با تروکار 24G سوراخ می شود و در عرض 15 ثانیه خونریزی می کند.پس از مشاهده خونریزی کنترل نشده، نمونه آزمایش با فشار وارد شده در محل سوراخ قرار می گیرد.بلافاصله پس از استفاده از نمونه آزمایش، زمان لخته شدن ثبت شد و کارایی هموستاتیک تا 5 دقیقه بعد مشاهده شد.همین روش با Cs و Ct46 تکرار شد.
داولینگ و همکاران47 یک مدل آسیب کبدی را برای ارزیابی پتانسیل هموستاتیک مواد هموستاتیک در زمینه خونریزی حین عمل پیشنهاد کرد.BCT برای نمونه‌های Ct (کنترل منفی)، چارچوب Cs (کنترل مثبت)، نمونه‌های Ch NFRCS و نمونه‌های Cp NFRCS ثبت شد.ورید اجوف فوق کبدی موش صحرایی با انجام لاپاراتومی میانه در معرض قرار گرفت.پس از آن، قسمت انتهایی لوب چپ با قیچی بریده شد.با تیغه چاقوی جراحی بر روی کبد ایجاد کنید و اجازه دهید برای چند ثانیه خونریزی کند.نمونه های تست Ch NFRCS و Cp NFRCS با وزن دقیق بدون فشار مثبت بر روی سطح آسیب دیده قرار داده شد و BCT ثبت شد.گروه کنترل (Ct) سپس فشار وارد کرد و سپس Cs 30 s47 را بدون شکستن آسیب اعمال کرد.
سنجش‌های التیام زخم در داخل بدن با استفاده از یک مدل زخم برش برای ارزیابی خواص ترمیم زخم NFRCS‌های مبتنی بر پلیمر توسعه‌یافته انجام شد.مدل‌های زخم‌های اکسیزیونی بر اساس روش‌های منتشر شده قبلی با تغییرات جزئی 19،32،48 انتخاب و انجام شدند.همه حیوانات همانطور که قبلا توضیح داده شد بیهوش شدند.از پانچ بیوپسی (12 میلی متر) برای ایجاد یک برش عمیق دایره ای در پوست پشت استفاده کنید.محل‌های زخم آماده‌شده با Cs (کنترل مثبت)، Ct (با تشخیص اینکه پدهای پنبه‌ای در بهبودی اختلال ایجاد می‌کنند)، Ch NFRCS و Cp NFRCS (گروه آزمایش) و یک کنترل منفی بدون هیچ درمانی پوشانده شدند.در هر روز مطالعه، سطح زخم در همه موش‌ها اندازه‌گیری شد.از یک دوربین دیجیتال برای گرفتن عکس از محل زخم استفاده کنید و یک پانسمان جدید بپوشید.درصد بسته شدن زخم با فرمول زیر اندازه گیری شد:
بر اساس درصد بسته شدن زخم در روز دوازدهم مطالعه، پوست موش بهترین گروه ((Cp NFRCS) و گروه کنترل) برداشته شد و با رنگ‌آمیزی H&E و رنگ‌آمیزی تری کروم ماسون مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس درصد بسته شدن زخم در روز دوازدهم مطالعه، پوست موش بهترین گروه ((Cp NFRCS) و گروه کنترل) برداشته شد و با رنگ‌آمیزی H&E و رنگ‌آمیزی تری کروم ماسون مورد بررسی قرار گرفت.بر اساس درصد بسته شدن زخم در روز دوازدهم مطالعه، پوست موش های صحرایی بهترین گروه ((Cp NFRCS) و گروه کنترل) برداشته شد و با رنگ آمیزی با هماتوکسیلین-ائوزین و ماسون تری کروم مورد بررسی قرار گرفت.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大迧褌分比迧迌Ma&H sson三色染色研究.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组)的大连褌茓H的大连褼分眳组）موش ها در بهترین گروه ((Cp NFRCS) و گروه کنترل) برای رنگ آمیزی هماتوکسیلین-ائوزین و رنگ آمیزی تری کروم ماسون بر اساس درصد بسته شدن زخم در روز 12 مطالعه جدا شدند.روش رنگ‌آمیزی اجرا شده طبق روش‌هایی که قبلاً توضیح داده شده بود انجام شد.به طور خلاصه، پس از تثبیت در فرمالین 10 درصد، نمونه ها با استفاده از یک سری الکل های درجه بندی شده آبگیری شدند.از یک میکروتوم برای به دست آوردن بخش های نازک (ضخامت 5 میکرومتر) از بافت برداشته شده استفاده کنید.مقاطع سریال نازک کنترل و Cp NFRCS با هماتوکسیلین و ائوزین برای مطالعه تغییرات هیستوپاتولوژیک تحت درمان قرار گرفتند.از رنگ تری کروم ماسون برای تشخیص تشکیل فیبرهای کلاژن استفاده شد.نتایج به‌دست‌آمده به‌طور کورکورانه توسط آسیب‌شناسان مورد مطالعه قرار گرفت.
پایداری نمونه‌های Cp NFRCS در دمای اتاق (2 ± 25 درجه سانتی گراد / 5 ± 60 درصد RH 5 %) به مدت 12 ماه مورد مطالعه قرار گرفت.Cp NFRCS (تغییر رنگ سطحی و رشد میکروبی) به صورت بصری بررسی و از نظر مقاومت در برابر سایش و BCT مطابق روش‌های فوق که در بخش مواد و روش‌ها ذکر شده است، مورد آزمایش قرار گرفت.
مقیاس پذیری و تکرارپذیری Cp NFRCS با تهیه Cp NFRCS با اندازه 15×15 سانتی متر مربع بررسی شد.علاوه بر این، نمونه‌های 30 میلی‌گرمی (5=n) از فراکسیون‌های مختلف Cp NFRCS جدا شدند و BCT نمونه‌های مورد مطالعه همانطور که قبلاً در بخش روش‌ها توضیح داده شد، ارزیابی شد.
ما سعی کرده‌ایم اشکال و ساختارهای مختلفی را با استفاده از ترکیبات Cp NFRCS برای کاربردهای مختلف زیست‌پزشکی توسعه دهیم.چنین اشکال یا پیکربندی هایی شامل سواب های مخروطی برای خونریزی بینی، روش های دندانپزشکی و سواب های استوانه ای برای خونریزی واژینال است.
تمامی مجموعه داده ها به صورت میانگین ± انحراف استاندارد بیان شده و با استفاده از Prism 5.03 (GraphPad, San Diego, CA, USA) و سپس آزمون مقایسه چندگانه بونفرونی (*p<0.05) آنالیز شدند.
تمام مراحل انجام شده در مطالعات انسانی مطابق با استانداردهای مؤسسه و شورای تحقیقات ملی و همچنین اعلامیه هلسینکی 1964 و اصلاحات بعدی آن یا استانداردهای اخلاقی مشابه بود.همه شرکت کنندگان در مورد ویژگی های مطالعه و ماهیت داوطلبانه آن مطلع شدند.داده های شرکت کننده پس از جمع آوری محرمانه باقی می ماند.پروتکل آزمایشی TEG در شرایط آزمایشگاهی توسط کمیته اخلاق نهادی کالج پزشکی کاستوربا، مانیپال، کارناتاکا (IEC: 674/2020) بررسی و تایید شده است.داوطلبان برای جمع آوری نمونه خون رضایت آگاهانه امضا کردند.
تمام مراحل انجام شده در مطالعات حیوانی مطابق با دانشکده پزشکی Kastuba، موسسه آموزش عالی Manipal، Manipal (IAEC/KMC/69/2020) انجام شد.تمام آزمایش‌های حیوانی طراحی‌شده مطابق با دستورالعمل‌های کمیته کنترل و نظارت بر آزمایش‌های حیوانی (CPCSEA) انجام شد.همه نویسندگان دستورالعمل های ARRIVE را دنبال می کنند.
طیف FTIR تمام NFRCS آنالیز و با طیف کیتوزان نشان داده شده در شکل 2A مقایسه شد.پیک‌های طیفی مشخصه کیتوزان (ثبت‌شده) در 3437 سانتی‌متر-1 (کشش OH و NH، همپوشانی)، 2945 و 2897 سانتی‌متر-1 (کشش CH)، 1660 سانتی‌متر-1 (کرنش NH2)، 1589 سانتی‌متر-1 (خمش N–H)، کشش N–H، 10-10 سانتی‌متر (خمش N–H)، 10-10 سانتی‌متر خمش هیدروکسیل ثانویه)، 993 cm-1 (کشش CO، Bo-OH) 52.53.54.جدول تکمیلی S1 مقادیر طیف جذبی FTIR NFRCS را برای کیتوزان (گزارشگر)، کیتوزان خالص، Cm، Ch و Cp نشان می دهد.طیف FTIR تمام NFRCS (Cm، Ch و Cp) همان نوارهای جذب مشخصه کیتوزان خالص را بدون هیچ تغییر قابل توجهی نشان داد (شکل 2A).نتایج FTIR عدم وجود فعل و انفعالات شیمیایی یا فیزیکی بین پلیمرهای مورد استفاده برای توسعه NFRCS را تایید کرد، که نشان می دهد پلیمرهای مورد استفاده بی اثر هستند.
خصوصیات آزمایشگاهی Cm NFRCS، Ch NFRCS، Cp NFRCS و Cs.(A) نشان دهنده طیف ترکیبی FTIR از ترکیبات کیتوزان و Cm NFRCS، Ch NFRCS و Cp NFRCS تحت فشرده سازی است.(ب) الف) نرخ جذب NFRCS Cm، Ch، Cp و Cg در خون کامل (n = 3).نمونه‌های Ct BAR بالاتری را نشان دادند زیرا سواب پنبه‌ای راندمان جذب بالاتری دارد.ب) خون پس از جذب خون تصویر نمونه جذب شده.نمایش گرافیکی BCT نمونه آزمایشی C (Cp NFRCS بهترین BCT را داشت (15 ثانیه، n = 3)). داده ها در C، D، E، و G به عنوان میانگین ± SD نشان داده شد، و نوارهای خطا نشان دهنده SD، ***p <0.0001 است. داده ها در C، D، E، و G به عنوان میانگین ± SD نشان داده شد، و نوارهای خطا نشان دهنده SD، ***p <0.0001 است. Данные во C، D، E و G ارائه می‌کند که среднее ± استاندارد отклонение، а طرح‌های خطاناهي پیشنهادی، ***p <0,0001. داده ها در C، D، E و G به صورت میانگین ± انحراف استاندارد ارائه می شوند و نوارهای خطا نشان دهنده انحراف استاندارد، ***p<0.0001 است. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p <0.0001。 C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p <0.0001。 Данные در C، D، E و G نشان می دهد که دارای معناداری ± استاندارد отклонение، طرح های اشتباهی представляют стандартное отклонение, ***p <0,0001. داده ها در C، D، E و G به صورت میانگین ± انحراف استاندارد نشان داده می شوند، نوارهای خطا نشان دهنده انحراف استاندارد هستند، ***p<0.0001.