Kiitos vierailustasi Nature.comissa.Käyttämässäsi selainversiossa on rajoitettu CSS-tuki.Parhaan kokemuksen saamiseksi suosittelemme käyttämään päivitettyä selainta (tai poistamaan Yhteensopivuustila käytöstä Internet Explorerissa).Sillä välin varmistaaksemme jatkuvan tuen hahmonnamme sivuston ilman tyylejä ja JavaScriptiä.
Hallitsematon verenvuoto on yksi yleisimmistä kuolinsyistä.Nopean hemostaasin saavuttaminen varmistaa kohteen selviytymisen ensiapuna taistelussa, liikenneonnettomuuksissa ja kuolemien vähentämisoperaatioissa.Nanohuokoinen kuituvahvistettu komposiittirunko (NFRCS), joka on johdettu yksinkertaisesta hemostaattista kalvoa muodostavasta koostumuksesta (HFFC) jatkuvana faasina, voi laukaista ja parantaa hemostaasia.NFRCS:n kehitys perustuu sudenkorennon siiven suunnitteluun.Sudenkorennon siipirakenne koostuu poikittaisista ja pitkittäisistä siipistä, ja siipien kalvot on yhdistetty toisiinsa mikrorakenteen eheyden säilyttämiseksi.HFFC pinnoittaa tasaisesti kuidun pinnan nanometrin paksuisella kalvolla ja yhdistää satunnaisesti jakautuneen puuvillan paksuuden (Ct) (dispersiofaasi) muodostaen nanohuokoisen rakenteen.Jatkuvan ja hajallaan olevan faasin yhdistelmä alentaa tuotteen kustannuksia kymmenen kertaa verrattuna kaupallisesti saataviin tuotteisiin.Modifioituja NFRCS:iä (tamponeja tai rannekkeita) voidaan käyttää useissa biolääketieteen sovelluksissa.In vivo -tutkimukset ovat päätyneet siihen, että kehitetty Cp NFRCS laukaisee ja tehostaa hyytymisprosessia levityskohdassa.NFRCS voi moduloida mikroympäristöä ja toimia solutasolla nanohuokoisen rakenteensa ansiosta, mikä johtaa parempaan haavan paranemiseen leikkaushaavamallissa.
Hallitsematon verenvuoto taistelu-, intraoperatiivisissa ja hätätilanteissa voi muodostaa vakavan uhan haavoittuneen hengelle1.Nämä tilat johtavat edelleen perifeerisen verisuonten vastuksen yleiseen lisääntymiseen, mikä johtaa verenvuotoiseen sokkiin.Asianmukaisia ​​toimenpiteitä verenvuodon hillitsemiseksi leikkauksen aikana ja sen jälkeen pidetään mahdollisesti hengenvaarallisena2,3.Suurten verisuonten vaurioituminen johtaa massiiviseen verenhukkaan, minkä seurauksena kuolleisuus on ≤ 50 % taistelussa ja 31 % leikkauksen aikana1.Massiivinen verenhukka johtaa kehon tilavuuden laskuun, mikä vähentää sydämen minuuttitilavuutta.Perifeerisen verisuonten kokonaisvastuksen lisääntyminen ja asteittainen mikroverenkierron heikkeneminen johtavat hypoksiaan elämää ylläpitävissä elimissä.Hemorraginen sokki voi ilmetä, jos tila jatkuu ilman tehokasta toimenpiteitä1,4,5.Muita komplikaatioita ovat hypotermian ja metabolisen asidoosin eteneminen sekä hyytymisprosessia estävä hyytymishäiriö.Vaikeaan verenvuotoiseen sokkiin liittyy suurempi kuolemanriski6,7,8.Asteen III (progressiivinen) sokissa verensiirto on välttämätöntä potilaan selviytymiselle leikkauksen sisäisen ja postoperatiivisen sairastuvuuden ja kuolleisuuden aikana.Kaikkien edellä mainittujen hengenvaarallisten tilanteiden voittamiseksi olemme kehittäneet nanohuokoisen kuituvahvisteisen komposiittitelineen (NFRCS), joka hyödyntää minimaalista polymeeripitoisuutta (0,5 %) käyttämällä vesiliukoisten hemostaattisten polymeerien yhdistelmää.
Kuitulujitteen avulla voidaan kehittää kustannustehokkaita tuotteita.Satunnaisesti järjestetyt kuidut muistuttavat sudenkorennon siiven rakennetta, ja niitä tasapainottavat siipien vaaka- ja pystyraidat.Siiven poikittais- ja pituussuuntaiset suonet ovat yhteydessä siiven kalvoon (kuva 1).NFRCS koostuu vahvistetusta Ct:stä ​​telinejärjestelmänä, jolla on parempi fyysinen ja mekaaninen lujuus (kuva 1).Edullisuuden ja ammattitaidon vuoksi kirurgit käyttävät mieluiten puuvillalangan mittareita (Ct) leikkauksissa ja sidoksissa. Näin ollen, kun otetaan huomioon sen monet edut, mukaan lukien > 90 % kiteinen selluloosa (tehostaa hemostaattista aktiivisuutta), Ct:tä käytettiin NFRCS9,10:n luustojärjestelmänä. Näin ollen, kun otetaan huomioon sen monet edut, mukaan lukien > 90 % kiteinen selluloosa (tehostaa hemostaattista aktiivisuutta), Ct:tä käytettiin NFRCS9,10:n luustojärjestelmänä. Следовательно, учитывая его многочисленные преимущества, в том числе > 90% кристаллической целлютеской целлютеской целлютеспуоечылозы статической активности), Ct использовали в качестве скелетной системы NFRCS9,10. Siksi Ct:tä käytettiin NFRCS-runkojärjestelmänä, kun otetaan huomioon sen monet edut, mukaan lukien >90 % kiteistä selluloosaa (jossa mukana lisääntynyt hemostaattinen aktiivisuus).因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止觀滴（櫀止觀洢,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90 %Siksi Ct:tä käytettiin NFRCS9,10:n tukikehyksenä, kun otetaan huomioon sen monet edut, mukaan lukien yli 90 % kiteinen selluloosa (auttaa lisäämään hemostaattista aktiivisuutta).Ct päällystettiin pinnallisesti (nanopaksua kalvon muodostumista havaittiin) ja yhdistettiin hemostaattisen kalvon muodostavan koostumuksen (HFFC) kanssa.HFFC toimii kuin matrigeeli, joka pitää satunnaisesti sijoitettua Ct:tä yhdessä.Kehitetty malli välittää jännityksen hajafaasin sisällä (vahvistuskuidut).Hyvän mekaanisen lujuuden omaavia nanohuokoisia rakenteita on vaikea saada minimaalisilla polymeeripitoisuuksilla.Lisäksi ei ole helppoa räätälöidä erilaisia ​​muotteja erilaisiin biolääketieteen sovelluksiin.
Kuvassa on kaavio NFRCS-suunnittelusta, joka perustuu sudenkorennon siipirakenteeseen (A).Tässä kuvassa on vertaileva analogia sudenkorennon siipirakenteesta (siiven leikkaavat ja pitkittäiset suonet ovat yhteydessä toisiinsa) ja poikkileikkausmikrovalokuva Cp NFRCS:stä (B).NFRCS:n kaavamainen esitys.
NFRC:t kehitettiin käyttämällä HFFC:tä jatkuvana vaiheena edellä mainittujen rajoitusten korjaamiseksi.HFFC koostuu erilaisista kalvoa muodostavista hemostaattisista polymeereistä, mukaan lukien kitosaani (pääasiallisena hemostaattisena polymeerinä) ja metyyliselluloosa (MC), hydroksipropyylimetyyliselluloosa (HPMC 50 cp) ja polyvinyylialkoholi (PVA)) (125 kDa) tukipolymeerinä, joka edistää veritulpan muodostumista.muodostus.Polyvinyylipyrrolidiini K30 (PVP K30) lisäys paransi NFRCS:n kosteuden absorptiokykyä.Polyetyleeniglykoli 400:aa (PEG 400) lisättiin parantamaan polymeerin silloittumista sidotuissa polymeeriseoksissa.Kolmea erilaista hemostaattista HFFC-koostumusta (Cm HFFC, Ch HFFC ja Cp HFFC), nimittäin kitosaania MC:n kanssa (Cm), kitosaania HPMC:n kanssa (Ch) ja kitosaania PVA:n kanssa (Cp), levitettiin Ct:lle.Useat in vitro ja in vivo -karakterisointitutkimukset ovat vahvistaneet NFRCS:n hemostaattisen ja haavan paranemisaktiivisuuden.NFRCS:n tarjoamien komposiittimateriaalien avulla voidaan räätälöidä erilaisia ​​rakennustelineitä erityistarpeita vastaaviksi.
Lisäksi NFRCS:ää voidaan muokata sidokseksi tai rullaksi peittämään koko alaraajojen ja muiden kehon osien vamma-alueen.Erityisesti raajavammojen torjuntaan suunniteltu NFRCS-malli voidaan muuttaa puolikäsivarreksi tai koko jalaksi (lisäkuva S11).NFRCS:stä voidaan tehdä kudosliimalla ranneke, jolla voidaan pysäyttää verenvuoto vakavista itsemurhavammoista.Päätavoitteemme on kehittää mahdollisimman vähän polymeeriä sisältävä NFRCS, joka voidaan toimittaa suurelle väestölle (köyhyysrajan alapuolelle) ja joka voidaan sijoittaa ensiapulaukkuun.Yksinkertainen, tehokas ja taloudellinen suunnittelu, NFRCS hyödyttää paikallisia yhteisöjä ja sillä voi olla maailmanlaajuisia vaikutuksia.
Kitosaani (molekyylipaino 80 kDa) ja amarantti ostettiin Merckiltä, ​​Intiasta.Hydroksipropyylimetyyliselluloosa 50 Cp, polyetyleeniglykoli 400 ja metyyliselluloosa ostettiin yhtiöltä Loba Chemie Pvt.LLC, Mumbai.Polyvinyylialkoholi (molekyylipaino 125 kDa) (87-90 % hydrolysoitu) hankittiin National Chemicalsilta, Gujaratista.Polyvinyylipyrrolidiini K30 ostettiin Molychemilta, Mumbaista, steriilit vanupuikkoja ostettiin Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd.:ltä, Tamil Nadusta, Milli Q -vedellä (Direct-Q3 water purification system, Merck, Intia) kantajana.
NFRCS kehitettiin käyttämällä lyofilisointimenetelmää11,12.Kaikki HFFC-koostumukset (taulukko 1) valmistettiin käyttämällä mekaanista sekoitinta.Valmista 0,5-prosenttinen kitosaaniliuos käyttämällä 1-prosenttista etikkahappoa vedessä sekoittamalla jatkuvasti nopeudella 800 rpm mekaanisella sekoittimella.Taulukossa 1 ilmoitettu polymeerin tarkka paino lisättiin kitosaaniliuokseen ja sekoitettiin, kunnes saatiin kirkas polymeeriliuos.PVP K30 ja PEG 400 lisättiin tuloksena saatuun seokseen taulukossa 1 esitetyt määrät ja sekoitusta jatkettiin, kunnes saatiin kirkas viskoosi polymeeriliuos.Tuloksena olevaa polymeeriliuoshaudetta sonikoitiin 60 minuuttia loukkuun jääneiden ilmakuplien poistamiseksi polymeeriseoksesta.Kuten lisäkuvassa S1 (b), Ct jakautui tasaisesti jokaiseen kuoppaan 6-kuoppaisella levyllä (muotilla), jota oli täydennetty 5 ml:lla HFFC:tä.
Kuusikuoppalevyä sonikoitiin 60 minuutin ajan HFFC:n tasaisen kostutuksen ja jakautumisen saavuttamiseksi Ct-verkossa.Pakasta sitten kuusikuoppainen levy -20 °C:ssa 8-12 tunniksi.Pakastelevyjä lyofilisoitiin 48 tuntia erilaisten NFRCS-formulaatioiden saamiseksi.Samalla menetelmällä valmistetaan erilaisia ​​muotoja ja rakenteita, kuten tamponeja tai sylinterimäisiä tamponeja tai muita muotoja eri käyttötarkoituksiin.
Tarkasti punnittu kitosaani (80 kDa) (3 %) liuotetaan 1-prosenttiseen etikkahappoon magneettisekoittimella.Saatuun kitosaaniliuokseen lisättiin 1 % PEG 400 ja sekoitettiin 30 minuuttia.Kaada saatu liuos neliön tai suorakaiteen muotoiseen astiaan ja pakasta -80 °C:ssa 12 tuntia.Pakastettuja näytteitä lyofilisoitiin 48 tuntia huokoisen Cs13:n saamiseksi.
Kehitetylle NFRCS:lle tehtiin kokeita käyttäen Fourier-muunnos-infrapunaspektroskopiaa (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Tokio, Japani) kitosaanin kemiallisen yhteensopivuuden varmistamiseksi muiden polymeerien kanssa14,15.Kaikkien testattujen näytteiden FTIR-spektrit (spektrialueen leveys 400 - 4000 cm-1) saatiin suorittamalla 32 skannausta.
Veren absorptionopeus (BAR) kaikille formulaatioille arvioitiin käyttämällä menetelmää, jonka ovat kuvanneet Chen et ai.16 pienin muutoksin.Kaikkien koostumusten kehitetyt NFRK:t kuivattiin tyhjöuunissa 105 °C:ssa yön yli jäännösliuottimen poistamiseksi.30 mg NFRCS (alkuperäinen näytteen paino – W0) ja 30 mg Ct (positiivinen kontrolli) laitettiin erillisiin astioihin, jotka sisälsivät esiseosta 3,8 % natriumsitraattia.Ennalta määrätyin aikavälein eli 5, 10, 20, 30, 40 ja 60 sekunnin välein NFRCS:t poistettiin ja niiden pinnat puhdistettiin imeytymättömästä verestä asettamalla näytteet Ct:lle 30 sekunniksi.NFRCS 16:n absorboiman veren lopullinen paino otettiin huomioon (W1) kullakin aikapisteellä.Laske BAR-prosentti käyttämällä seuraavaa kaavaa:
Veren hyytymisaika (BCT) määritettiin Wang et ai.17 .Kokoveren (rotan veri esisekoitettu 3,8 % natriumsitraatilla) hyytymiseen tarvittava aika NFRCS:n läsnä ollessa laskettiin testinäytteen BCT:nä.Eri NFRCS-komponentit (30 mg) laitettiin 10 ml:n kierrekorkisiin pulloihin ja inkuboitiin 37 °C:ssa.Pulloon lisättiin verta (0,5 ml) ja 0,3 ml 0,2 M CaCl2:a veren hyytymisen aktivoimiseksi.Lopuksi käännä pullo ylösalaisin 15 sekunnin välein (180° asti), kunnes muodostuu kiinteä hyytymä.Otoksen BCT on arvioitu käännösten lukumäärällä17,18.BCT:n perusteella valittiin kaksi optimaalista koostumusta NFRCS:stä Cm, Ch ja Cp myöhempiä karakterisointitutkimuksia varten.
Ch NFRCS- ja Cp NFRCS -koostumusten BCT määritettiin toteuttamalla Li et ai.19 .Aseta 15 x 15 mm2 Ch NFRCS, Cp NFRCS ja Cs (positiivinen kontrolli) erillisiin petrimaljoihin (37 °C).Veri, joka sisälsi 3,8 % natriumsitraattia, sekoitettiin 0,2 M CaCl2:n kanssa tilavuussuhteessa 10:1 veren hyytymisprosessin aloittamiseksi.20 ui 0,2 M CaCl2-rotan veriseosta levitettiin näytteen pinnalle ja asetettiin tyhjään petrimaljaan.Kontrolli oli tyhjiin petrimaljoihin kaadettu verta ilman Ct.Lopeta hyytyminen 0, 3 ja 5 minuutin välein lisäämällä 10 ml deionisoitua (DI) vettä astian sisältävään näytteeseen häiritsemättä hyytymää.Hyytymättömät punasolut (erytrosyytit) läpikäyvät hemolyysin deionisoidun veden läsnä ollessa ja vapauttavat hemoglobiinia.Hemoglobiini eri ajankohtina (HA(t)) mitattiin 540 nm:ssä (λmax hemoglobiini) käyttämällä UV-Vis-spektrofotometriä.Vertailustandardiksi otettiin hemoglobiinin (AH(0)) absoluuttinen absorptio 0 minuutissa 20 ul:ssa verta 10 ml:ssa deionisoitua vettä.Hyytyneen veren suhteellinen hemoglobiininotto (RHA) laskettiin suhteesta HA(t)/HA(0) käyttämällä samaa verierää.
Käyttämällä tekstuurianalysaattoria (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, USA) määritettiin NFRK:n tarttumisominaisuudet vaurioituneeseen kudokseen.Paina avopohjainen lieriömäinen vuoka porsaan ihon sisäpuolta vasten (ilman rasvakerrosta).Näytteet (Ch NFRCS ja Cp NFRCS) levitettiin kanyylin kautta sylinterimäisiin muotteihin tarttuvuuden luomiseksi sian ihoon.3 minuutin huoneenlämpötilassa (RT) (25 °C) inkuboinnin jälkeen NFRCS-liimauslujuus rekisteröitiin vakionopeudella 0,5 mm/s.
Kirurgisten tiivisteiden pääominaisuus on lisätä veren hyytymistä ja vähentää samalla verenhukkaa.Häviötön koagulaatio NFRCS:ssä arvioitiin käyttämällä aiemmin julkaistua menetelmää pienin muutoksin 19 .Tee mikrosentrifugiputki (2 ml) (sisähalkaisija 10 mm), jossa on 8 × 5 mm2 reikä sentrifugiputken toiselle puolelle (joka edustaa avointa haavaa).NFRCS:ää käytetään aukon sulkemiseen ja teippiä ulkoreunojen tiivistämiseen.Lisää 20 µl 0,2 M CaCl2:ta mikrosentrifugiputkeen, joka sisältää 3,8 % natriumsitraattiesiseoksen.10 minuutin kuluttua mikrosentrifugiputket poistettiin maljoilta ja määritettiin maljojen massan kasvu johtuen veren ulosvirtauksesta NFRK:sta (n = 3).Verenmenetys Ch NFRCS ja Cp NFRCS verrattiin Cs.
NFRCS:n märkäeheys määritettiin Mishran ja Chaudhary21:n kuvaaman menetelmän perusteella pienin muutoksin.Aseta NFRCS 100 ml:n Erlenmeyer-pulloon, jossa on 50 ml vettä, ja pyöritä 60 s muodostamatta yläosaa.Näytteiden visuaalinen tarkastus ja fyysisen eheyden priorisointi keräyksen perusteella.
HFFC:n sitoutumisvoimakkuutta Ct:hen tutkittiin käyttämällä aiemmin julkaistuja menetelmiä pienin muutoksin.Pintapinnoitteen eheys arvioitiin altistamalla NFRK akustisille aalloille (ulkoinen ärsyke) milliQ-veden (Ct) läsnä ollessa.Kehitetty NFRCS Ch NFRCS ja Cp NFRCS asetettiin dekantterilasiin, joka oli täytetty vedellä, ja niitä sonikoitiin 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 ja 30 minuuttia, vastaavasti.Kuivauksen jälkeen NFRCS:n alkuperäisen ja lopullisen painon välistä prosentuaalista eroa käytettiin materiaalihäviön (HFFC) laskemiseen.In vitro BCT tuki edelleen pintamateriaalien sitoutumislujuutta tai menetystä.HFFC:n Ct:hen sitoutumisen tehokkuus tarjoaa veren hyytymisen ja elastisen pinnoitteen Ct22:n pinnalle.
Kehittyneen NFRCS:n homogeenisuus määritettiin satunnaisesti valituista NFRCS:n yleisistä paikoista otettujen näytteiden BCT:llä (30 mg).Noudata aiemmin mainittua BCT-menettelyä määrittääksesi NFRCS-yhteensopivuus.Kaikkien viiden näytteen välinen läheisyys varmistaa tasaisen pinnan peiton ja HFFC-kertymän Ct-verkossa.
Nimellinen verikontaktialue (NBCA) määritettiin, kuten aiemmin on raportoitu joillakin muutoksilla.Koaguloi veri puristamalla 20 µl verta Ct:n, Ch NFRCS:n, Cp NFRCS:n ja Cs:n kahden pinnan väliin.1 tunnin kuluttua stentin kaksi osaa erotettiin ja hyytymän pinta-ala mitattiin manuaalisesti.Kolmen toiston keskiarvoksi katsottiin NBCA NFRCS19.
Dynamic Vapor Sorption (DVS) -analyysiä käytettiin arvioimaan NFRCS:n tehokkuutta absorboida vettä ulkoisesta ympäristöstä tai koagulaation käynnistämisestä vastaavalta vauriopaikalta.DVS arvioi tai tallentaa höyryn oton ja häviön näytteessä gravimetrisesti käyttämällä ultraherkkää vaakaa, jonka massaresoluutio on ±0,1 µg.Osahöyrynpaine (suhteellinen kosteus) syntyy elektronisella massavirran säätimellä näytteen ympärille sekoittamalla tyydyttyneitä ja kuivia kantajakaasuja. Euroopan farmakopean ohjeiden mukaisesti näytteiden kosteudenottoprosentin perusteella näytteet luokiteltiin 4 luokkaan (0–0,012 % w/w – ei-hygroskooppinen, 0,2–2 % w/w lievästi hygroskooppinen, 2–15 % kohtalaisen hygroskooppinen ja > 15 %)2 erittäin hygroskooppinen.3 Euroopan farmakopean ohjeiden mukaisesti näytteiden kosteudenottoprosentin perusteella näytteet luokiteltiin 4 luokkaan (0–0,012 % w/w – ei-hygroskooppinen, 0,2–2 % w/w lievästi hygroskooppinen, 2–15 % kohtalaisen hygroskooppinen ja > 15 %)2 erittäin hygroskooppinen.3Näytteet jaettiin Euroopan farmakopean suositusten mukaisesti 4 luokkaan näytteiden kosteuden imeytymisprosentin mukaan (0–0,012 % w/w – ei-hygroskooppinen, 0,2–2 % w/w lievästi hygroskooppinen, 2–15 %).% умеренно гигроскопичен и > 15 % очень гигроскопичен)23. % kohtalaisen hygroskooppinen ja > 15 % erittäin hygroskooppinen)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（0-0,012 % w/v-2% w. /w 轻微吸湿性、2-15 % 适度吸湿，> 15 % 非常吸湿）23.根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分伺 分为 分为 分为 分为 分为 分为 0% .为 分为 .湿 性 、 、 、 0,2-2 % W/w 轻微 、 2-15 % 适度 吸湿 ，> 15 %非常吸湿）23.Euroopan farmakopean suositusten mukaisesti näytteet jaetaan 4 luokkaan näytteen imemän kosteusprosentin mukaan (0-0,012 painoprosenttia – ei-hygroskooppinen, 0,2–2 painoprosenttia lievästi hygroskooppinen, 2–15 painoprosenttia).% умеренно гигроскопичен, > 15 % очень гигроскопичен) 23. % kohtalaisen hygroskooppinen, > 15 % erittäin hygroskooppinen) 23.NFCS X NFCS:n ja TsN NFCS:n hygroskooppinen tehokkuus määritettiin analysaattorilla DVS TA TGA Q5000 SA.Tämän prosessin aikana saatiin ajoaika, suhteellinen kosteus (RH) ja reaaliaikainen näytteen paino 25 °C24:ssa.Kosteuspitoisuus lasketaan tarkalla NFRCS-massaanalyysillä käyttämällä seuraavaa yhtälöä:
MC on NFRCS-kosteus.m1 – tulehduskipulääkkeiden kuivapaino.m2 on reaaliaikainen NFRCS-massa tietyssä suhteellisessa kosteudessa.
Kokonaispinta-ala arvioitiin typen adsorptiokokeella nestemäisellä typellä sen jälkeen, kun näytteitä oli tyhjennetty 25 °C:ssa 10 tunnin ajan (< 7 × 10–3 Torr). Kokonaispinta-ala arvioitiin typen adsorptiokokeella nestemäisellä typellä sen jälkeen, kun näytteitä oli tyhjennetty 25 °C:ssa 10 tunnin ajan (< 7 × 10–3 Torr). Общая площадь поверхности оценивалась с помощью эксперимента по адсорбции азота жидким азопослом в при 25 °С в течение 10 ч (< 7 × 10–3 Торр). Kokonaispinta-ala arvioitiin typen adsorptiokokeella nestemäisellä typellä sen jälkeen, kun näytteitä oli tyhjennetty 25 °C:ssa 10 tunnin ajan (< 7 × 10–3 Torr).在25°C 清空样品10 小时（< 7 × 10-3 Torr）后，使用液氮的氮吸附实验估计总表验估计总表在 25°C Общая площадь поверхности оценивалась с использованием экспериментов по адсорбции азота жидкии азота жидкия посомтов цов в течение 10 часов при 25°C (< 7 × 10-3 торр). Kokonaispinta-ala arvioitiin käyttämällä typen adsorptiokokeita nestemäisellä typellä sen jälkeen, kun näytteitä oli tyhjennetty 10 tunnin ajan 25 °C:ssa (< 7 x 10-3 torr).Kokonaispinta-ala, huokostilavuus ja NFRCS-huokoskoko määritettiin Quantachromella NOVA 1000e:ltä, Itävallasta, käyttäen RS 232 -ohjelmistoa.
Valmista 5 % punasoluja (suolaliuosta laimentimena) kokoverestä.Siirrä sitten erä HFFC:tä (0,25 ml) 96-kuoppaiselle levylle ja 5 % RBC-massaa (0,1 ml).Inkuboi seosta 37 °C:ssa 40 minuuttia.Punasolujen ja seerumin seosta pidettiin positiivisena kontrollina ja suolaliuoksen ja punasolujen seosta negatiivisena kontrollina.Hemagglutinaatio määritettiin Stajitzky-asteikon mukaan.Ehdotetut mittakaavat ovat seuraavat: + + + + tiheät rakeiset kiviainekset;+ + + sileät pohjatyynyt kaarevilla reunoilla;+ + sileät pohjatyynyt repeytyneillä reunoilla;+ kapeat punaiset renkaat sileiden tyynyjen reunojen ympärillä;– (negatiivinen) erillinen punainen painike 12 alemman kuopan keskellä.
NFRCS:n hemoyhteensopivuutta tutkittiin Kansainvälisen standardointijärjestön (ISO) menetelmän mukaisesti (ISO10993-4, 1999)26,27.Gravimetrinen menetelmä, jonka ovat kuvanneet Singh et ai.Pieniä muutoksia tehtiin veritulpan muodostumisen arvioimiseksi NFRCS:n läsnä ollessa tai pinnalla.500 mg Cs, Ch NFRCS ja Cp NFRCS inkuboitiin fosfaattipuskuroidussa suolaliuoksessa (PBS) 24 tuntia 37 °C:ssa.24 tunnin kuluttua PBS poistettiin ja NFRCS:ää käsiteltiin 2 ml:lla verta, joka sisälsi 3,8 % natriumsitraattia.Lisää NFRCS:n pinnalle 0,04 ml 0,1 M CaCl2:ta inkuboituihin näytteisiin.45 minuutin kuluttua lisättiin 5 ml tislattua vettä koagulaation pysäyttämiseksi.NFRK:n pinnalla oleva koaguloitunut veri käsiteltiin 36-38 % formaldehydiliuoksella.Formaldehydillä kiinnitetyt hyytymät kuivattiin ja punnittiin.Tromboosin prosenttiosuus arvioitiin laskemalla lasin paino ilman verta ja näytettä (negatiivinen kontrolli) ja lasin paino verellä (positiivinen kontrolli).
Ensimmäisenä vahvistuksena näytteet visualisoitiin optisella mikroskoopilla, jotta voidaan ymmärtää HFFC-pintapinnoitteen, Ct-yhdistetyn ja Ct-verkon kyky muodostaa huokosia.Ohuet Ch- ja Cp-osat NFRCS:stä leikattiin skalpellin terällä.Tuloksena oleva osa asetettiin lasilevylle, peitettiin peitelasilla ja reunat kiinnitettiin liimalla.Valmistettuja objektilaseja tarkasteltiin optisella mikroskoopilla ja valokuvat otettiin eri suurennoksilla.
Polymeerikerrostuminen Ct-verkoissa visualisoitiin käyttämällä fluoresenssimikroskopiaa, joka perustui menetelmään, jonka ovat kuvanneet Rice et al.29. Formulaatiossa käytetty HFFC-koostumus sekoitettiin fluoresoivaan väriaineeseen (amarantti), ja NFRCS (Ch & Cp) valmistettiin edellä mainitun menetelmän mukaisesti. Formulaatiossa käytetty HFFC-koostumus sekoitettiin fluoresoivaan väriaineeseen (amarantti), ja NFRCS (Ch & Cp) valmistettiin edellä mainitun menetelmän mukaisesti.Formulaatioon käytetty HFFC-koostumus sekoitettiin fluoresoivaan väriaineeseen (amarantti) ja NFRCS (Ch ja Cp) saatiin edellä mainitun menetelmän mukaisesti.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR斤懈Ch到的FR斤将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR斤懈Ch到的FR斤Formulaatiossa käytetty HFFC-koostumus sekoitettiin fluoresoivaan väriaineeseen (Amaranth) ja se sai NFRCS:n (Ch ja Cp), kuten aiemmin mainittiin.Saaduista näytteistä leikattiin ohuita NFRK-osia, asetettiin lasilevyille ja peitettiin peitelevyillä.Tarkkaile valmistettuja objektilaseja fluoresoivalla mikroskoopilla käyttämällä vihreää suodatinta (310-380 nm).Kuvat otettiin 4-kertaisella suurennuksella Ct-suhteiden ja ylimääräisen polymeerin kerrostumisen ymmärtämiseksi Ct-verkossa.
NFRCS Ch:n ja Cp:n pinnan topografia määritettiin käyttämällä atomivoimamikroskooppia (AFM) erittäin terävällä TESP-ulokkeella koputustilassa: 42 N/m, 320 kHz, ROC 2-5 nm, Bruker, Taiwan.Pinnan karheus määritettiin neliön keskiarvona (RMS) käyttämällä ohjelmistoa (Scanning Probe Image Processor).Erilaiset NFRCS-paikat renderöitiin 3D-kuvissa pinnan tasaisuuden tarkistamiseksi.Tietyn alueen pisteiden keskihajonta määritellään pinnan karheudeksi.RMS-yhtälöä käytettiin NFRCS31:n pinnan karheuden määrittämiseen.
FESEM-pohjaiset tutkimukset suoritettiin käyttämällä FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Tokio, jotta ymmärrettiin Ch NFRCS:n ja Cp NFRCS:n pintamorfologia, jotka osoittivat paremman BCT:n kuin Cm NFRCS:n.FESEM-tutkimus suoritettiin menetelmän mukaisesti, jonka ovat kuvanneet Zhao et ai.32 pienin muutoksin.NFRCS 20 - 30 mg Ch NFRCS ja Cp NFRCS esisekoitettiin 20 ul:aan 3,8 % natriumsitraattia, joka oli esisekoitettu rotan vereen.Verikäsiteltyihin näytteisiin lisättiin 20 μl 0,2 M CaCl2:a koagulaation käynnistämiseksi ja näytteitä inkuboitiin huoneenlämmössä 10 minuuttia.Lisäksi ylimääräiset punasolut poistettiin NFRCS-pinnalta huuhtelemalla suolaliuoksella.
Seuraavat näytteet käsiteltiin 0,1-prosenttisella glutaraldehydillä ja kuivattiin sitten kuumailmauunissa 37 °C:ssa kosteuden poistamiseksi.Kuivatut näytteet päällystettiin ja analysoitiin 32 .Muita analyysin aikana saatuja kuvia olivat hyytymien muodostuminen yksittäisten puuvillakuitujen pinnalle, polymeerin kerrostuminen Ct:n välillä, erytrosyyttien morfologia (muoto), hyytymän eheys ja punasolujen morfologia NFRCS:n läsnä ollessa.Käsittelemättömät NFRCS-alueet ja Ch- ja Cp-käsitellyt NFRCS-alueet, joita inkuboitiin veren kanssa, skannattiin alkuaineionien (natrium, kalium, typpi, kalsium, magnesium, sinkki, kupari ja seleeni) suhteen33.Vertaa alkuaine-ionien prosenttiosuuksia käsiteltyjen ja käsittelemättömien näytteiden välillä ymmärtääksesi alkuaineionien kertymistä hyytymän muodostumisen aikana ja hyytymän homogeenisuutta.
Cp HFFC -pintapäällysteen paksuus Ct-pinnalla määritettiin käyttämällä FESEM:iä.Cp NFRCS:n poikkileikkaukset leikattiin rungosta ja sputteroitiin.Tuloksena saadut sputterointipinnoitenäytteet tarkkailtiin FESEM:llä ja pintapinnoitteen paksuus mitattiin 34, 35, 36.
Röntgenmikro-CT tarjoaa korkearesoluutioisen 3D-tuhottoman kuvantamisen ja mahdollistaa NFRK:n sisäisen rakenteellisen järjestelyn tutkimisen.Micro-CT käyttää näytteen läpi kulkevaa röntgensädettä tallentaakseen näytteessä olevien röntgensäteiden paikallisen lineaarisen vaimennuskertoimen, mikä auttaa saamaan morfologista tietoa.Ct:n sisäinen sijainti Cp NFRCS:ssä ja verikäsitellyssä Cp NFRCS:ssä tutkittiin mikro-CT:llä absorptiotehokkuuden ja veren hyytymisen ymmärtämiseksi NFRCS:n läsnä ollessa37, 38, 39.Verikäsiteltyjen ja käsittelemättömien Cp NFRCS -näytteiden 3D-rakenteet rekonstruoitiin käyttämällä mikro-CT:tä (V|tome|x S240, Phoenix, Saksa).VG STUDIO-MAX -ohjelmistoversiolla 2.2 otettiin useita röntgenkuvia eri kulmista (mieluiten 360° peitto) 3D-kuvien kehittämiseksi NFRCS:ää varten.Kerätyt projektiotiedot rekonstruoitiin 3D-tilavuuskuviksi vastaavalla yksinkertaisella 3D ScanIP Academic -ohjelmistolla.
Lisäksi hyytymän jakautumisen ymmärtämiseksi NFRCS:ään lisättiin 20 ui esisekoitettua sitroitua verta ja 20 ui 0,2 M CaCl2:a veren hyytymisen käynnistämiseksi.Valmistetut näytteet jätetään kovettumaan.NFRK-pinta käsiteltiin 0,5-prosenttisella glutaraldehydillä ja kuivattiin kuumailmauunissa 30–40 °C:ssa 30 minuuttia.NFRCS:ään muodostunut verihyytymä skannattiin, rekonstruoitiin ja veritulpan 3D-kuva visualisoitiin.
Antibakteeriset määritykset suoritettiin Cp NFRCS:lle (paras verrattuna Ch NFRCS:ään) käyttämällä aiemmin kuvattua menetelmää pienin muutoksin.Cp NFRCS:n ja Cp HFFC:n antibakteerinen aktiivisuus määritettiin käyttämällä kolmea erilaista testimikro-organismia [S.aureus (gram-positiiviset bakteerit), E.coli (gram-negatiiviset bakteerit) ja valkoinen Candida (C.albicans)], jotka kasvoivat agarilla petrimaljoilla inkubaattorissa.Inokuloidaan tasaisesti 50 ml laimennettua bakteeriviljelysuspensiota pitoisuudella 105-106 CFU ml-1 agar-elatusaineeseen.Kaada väliaine petrimaljaan ja anna jähmettyä.Agarlevyn pinnalle tehtiin kuoppia HFFC:llä täyttymistä varten (3 kuoppaa HFFC:lle ja 1 negatiiviselle kontrollille).Lisää 200 µl HFFC:tä 3 kuoppaan ja 200 µl pH 7,4 PBS:ää 4. kuoppaan.Aseta petrimaljan toiselle puolelle 12 mm Cp NFRCS -kiekko jähmettyneelle agarille ja kostuta PBS:llä (pH 7,4).Siprofloksasiini-, ampisilliini- ja flukonatsolitabletteja pidetään Staphylococcus aureuksen, Escherichia colin ja Candida albicansin vertailustandardeina.Mittaa estoalue manuaalisesti ja ota digitaalinen kuva estoalueesta.
Instituution eettisen hyväksynnän jälkeen tutkimus suoritettiin Kasturba Medical College of Education and Researchissa Manipalissa, Karnatakassa, Etelä-Intiassa.In vitro TEG-kokeellinen protokolla on tarkastettu ja hyväksytty Kasturba Medical Collegen, Manipalissa, Karnatakassa sijaitsevan Institutional Ethics Committeen toimesta (IEC: 674/2020).Koehenkilöt rekrytoitiin vapaaehtoisista verenluovuttajista (18–55-vuotiaat) sairaalan veripankista.Lisäksi vapaaehtoisilta saatiin tietoinen suostumuslomake verinäytteiden ottoa varten.Natiivia TEG:tä (N-TEG) ​​käytettiin tutkimaan Cp HFFC -formulaation vaikutusta kokovereen, joka oli esisekoitettu natriumsitraatilla.N-TEG on laajalti tunnustettu roolistaan ​​hoitopisteelvytyksessä, mikä aiheuttaa kliinikoille ongelmia, koska tulokset voivat viivästyä kliinisesti merkittävästi (rutiinihyytymistestit).N-TEG-analyysi suoritettiin käyttämällä kokoverta.Kaikilta osallistujilta saatiin tietoinen suostumus ja yksityiskohtainen sairaushistoria.Tutkimukseen ei osallistunut osallistujia, joilla oli hemostaattisia tai tromboottisia komplikaatioita, kuten raskaus / synnytyksen jälkeinen tai maksasairaus.Koehenkilöt, jotka käyttivät lääkkeitä, jotka vaikuttavat hyytymiskaskadiin, suljettiin myös pois tutkimuksesta.Peruslaboratoriokokeet (hemoglobiini, protrombiiniaika, aktivoitu tromboplastiini ja verihiutaleiden määrä) suoritettiin kaikille osallistujille standardimenettelyjen mukaisesti.N-TEG määrittää verihyytymän viskoelastisuuden, hyytymän alkuperäisen rakenteen, hiukkasten vuorovaikutuksen, hyytymän vahvistumisen ja hyytymän hajoamisen.N-TEG-analyysi tarjoaa graafista ja numeerista tietoa useiden soluelementtien ja plasman yhteisvaikutuksista.N-TEG-analyysi suoritettiin kahdelle eri tilavuudelle Cp HFFC:tä (10 ui ja 50 ui).Tuloksena 1 ml sitruunahappoa sisältävää kokoverta lisättiin 10 μl:aan Cp HFFC:tä.Lisää 1 ml (Cp HFFC + sitratoitu veri), 340 µl sekoitettua verta 20 µl:aan 0,2 M CaCl2:ta, joka sisältää TEG-maljaa.Sen jälkeen TEG-maljat ladattiin TEG® 5000, US mittaamaan R, K, alfakulma, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30 % verinäytteistä Cp HFFC41:n läsnä ollessa.
In vivo -tutkimusprotokollan arvioi ja hyväksyi Institutional Animal Ethics Committee (IAEC), Kasturba School of Medicine, Manipal Institute of Higher Education, Manipal (IAEC/KMC/69/2020).Kaikki eläinkokeet suoritettiin eläinkokeiden valvonta- ja valvontakomitean (CPCSEA) suositusten mukaisesti.Kaikki in vivo NFRCS-tutkimukset (2 x 2 cm2) suoritettiin naaraspuolisilla Wistar-rotilla (paino 200-250 g).Kaikki eläimet sopeutuivat 24-26 °C:n lämpötilaan, eläimillä oli vapaa pääsy normaaliin ruokaan ja veteen ad libitum.Kaikki eläimet jaettiin satunnaisesti eri ryhmiin, jokainen ryhmä koostui kolmesta eläimestä.Kaikki tutkimukset suoritettiin kohdan Animal Studies: Report of In vivo Experiments 43 mukaisesti.Ennen tutkimusta eläimet nukutettiin antamalla intraperitoneaalisesti (ip) seosta, jossa oli 20-50 mg ketamiinia (1 painokiloa kohti) ja 2-10 mg ksylatsiinia (1 painokiloa kohti).Tutkimuksen jälkeen verenvuototilavuus laskettiin arvioimalla näytteiden alku- ja loppupainon eroa, näytteen vuototilavuudeksi otettiin kolmesta kokeesta saatu keskiarvo.
Rotan hännän amputaatiomalli otettiin käyttöön ymmärtämään NFRCS:n potentiaalia moduloida verenvuotoa traumassa, taistelussa tai liikenneonnettomuudessa (vamman malli).Leikkaa 50 % hännästä pois skalpellin terällä ja aseta se ilmaan 15 sekunniksi normaalin verenvuodon varmistamiseksi.Lisäksi koenäytteet asetettiin rotan hännän päälle käyttämällä painetta (Ct, Cs, Ch NFRCS ja Cp NFRCS).Verenvuotoa ja PCT:tä raportoitiin testinäytteillä (n = 3)17,45.
NFRCS-paineenhallinnan tehokkuutta taistelussa tutkittiin pintavaltimon mallilla.Femoraalinen valtimo paljastetaan, puhkaistaan ​​24G troakaarilla ja vuodatetaan verta 15 sekunnissa.Kun hallitsematon verenvuoto on havaittu, testinäyte asetetaan pistokohtaan paineen alla.Välittömästi testinäytteen levittämisen jälkeen hyytymisaika rekisteröitiin ja hemostaattista tehokkuutta havaittiin seuraavien 5 minuutin ajan.Sama menettely toistettiin Cs:n ja Ct46:n kanssa.
Dowling et ai.47 ehdotti maksavauriomallia hemostaattisten materiaalien hemostaattisen potentiaalin arvioimiseksi intraoperatiivisen verenvuodon yhteydessä.BCT tallennettiin Ct-näytteille (negatiivinen kontrolli), Cs-kehykselle (positiivinen kontrolli), Ch NFRCS -näytteille ja Cp NFRCS -näytteille.Rotan suprahepaattinen onttolaskimo paljastettiin suorittamalla mediaani laparotomia.Sen jälkeen vasemman lohkon distaalinen osa leikattiin pois saksilla.Tee viilto maksaan skalpellin terällä ja anna sen vuotaa muutama sekunti.Tarkasti punnitut Ch NFRCS- ja Cp NFRCS -testinäytteet asetettiin vaurioituneelle pinnalle ilman positiivista painetta ja BCT rekisteröitiin.Kontrolliryhmä (Ct) käytti sitten painetta, jota seurasi Cs 30 s47 rikkomatta vammaa.
In vivo haavan paranemismääritykset suoritettiin käyttämällä leikkaushaavamallia kehitettyjen polymeeripohjaisten NFRCS:ien haavan paranemisominaisuuksien arvioimiseksi.Leikkaushaavojen mallit valittiin ja suoritettiin aiemmin julkaistujen menetelmien mukaisesti pienin muutoksin19, 32, 48.Kaikki eläimet nukutettiin aiemmin kuvatulla tavalla.Tee selän ihoon pyöreä syvä viilto biopsialla (12 mm).Valmistetut haavakohdat sidottiin Cs:llä (positiivinen kontrolli), Ct:llä (tunnistaen, että vanutyynyt häiritsevät paranemista), Ch NFRCS:llä ja Cp NFRCS:llä (kokeellinen ryhmä) ja negatiivisella kontrollilla ilman mitään hoitoa.Jokaisena tutkimuspäivänä haavan pinta-ala mitattiin kaikista rotista.Ota digitaalikameralla kuva haava-alueesta ja laita uusi side.Haavan sulkeutumisen prosenttiosuus mitattiin seuraavalla kaavalla:
Tutkimuksen 12. päivän haavan sulkeutumisprosentin perusteella parhaan ryhmän rotan iho leikattiin ((Cp NFRCS) ja kontrolliryhmä) ja tutkittiin H&E-värjäyksellä ja Massonin trikromivärjäyksellä. Tutkimuksen 12. päivän haavan sulkeutumisprosentin perusteella parhaan ryhmän rotan iho leikattiin ((Cp NFRCS) ja kontrolliryhmä) ja tutkittiin H&E-värjäyksellä ja Massonin trikromivärjäyksellä.Tutkimuspäivän 12. päivän haavan sulkeutumisprosenttiosuuden perusteella parhaan ryhmän ((Cp NFRCS) ja kontrolliryhmän rottien iho leikattiin ja tutkittiin värjäämällä hematoksyliinieosiinilla ja Massonin trikromilla.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组&E)剄大鼤三色染色研究.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组&E)牄大鼤的大鼠眳组)Parhaan ryhmän ((Cp NFRCS) ja kontrolliryhmät) rotat leikattiin pois hematoksyliini-eosiinivärjäyksen ja Massonin trikromivärjäyksen vuoksi, joka perustui haavan sulkeutumisprosenttiin tutkimuksen päivänä 12.Toteutettu värjäysmenettely suoritettiin aiemmin kuvattujen menetelmien49,50 mukaisesti.Lyhyesti, 10-prosenttiseen formaliiniin kiinnittämisen jälkeen näytteet dehydratoitiin käyttämällä sarjaa luokiteltuja alkoholeja.Käytä mikrotomia saadaksesi ohuita (5 µm paksuisia) leikkeitä leikatusta kudoksesta.Ohuet sarjaleikkeet kontrolleista ja Cp NFRCS:stä käsiteltiin hematoksyliinillä ja eosiinilla histopatologisten muutosten tutkimiseksi.Massonin trikromiväriä käytettiin kollageenifibrillien muodostumisen havaitsemiseen.Patologit tutkivat saatuja tuloksia sokeasti.
Cp NFRCS -näytteiden stabiilisuutta tutkittiin huoneenlämpötilassa (25 °C ± 2 °C / 60 % RH ± 5 %) 12 kuukauden ajan51.Cp NFRCS (pinnan värimuutos ja mikrobikasvu) tarkastettiin visuaalisesti ja testattiin laskosten kulumisen kestävyyden ja BCT:n suhteen yllä olevien menetelmien mukaisesti, jotka on kuvattu Materiaalit ja menetelmät -osiossa.
Cp NFRCS:n skaalautuvuutta ja toistettavuutta tutkittiin valmistamalla Cp NFRCS, jonka koko oli 15×15 cm2.Lisäksi eri Cp NFRCS -fraktioista leikattiin 30 mg näytteitä (n = 5) ja tutkittujen näytteiden BCT arvioitiin aiemmin Menetelmät-osiossa kuvatulla tavalla.
Olemme yrittäneet kehittää erilaisia ​​muotoja ja rakenteita käyttämällä Cp NFRCS -koostumuksia erilaisiin biolääketieteen sovelluksiin.Tällaisia ​​muotoja tai kokoonpanoja ovat kartiomaiset vanupuikot nenäverenvuotoa varten, hammashoitotoimenpiteet ja lieriömäiset vanupuikot emättimen verenvuotoon.
Kaikki tietojoukot ilmaistaan ​​keskiarvona ± standardipoikkeama ja analysoitiin ANOVA:lla käyttäen Prism 5.03:a (GraphPad, San Diego, CA, USA), mitä seurasi Bonferronin moninkertainen vertailutesti (*p < 0,05).
Kaikki ihmistutkimuksissa suoritetut toimenpiteet olivat instituutin ja Valtion tutkimusneuvoston standardien sekä Helsingin julistuksen 1964 ja sen myöhempien muutosten tai vastaavien eettisten normien mukaisia.Kaikille osallistujille kerrottiin tutkimuksen ominaisuuksista ja sen vapaaehtoisuudesta.Osallistujien tiedot pysyvät luottamuksellisina, kun ne on kerätty.In vitro TEG-kokeellinen protokolla on tarkastettu ja hyväksytty Kasturba Medical Collegen, Manipalissa, Karnatakassa sijaitsevan Institutional Ethics Committeen toimesta (IEC: 674/2020).Vapaaehtoiset allekirjoittivat tietoisen suostumuksen verinäytteiden keräämiseen.
Kaikki eläinkokeissa tehdyt toimenpiteet suoritettiin Manipalin Manipal Institute of Higher Educationin lääketieteellisen tiedekunnan Kastuban (IAEC/KMC/69/2020) mukaisesti.Kaikki suunnitellut eläinkokeet suoritettiin eläinkokeiden valvonta- ja valvontakomitean (CPCSEA) ohjeiden mukaisesti.Kaikki kirjoittajat noudattavat ARRIVE-ohjeita.
Kaikkien NFRCS:ien FTIR-spektrit analysoitiin ja niitä verrattiin kuviossa 2A esitettyyn kitosaanispektriin.Kitosaanin tunnusomaiset spektrihuiput (tallennettu) kohdissa 3437 cm-1 (OH- ja NH-venytys, päällekkäisyys), 2945 ja 2897 cm-1 (CH-venytys), 1660 cm-1 (NH2-venymä), 1589 cm-1 (N-H-taivutus), 1157 cm-1 (N-H-taivutus), 1157 cm-1 cm-1 (-0-1 cm-1). yl), 993 cm-1 (venytys CO, Bo-OH) 52,53,54.Täydentävä taulukko S1 näyttää FTIR NFRCS -absorptiospektriarvot kitosaanille (reportteri), puhtaalle kitosaanille, Cm:lle, Ch:lle ​​ja Cp:lle.Kaikkien NFRCS:ien (Cm, Ch ja Cp) FTIR-spektrit osoittivat samat tunnusomaiset absorptiovyöhykkeet kuin puhtaalla kitosaanilla ilman merkittäviä muutoksia (kuvio 2A).FTIR-tulokset vahvistivat kemiallisten tai fysikaalisten vuorovaikutusten puuttumisen NFRCS:n kehittämiseen käytettyjen polymeerien välillä, mikä osoittaa, että käytetyt polymeerit ovat inerttejä.
Cm NFRCS:n, Ch NFRCS:n, Cp NFRCS:n ja Cs:n in vitro karakterisointi.(A) edustaa kitosaanin ja Cm NFRCS:n, Ch NFRCS:n ja Cp NFRCS:n koostumusten yhdistettyjä FTIR-spektrejä kompression alaisena.(B) a) NFRCS Cm:n, Ch:n, Cp:n ja Cg:n kokoveren ottonopeus (n = 3);Ct-näytteet osoittivat korkeamman BAR-arvon, koska vanupuikolla on korkeampi absorptiotehokkuus;b) Veri absorption jälkeen Kuva imeytyneestä näytteestä.Graafinen esitys testinäytteen C BCT:stä (Cp NFRCS:llä oli paras BCT (15 s, n = 3)). C:n, D:n, E:n ja G:n tiedot esitettiin keskiarvoina ± SD, ja virhepalkit edustavat SD:tä, ***p < 0,0001. C:n, D:n, E:n ja G:n tiedot esitettiin keskiarvoina ± SD, ja virhepalkit edustavat SD:tä, ***p < 0,0001. Данные в C, D, E и G представлены как среднее ± стандартное отклонение, а планки погрешностей представлендниртло, ***0 представлендниют 001. C:n, D:n, E:n ja G:n tiedot esitetään keskiarvona ± keskihajonna, ja virhepalkit edustavat keskihajontaa, ***p<0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. Данные в C, D, E ja G показаны как среднее значение ± стандартное отклонение, планки погрешностей представляют 0,0001. C:n, D:n, E:n ja G:n tiedot esitetään keskiarvona ± keskihajonna, virhepalkit edustavat keskihajontaa, ***p<0,0001.