Merci de visiter Nature.com.La version du navigateur que vous utilisez a un support CSS limité.Pour une expérience optimale, nous vous recommandons d'utiliser un navigateur mis à jour (ou de désactiver le mode de compatibilité dans Internet Explorer).En attendant, pour assurer un support continu, nous rendrons le site sans styles ni JavaScript.
Un environnement de soins de santé contaminé joue un rôle important dans la propagation d'organismes multirésistants (MDR) et de C. difficile.Le but de cette étude était d'évaluer l'effet de l'ozone produit par un réacteur à plasma à décharge à barrière diélectrique (DBD) sur l'action d'Enterococcus faecalis (VRE) résistant à la vancomycine, Klebsiella pneumoniae (CRE) résistant aux carbapénèmes, les effets antibactériens résistants aux carbapénèmes de différents matériaux contaminés par Pseudomonas spp.Pseudomonas aeruginosa (CRPA), Acinetobacter baumannii résistant aux carbapénèmes (CRAB) et les spores de Clostridium difficile.Divers matériaux contaminés par des spores VRE, CRE, CRPA, CRAB et C. difficile ont été traités avec de l'ozone à diverses concentrations et durées d'exposition.La microscopie à force atomique (AFM) a démontré une modification de surface des bactéries après traitement à l'ozone.Lorsqu'une dose de 500 ppm d'ozone a été appliquée à l'ERV et au CRAB pendant 15 minutes, une diminution d'environ 2 log10 ou plus a été observée dans l'acier inoxydable, le tissu et le bois, et une diminution de 1 à 2 log10 a été observée dans le verre et le plastique.Les spores de C. difficile se sont avérées plus résistantes à l'ozone que tous les autres organismes testés.Sur AFM, après traitement à l'ozone, les cellules bactériennes ont gonflé et se sont déformées.L'ozone produit par le DBD Plasma Reactor est un outil de décontamination simple et précieux pour les MDRO et les spores de C. difficile, qui sont connus pour être des agents pathogènes courants des infections nosocomiales.
L'émergence d'organismes multirésistants (MDR) est causée par l'utilisation abusive d'antibiotiques chez les humains et les animaux et a été identifiée par l'Organisation mondiale de la santé (OMS) comme une menace majeure pour la santé publique1.En particulier, les établissements de santé sont de plus en plus confrontés à l'émergence et à la diffusion des MRO.Les principaux MRO sont le Staphylococcus aureus résistant à la méthicilline et l'entérocoque résistant à la vancomycine (ERV), les entérobactéries productrices de bêta-lactamases à spectre étendu (BLSE), les Pseudomonas aeruginosa multirésistants, les Acinetobacter baumannii multirésistants et les Enterobacter résistants aux carbapénèmes (CRE).De plus, l'infection à Clostridium difficile est l'une des principales causes de diarrhée associée aux soins de santé, ce qui impose un fardeau important au système de soins de santé.MDRO et C. difficile sont transmis par les mains des travailleurs de la santé, des environnements contaminés ou directement d'une personne à l'autre.Des études récentes ont montré que les environnements contaminés dans les établissements de soins de santé jouent un rôle important dans la transmission de MDRO et de C. difficile lorsque les agents de santé (TS) entrent en contact avec des surfaces contaminées ou lorsque les patients entrent en contact direct avec des surfaces contaminées 3,4.les environnements contaminés dans les établissements de soins de santé réduisent l'incidence de l'infection ou de la colonisation par le MLRO et le C. difficile5,6,7.Compte tenu de l'inquiétude mondiale suscitée par l'augmentation de la résistance aux antimicrobiens, il est clair que davantage de recherches sont nécessaires sur les méthodes et les procédures de décontamination dans les établissements de santé.Récemment, les méthodes de nettoyage des terminaux sans contact, en particulier les équipements ultraviolets (UV) ou les systèmes au peroxyde d'hydrogène, ont été reconnues comme des méthodes de décontamination prometteuses.Cependant, ces dispositifs UV ou au peroxyde d'hydrogène disponibles dans le commerce ne sont pas seulement coûteux, la désinfection UV n'est efficace que sur les surfaces exposées, tandis que la désinfection au plasma au peroxyde d'hydrogène nécessite un temps de décontamination relativement long avant le prochain cycle de désinfection5.
L'ozone a des propriétés anti-corrosion connues et peut être produit à peu de frais8.Il est également connu pour être toxique pour la santé humaine, mais peut rapidement se décomposer en oxygène 8. Les réacteurs à plasma à décharge à barrière diélectrique (DBD) sont de loin les générateurs d'ozone les plus courants9.L'équipement DBD vous permet de créer un plasma à basse température dans l'air et de produire de l'ozone.Jusqu'à présent, l'utilisation pratique de l'ozone se limitait principalement à la désinfection de l'eau de piscine, de l'eau potable et des eaux usées10.Plusieurs études ont rapporté son utilisation dans les établissements de santé8,11.
Dans cette étude, nous avons utilisé un générateur d'ozone plasma compact DBD pour démontrer son efficacité à éliminer les MDRO et C. difficile, même ceux inoculés sur divers matériaux couramment utilisés en milieu médical.De plus, le processus de stérilisation à l'ozone a été élucidé à l'aide d'images de microscopie à force atomique (AFM) de cellules traitées à l'ozone.
Les souches ont été obtenues à partir d'isolats cliniques de : ERV (SCH 479 et SCH 637), Klebsiella pneumoniae résistant aux carbapénèmes (CRE ; SCH CRE-14 et DKA-1), Pseudomonas aeruginosa résistant aux carbapénèmes (CRPA ; 54 et 83) et bactéries résistantes aux carbapénèmes.bactéries Pseudomonas aeruginosa (CRPA ; 54 et 83).Acinetobacter baumannii résistant (CRAB; F2487 et SCH-511).C. difficile a été obtenu auprès de la National Pathogen Culture Collection (NCCP 11840) de l'Agence coréenne pour le contrôle et la prévention des maladies.Il a été isolé d'un patient en Corée du Sud en 2019 et s'est avéré appartenir à ST15 en utilisant le typage de séquence multilocus.Le bouillon coeur-cervelle (BHI) (BD, Sparks, MD, USA) inoculé avec VRE, CRE, CRPA et CRAB a été bien mélangé et incubé à 37°C pendant 24 heures.
C. difficile a été strié en anaérobiose sur de la gélose au sang pendant 48 heures.Plusieurs colonies ont ensuite été ajoutées à 5 ml de bouillon cœur-cervelle et incubées dans des conditions anaérobies pendant 48 heures.Après cela, la culture a été secouée, 5 ml d'éthanol à 95 % ont été ajoutés, secoués à nouveau et laissés à température ambiante pendant 30 minutes.Après centrifugation à 3000 g pendant 20 minutes, jeter le surnageant et suspendre le culot contenant les spores et les bactéries tuées dans 0,3 ml d'eau.Les cellules viables ont été comptées par ensemencement en spirale de la suspension de cellules bactériennes sur des plaques de gélose au sang après dilution appropriée.La coloration de Gram a confirmé que 85 % à 90 % des structures bactériennes étaient des spores.
L'étude suivante a été menée pour étudier les effets de l'ozone en tant que désinfectant sur diverses surfaces contaminées par des spores MDRO et C. difficile, qui sont connues pour causer des infections nosocomiales.Préparez des échantillons d'acier inoxydable, de tissu (coton), de verre, de plastique (acrylique) et de bois (pin) mesurant un centimètre sur un centimètre.Désinfectez les coupons avant utilisation.Tous les échantillons ont été stérilisés par autoclavage avant l'infection par des bactéries.
Dans cette étude, des cellules bactériennes ont été étalées sur diverses surfaces de substrat ainsi que sur des plaques de gélose.Les panneaux sont ensuite stérilisés en les exposant à l'ozone pendant un certain temps et à une certaine concentration dans une chambre étanche.Sur la fig.1 est une photographie d'un équipement de stérilisation à l'ozone.Les réacteurs à plasma DBD ont été fabriqués en fixant des électrodes en acier inoxydable perforées et exposées à l'avant et à l'arrière de plaques d'alumine (diélectrique) de 1 mm d'épaisseur.Pour les électrodes perforées, l'ouverture et la surface du trou étaient de 3 mm et 0,33 mm, respectivement.Chaque électrode a une forme ronde avec un diamètre de 43 mm.Une alimentation haute tension haute fréquence (GBS Elektronik GmbH Minipuls 2.2) a été utilisée pour appliquer une tension sinusoïdale d'environ 8 kV crête à crête à une fréquence de 12,5 kHz aux électrodes perforées pour générer du plasma sur les bords des électrodes.électrodes perforées.Étant donné que la technologie est une méthode de stérilisation au gaz, la stérilisation est effectuée dans une chambre divisée en volume en compartiments supérieur et inférieur, qui contiennent respectivement des échantillons contaminés par des bactéries et des générateurs de plasma.Le compartiment supérieur comporte deux orifices de soupape pour éliminer et évacuer l'ozone résiduel.Avant l'utilisation dans l'expérience, le changement dans le temps de la concentration d'ozone dans la pièce après la mise en marche de l'installation de plasma a été mesuré selon le spectre d'absorption de la raie spectrale de 253,65 nm d'une lampe à mercure.
( a ) Schéma d'un montage expérimental pour la stérilisation de bactéries sur divers matériaux utilisant l'ozone généré dans le réacteur à plasma DBD, et ( b ) la concentration d'ozone et le temps de génération de plasma dans la chambre de stérilisation.La figure a été réalisée à l'aide d'OriginPro version 9.0 (logiciel OriginPro, Northampton, MA, USA ; https://www.originlab.com).
Tout d'abord, en stérilisant les cellules bactériennes placées sur des plaques de gélose avec de l'ozone, tout en modifiant la concentration d'ozone et le temps de traitement, la concentration d'ozone et le temps de traitement appropriés pour la décontamination de MDRO et C. difficile ont été déterminés.Pendant le processus de stérilisation, la chambre est d'abord purgée avec de l'air ambiant puis remplie d'ozone en allumant l'unité plasma.Une fois que les échantillons ont été traités avec de l'ozone pendant une période de temps prédéterminée, une pompe à membrane est utilisée pour éliminer l'ozone restant.Les mesures ont utilisé un échantillon d'une culture complète de 24 heures (~ 108 UFC/ml).Des échantillons de suspensions de cellules bactériennes (20 μl) ont d'abord été dilués en série dix fois avec du sérum physiologique stérile, puis ces échantillons ont été répartis sur des plaques de gélose stérilisées à l'ozone dans la chambre.Après cela, des échantillons répétés, constitués d'échantillons exposés et non exposés à l'ozone, ont été incubés à 37°C pendant 24 heures et les colonies ont été comptées pour évaluer l'efficacité de la stérilisation.
De plus, selon les conditions de stérilisation définies dans l'étude ci-dessus, l'effet de décontamination de cette technologie sur MDRO et C. difficile a été évalué à l'aide de coupons de divers matériaux (coupons d'acier inoxydable, de tissu, de verre, de plastique et de bois) couramment utilisés dans les établissements médicaux.Des cultures complètes de 24 heures (~108 cfu/ml) ont été utilisées.Des échantillons de suspension de cellules bactériennes (20 μl) ont été dilués en série dix fois avec une solution saline stérile, puis les coupons ont été immergés dans ces bouillons dilués pour évaluer la contamination.Les échantillons prélevés après immersion dans un bouillon de dilution ont été placés dans des boîtes de Pétri stériles et séchés à température ambiante pendant 24 heures.Placez le couvercle de la boîte de Pétri sur l'échantillon et placez-le soigneusement dans la chambre d'essai.Retirer le couvercle de la boîte de Pétri et exposer l'échantillon à 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes.Les échantillons de contrôle ont été placés dans une enceinte de sécurité biologique et n'ont pas été exposés à l'ozone.Immédiatement après l'exposition à l'ozone, les échantillons et les échantillons non irradiés (c'est-à-dire les témoins) ont été mélangés avec une solution saline stérile à l'aide d'un mélangeur vortex pour isoler les bactéries de la surface.La suspension éluée a été diluée en série 10 fois avec une solution saline stérile, après quoi le nombre de bactéries diluées a été déterminé sur des plaques de gélose au sang (pour les bactéries aérobies) ou des plaques de gélose au sang anaérobie pour Brucella (pour Clostridium difficile) et incubées à 37°C pendant 24 heures .ou dans des conditions anaérobies pendant 48 heures à 37°C en double pour déterminer la concentration initiale de l'inoculum.La différence de numération bactérienne entre les témoins non exposés et les échantillons exposés a été calculée pour donner une réduction logarithmique de la numération bactérienne (c'est-à-dire l'efficacité de la stérilisation) dans les conditions d'essai.
Les cellules biologiques doivent être immobilisées sur une plaque d'imagerie AFM ;par conséquent, un disque de mica plat et uniformément rugueux avec une échelle de rugosité inférieure à la taille de la cellule est utilisé comme substrat.Le diamètre et l'épaisseur des disques étaient respectivement de 20 mm et 0,21 mm.Pour ancrer fermement les cellules à la surface, la surface du mica est recouverte de poly-L-lysine (200 µl), ce qui la rend chargée positivement et la membrane cellulaire chargée négativement.Après revêtement avec de la poly-L-lysine, les disques de mica ont été lavés 3 fois avec 1 ml d'eau désionisée (DI) et séchés à l'air pendant une nuit.Ensuite, les cellules bactériennes ont été appliquées sur la surface de mica recouverte de poly-L-lysine en dosant une solution bactérienne diluée, laissée pendant 30 min, puis la surface de mica a été lavée avec 1 ml d'eau déminéralisée.
La moitié des échantillons ont été traités à l'ozone et la morphologie de surface des plaques de mica chargées de spores VRE, CRAB et C. difficile a été visualisée à l'aide de l'AFM (XE-7, park systems).Le mode de fonctionnement AFM est réglé sur le mode tapotement, qui est une méthode courante pour l'imagerie des cellules biologiques.Dans les expériences, un microcantilever conçu pour le mode sans contact (OMCL-AC160TS, OLYMPUS Microscopy) a été utilisé.Les images AFM ont été enregistrées sur la base d'une vitesse de balayage de la sonde de 0,5 Hz, ce qui a donné une résolution d'image de 2048 × 2048 pixels.
Pour déterminer les conditions dans lesquelles les réacteurs à plasma DBD sont efficaces pour la stérilisation, nous avons mené une série d'expériences utilisant à la fois MDRO (VRE, CRE, CRPA et CRAB) et C. difficile pour faire varier la concentration d'ozone et le temps d'exposition.Sur la fig.1b montre la courbe de concentration d'ozone en fonction du temps pour chaque condition de test après la mise en marche de l'appareil à plasma.La concentration a augmenté de manière logarithmique, atteignant 300 et 500 ppm après 1,5 et 2,5 minutes, respectivement.Des tests préliminaires avec VRE ont montré que le minimum requis pour décontaminer efficacement les bactéries est de 300 ppm d'ozone pendant 10 minutes.Ainsi, dans les expériences suivantes, MDRO et C. difficile ont été exposés à l'ozone à deux concentrations différentes (300 et 500 ppm) et à deux temps d'exposition différents (10 et 15 minutes).L'efficacité de stérilisation pour chaque réglage de dose d'ozone et de temps d'exposition a été calculée et indiquée dans le tableau 1. L'exposition à 300 ou 500 ppm d'ozone pendant 10 à 15 minutes a entraîné une réduction globale de l'ERV de 2 log10 ou plus.Ce niveau élevé de destruction bactérienne avec CRE a été atteint avec 15 minutes d'exposition à 300 ou 500 ppm d'ozone. Une réduction élevée du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d'ozone pendant 15 min. Une réduction élevée du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d'ozone pendant 15 min. Plus d'informations sur CRPA (> 7 log10) 15 mois. Une réduction élevée du CRPA (> 7 log10) a été obtenue avec une exposition à 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes.暴露于500 ppm 的臭氧15 分钟后,可大幅降低CRPA (> 7 log10)。暴露于500 ppm 的臭氧15 分钟后,可大幅降低CRPA (> 7 log10)。 Существенное снижение CRPA (> 7 log10) после 15-минутного воздействия озона с концентрацией 500 ppm. Réduction significative du CRPA (> 7 log10) après 15 minutes d'exposition à 500 ppm d'ozone.Destruction négligeable des bactéries CRAB à 300 ppm d'ozone ; cependant, à 500 ppm d'ozone, il y avait une réduction > 1,5 log10. cependant, à 500 ppm d'ozone, il y avait une réduction > 1,5 log10. однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение > 1,5 log10. cependant, à une concentration d'ozone de 500 ppm, une diminution de >1,5 log10 a été observée.然而,在500 ppm 臭氧下,减少了> 1.5 log10。然而,在500 ppm 臭氧下,减少了> 1.5 log10。 Однако при концентрации озона 500 частей на миллион наблюдалось снижение >1,5 log10. Cependant, à une concentration d'ozone de 500 ppm, une diminution de >1,5 log10 a été observée. L'exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d'ozone a entraîné une réduction > 2,5 log10. L'exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d'ozone a entraîné une réduction > 2,5 log10. Воздействие на споры C. difficile озона с концентрацией 300 или 500 частей на миллион приводило к сни жению > 2,5 log10. L'exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d'ozone a entraîné des réductions > 2,5 log10.将艰难梭菌孢子暴露于300 或500 ppm 的臭氧中导致> 2.5 log10 减少。 300 à 500 ppm 的臭氧中导致> 2.5 log10 减少。 Воздействие на споры C. difficile озона с концентрацией 300 или 500 частей на миллион приводило к сни жению >2,5 log10. L'exposition des spores de C. difficile à 300 ou 500 ppm d'ozone a entraîné des réductions > 2,5 log10.
Sur la base des expériences ci-dessus, une exigence suffisante a été trouvée pour inactiver les bactéries à une dose de 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes.Les spores d'ERV, de CRABE et de C. difficile ont été testées pour l'effet germicide de l'ozone sur une variété de matériaux, y compris l'acier inoxydable, le tissu, le verre, le plastique et le bois couramment utilisés dans les hôpitaux.Leur efficacité de stérilisation est présentée dans le tableau 2. Les organismes d'essai ont été évalués deux fois.Dans VRE et CRAB, l'ozone était moins efficace sur les surfaces en verre et en plastique, bien qu'une réduction log10 d'environ un facteur de 2 ou plus ait été observée sur les surfaces en acier inoxydable, en tissu et en bois.Les spores de C. difficile se sont avérées plus résistantes au traitement à l'ozone que tous les autres organismes testés.Pour étudier statistiquement l'effet de l'ozone sur l'effet destructeur de différents matériaux contre les ERV, le CRAB et C. difficile, des tests t ont été utilisés pour comparer les différences entre le nombre d'UFC par millilitre dans les groupes témoins et expérimentaux sur différents matériaux (Fig. 2).souches ont montré des différences statistiquement significatives, mais des différences plus significatives ont été observées pour les spores d'ERV et de CRAB que pour les spores de C. difficile.
Diagramme de dispersion des effets de l'ozone sur la destruction bactérienne de divers matériaux (a) ERV, (b) CRABE et (c) C. difficile.
L'imagerie AFM a été réalisée sur des spores VRE, CRAB et C. difficile traitées à l'ozone et non traitées pour étudier en détail le processus de stérilisation à l'ozone.Sur la fig.3a, c et e montrent des images AFM de spores VRE, CRAB et C. difficile non traitées, respectivement.Comme on le voit sur les images 3D, les cellules sont lisses et intactes.Les figures 3b, d et f montrent les spores de VRE, CRAB et C. difficile après traitement à l'ozone.Non seulement leur taille globale a diminué pour toutes les cellules testées, mais leur surface est devenue sensiblement plus rugueuse après exposition à l'ozone.
Images AFM de spores VRE, MRAB et C. difficile non traitées (a, c, e) et (b, d, f) traitées avec 500 ppm d'ozone pendant 15 min.Les images ont été dessinées à l'aide de Park Systems XEI version 5.1.6 (XEI Software, Suwon, Corée; https://www.parksystems.com/102-products/park-xe-bio).
Nos recherches montrent que l'ozone produit par l'équipement plasma DBD démontre la capacité de décontaminer efficacement les MDRO et les spores de C. difficile, qui sont connues pour être les principales causes d'infections nosocomiales.De plus, dans notre étude, étant donné que la contamination environnementale par les MDRO et les spores de C. difficile peut être une source d'infections associées aux soins de santé, l'effet germicide de l'ozone s'est avéré efficace pour les matériaux principalement utilisés en milieu hospitalier.Des tests de décontamination ont été effectués à l'aide d'un équipement plasma DBD après contamination artificielle de matériaux tels que l'acier inoxydable, le tissu, le verre, le plastique et le bois avec des spores de MDRO et de C. difficile.Par conséquent, bien que l'effet de décontamination varie selon le matériau, la capacité de décontamination de l'ozone est remarquable.
Les objets fréquemment touchés dans les chambres d'hôpital nécessitent une désinfection de routine de bas niveau.La méthode standard de décontamination de tels objets est le nettoyage manuel avec un désinfectant liquide tel qu'un composé d'ammonium quaternaire 13. Même en respectant strictement les recommandations d'utilisation des désinfectants, le MPO est difficile à éliminer par un nettoyage environnemental traditionnel (généralement un nettoyage manuel) 14.Par conséquent, de nouvelles technologies sont nécessaires, telles que les méthodes sans contact.Par conséquent, il y a eu un intérêt pour les désinfectants gazeux, notamment le peroxyde d'hydrogène et l'ozone10.L'avantage des désinfectants gazeux est qu'ils peuvent atteindre des endroits et des objets que les méthodes manuelles traditionnelles ne peuvent pas atteindre.Le peroxyde d'hydrogène est récemment entré en usage dans les milieux médicaux, mais le peroxyde d'hydrogène lui-même est toxique et doit être manipulé selon des procédures de manipulation strictes.La stérilisation au plasma avec du peroxyde d'hydrogène nécessite un temps de purge relativement long avant le prochain cycle de stérilisation.En revanche, l'ozone agit comme un agent antibactérien à large spectre, efficace contre les bactéries et les virus résistants aux autres désinfectants8,11,15.De plus, l'ozone peut être produit à moindre coût à partir de l'air atmosphérique et ne nécessite pas de produits chimiques toxiques supplémentaires qui peuvent laisser une empreinte nocive dans l'environnement, car il finit par se décomposer en oxygène.Cependant, la raison pour laquelle l'ozone n'est pas largement utilisé comme désinfectant est la suivante.L'ozone est toxique pour la santé humaine, sa concentration ne dépasse donc pas 0,07 ppm en moyenne pendant plus de 8 heures16, c'est pourquoi des stérilisateurs à l'ozone ont été développés et mis sur le marché, principalement pour le nettoyage des gaz d'échappement.Il est également possible d'inhaler du gaz et de produire une odeur désagréable après la décontamination5,8.L'ozone n'était pas activement utilisé dans les établissements médicaux.Cependant, l'ozone peut être utilisé en toute sécurité dans les chambres de stérilisation et avec des procédures de ventilation appropriées, et son élimination peut être considérablement accélérée en utilisant un convertisseur catalytique.Dans cette étude, nous démontrons que les stérilisateurs plasma à l'ozone peuvent être utilisés pour la désinfection dans les établissements de santé.Nous avons développé un appareil avec des capacités de stérilisation élevées, une utilisation facile et un service rapide pour les patients hospitalisés.De plus, nous avons développé une unité de stérilisation simple qui utilise l'air ambiant sans frais supplémentaires.À ce jour, il n'y a pas suffisamment d'informations sur les exigences minimales en ozone pour l'inactivation des MDRO.L'équipement utilisé dans notre étude est facile à installer et a une courte durée de fonctionnement et devrait être utile pour la stérilisation fréquente de l'équipement.
Le mécanisme de l'action bactéricide de l'ozone n'est pas complètement élucidé.Plusieurs études ont montré que l'ozone endommage les membranes cellulaires bactériennes, entraînant une fuite intracellulaire et une éventuelle lyse cellulaire17,18.L'ozone peut interférer avec l'activité enzymatique cellulaire en réagissant avec les groupes thiol et peut modifier les bases puriques et pyrimidiques dans les acides nucléiques.Cette étude a visualisé la morphologie des spores d'ERV, de CRAB et de C. difficile avant et après le traitement à l'ozone et a constaté que non seulement leur taille diminuait, mais qu'elles devenaient également beaucoup plus rugueuses à la surface, indiquant des dommages ou une corrosion de la membrane la plus externe.et les matériaux internes dus au gaz ozone ont une forte capacité oxydante.Ces dommages peuvent entraîner une inactivation cellulaire, selon la gravité des changements cellulaires.
Les spores de C. difficile sont difficiles à éliminer des chambres d'hôpital.Les spores restent dans les endroits où elles libèrent 10,20.De plus, dans cette étude, bien que la réduction logarithmique maximale de 10 fois du nombre de bactéries sur des plaques de gélose à 500 ppm d'ozone pendant 15 minutes était de 2,73, l'effet bactéricide de l'ozone sur divers matériaux contenant des spores C .difficile a été réduit.Par conséquent, diverses stratégies peuvent être envisagées pour réduire l'infection à C. difficile dans les établissements de soins de santé.Pour une utilisation dans des chambres isolées de C. difficile uniquement, il peut également être utile d'ajuster le temps d'exposition et l'intensité du traitement à l'ozone.De plus, il faut garder à l'esprit que la méthode de décontamination à l'ozone ne peut pas complètement remplacer le nettoyage manuel conventionnel avec des désinfectants et des stratégies antimicrobiennes, et peut également être très efficace pour contrôler C. difficile 5 .Dans cette étude, l'efficacité de l'ozone en tant que désinfectant variait pour différents types de MPO.L'efficacité peut dépendre de plusieurs facteurs tels que le stade de croissance, la paroi cellulaire et l'efficacité des mécanismes de réparation21,22.La raison de l'effet stérilisant différent de l'ozone sur la surface de chaque matériau peut être due à la formation d'un biofilm.Des études antérieures ont montré qu'E. faecium et E. faecium augmentent la résistance environnementale lorsqu'ils sont présents sous forme de biofilms23, 24, 25. Cependant, cette étude montre que l'ozone a un effet bactéricide significatif sur les MDRO et les spores de C. difficile.
Une limite de notre étude est que nous avons évalué l'effet de la rétention d'ozone après l'assainissement.Cela peut conduire à une surestimation du nombre de cellules bactériennes viables.
Bien que cette étude ait été menée pour évaluer l'efficacité de l'ozone comme désinfectant en milieu hospitalier, il est difficile de généraliser nos résultats à tous les milieux hospitaliers.Ainsi, des recherches supplémentaires sont nécessaires pour étudier l'applicabilité et la compatibilité de ce stérilisateur à l'ozone DBD dans un environnement hospitalier réel.
L'ozone produit par les réacteurs à plasma DBD pourrait être un agent de décontamination simple et précieux pour MDRO et C. difficile.Ainsi, le traitement à l'ozone peut être considéré comme une alternative efficace à la désinfection de l'environnement hospitalier.
Les ensembles de données utilisés et/ou analysés dans la présente étude sont disponibles auprès des auteurs respectifs sur demande raisonnable.
Stratégie mondiale de l'OMS pour contenir la résistance aux antimicrobiens.https://www.who.int/drugresistance/WHO_Global_Strategy.htm/en/ Disponible.
Dubberke, ER & Olsen, MA Fardeau de Clostridium difficile sur le système de santé. Dubberke, ER & Olsen, MA Fardeau de Clostridium difficile sur le système de santé.Dubberke, ER et Olsen, MA Fardeau de Clostridium difficile dans le système de santé. Dubberke, ER & Olsen, MA Dubberke, Urgences & Olsen, MADubberke, ER et Olsen, MA Le fardeau de Clostridium difficile sur le système de soins de santé.clinique.Infecter.Dis.https://doi.org/10.1093/cid/cis335 (2012).
Boyce, JM La pollution de l'environnement a un impact significatif sur les infections nosocomiales.Hôpital J..Infecter.65 (Annexe 2), 50-54.https://doi.org/10.1016/s0195-6701(07)60015-2 (2007).
Kim, YA, Lee, H. & K L.,. Kim, YA, Lee, H. & K L.,.Kim, YA, Lee, H. et KL,. Kim, YA, Lee, H. & K L.,. Kim, YA, Lee, H. & K L.,.Kim, YA, Lee, H. et KL,.Pollution et lutte contre les infections de l'environnement hospitalier par des bactéries pathogènes [J.Corée J. Contrôle des infections hospitalières.20(1), 1-6 (2015).
Danseur, SJ La lutte contre les infections nosocomiales : attention au rôle de l'environnement et nouvelles technologies de désinfection.clinique.micro-organisme.ouvrir 27(4), 665–690.https://doi.org/10.1128/cmr.00020-14 (2014).
Weber, DJ et al.Efficacité des appareils UV et des systèmes au peroxyde d'hydrogène pour la décontamination des zones terminales : focus sur les essais cliniques.Oui.J. Lutte contre les infections.44 (5 ajouts), e77-84.https://doi.org/10.1016/j.ajic.2015.11.015 (2016).
Siani, H. & Maillard, JY Meilleures pratiques de décontamination en milieu de soins. Siani, H. & Maillard, JY Meilleures pratiques de décontamination en milieu de soins. Siani, H. & Maillard, JY. Siani, H. & Maillard, JY Bonnes pratiques de décontamination des milieux de soins. Siani, H. & Maillard, JY. Siani, H. & Maillard, JY La meilleure pratique de purification de l'environnement médical. Siani, H. & Maillard, JY. Siani, H. & Maillard, JY Meilleures pratiques de décontamination des installations médicales.EURO.J.Clin.micro-organisme Pour infecter Dis.34(1), 1-11.https://doi.org/10.1007/s10096-014-2205-9 (2015).
Sharma, M. & Hudson, JB L'ozone est un agent antibactérien efficace et pratique. Sharma, M. & Hudson, JB L'ozone est un agent antibactérien efficace et pratique.Sharma, M. et Hudson, JB L'ozone gazeux est un agent antibactérien efficace et pratique. Sharma, M. & Hudson, JB. Sharma, M. & Hudson, JBSharma, M. et Hudson, JB L'ozone gazeux est un agent antimicrobien efficace et pratique.Oui.J.Infection.contrôle.36(8), 559-563.https://doi.org/10.1016/j.ajic.2007.10.021 (2008).
Seung-Lok Pak, J.-DM, Lee, S.-H. & Shin, S.-Y. & Shin, S.-Y.et Shin, S.-Yu. & Shin, S.-Y. & Shin, S.-Y.et Shin, S.-Yu.L'ozone est généré efficacement à l'aide d'électrodes à plaque de grille dans un générateur d'ozone de type décharge avec une barrière diélectrique.J. Électrostatique.64(5), 275-282.https://doi.org/10.1016/j.elstat.2005.06.007 (2006).
Moat, J., Cargill, J., Shone, J. & Upton, M. Application d'un nouveau procédé de décontamination utilisant de l'ozone gazeux. Moat, J., Cargill, J., Shone, J. & Upton, M. Application d'un nouveau procédé de décontamination utilisant de l'ozone gazeux.Moat J., Cargill J., Sean J. et Upton M. Application d'un nouveau procédé de décontamination utilisant le gaz ozone. Moat, J., Cargill, J., Shone, J. & Upton, M. Moat, J., Cargill, J., Shone, J. & Upton, M.Moat J., Cargill J., Sean J. et Upton M. Application d'un nouveau procédé de purification utilisant l'ozone gazeux.Peut.J. Micro-organismes.55(8), 928–933.https://doi.org/10.1139/w09-046 (2009).
Zoutman, D., Shannon, M. & Mandel, A. Efficacité d'un nouveau système à base d'ozone pour la désinfection rapide de haut niveau des espaces et des surfaces de soins de santé. Zoutman, D., Shannon, M. & Mandel, A. Efficacité d'un nouveau système à base d'ozone pour la désinfection rapide de haut niveau des espaces et des surfaces de soins de santé.Zutman, D., Shannon, M. et Mandel, A. Efficacité d'un nouveau système à base d'ozone pour une désinfection rapide et de haut niveau des environnements et des surfaces médicales. Zoutman, D., Shannon, M. & Mandel, A. Zoutman, D., Shannon, M. & Mandel, A.Zutman, D., Shannon, M. et Mandel, A. Efficacité d'un nouveau système à l'ozone pour une désinfection rapide et de haut niveau des environnements et des surfaces médicales.Oui.J. Lutte contre les infections.39(10), 873-879.https://doi.org/10.1016/j.ajic.2011.01.012 (2011).
Wullt, M., Odenholt, I. & Walder, M. Activité de trois désinfectants et de nitrite acidifié contre les spores de Clostridium difficile. Wullt, M., Odenholt, I. & Walder, M. Activité de trois désinfectants et de nitrite acidifié contre les spores de Clostridium difficile.Woollt, M., Odenholt, I. et Walder, M. Activité de trois désinfectants et de nitrite acidifié contre les spores de Clostridium difficile.Vullt M, Odenholt I et Walder M. Activité de trois désinfectants et de nitrites acidifiés contre les spores de Clostridium difficile.Hôpital de contrôle des infections.Épidémiologie.24(10), 765-768.https://doi.org/10.1086/502129 (2003).
Ray, A. et al.Décontamination au peroxyde d'hydrogène vaporisé lors d'une éclosion d'Acinetobacter baumannii multirésistant dans un hôpital de soins de longue durée.Hôpital de contrôle des infections.Épidémiologie.31(12), 1236-1241.https://doi.org/10.1086/657139 (2010).
Ekshtein, BK et al.Réduction de la contamination des surfaces environnementales par le Clostridium difficile et les entérocoques résistants à la vancomycine suite à l'adoption de mesures d'amélioration des méthodes de nettoyage.Maladie infectieuse de la Marine.7, 61. https://doi.org/10.1186/1471-2334-7-61 (2007).
Martinelli, M., Giovannangeli, F., Rotunno, S., Trombetta, CM & Montomoli, E. Traitement à l'ozone de l'eau et de l'air comme technologie de désinfection alternative. Martinelli, M., Giovannangeli, F., Rotunno, S., Trombetta, CM & Montomoli, E. Traitement à l'ozone de l'eau et de l'air comme technologie de désinfection alternative.Martinelli, M., Giovannangeli, F., Rotunno, S., Trombetta, KM et Montomoli, E. Traitement à l'ozone de l'eau et de l'air comme technologie d'assainissement alternative. Martinelli, M., Giovannangeli, F., Rotunno, S., Trombetta, CM et Montomoli, E. Martinelli, M., Giovannangeli, F., Rotunno, S., Trombetta, CM & Montomoli, E.Martinelli M, Giovannangeli F, Rotunno S, Trombetta SM et Montomoli E. Traitement à l'ozone de l'eau et de l'air comme méthode alternative de désinfection.J. Page précédente.médecine.Hagrid.58(1), E48-e52 (2017).
Ministère coréen de l'environnement.https://www.me.go.kr/mamo/web/index.do?menuId=586 (2022).Au 12 janvier 2022
Thanomsub, B. et al.Effet du traitement à l'ozone sur la croissance des cellules bactériennes et les changements ultrastructuraux.Annexe J. Micro-organisme général.48(4), 193-199.https://doi.org/10.2323/jgam.48.193 (2002).
Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Effets de l'ozone sur la perméabilité membranaire et l'ultrastructure chez Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Effets de l'ozone sur la perméabilité membranaire et l'ultrastructure chez Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM et Yang, XH. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Effet de l'ozone sur la perméabilité membranaire et l'ultrastructure de Pseudomonas aeruginosa. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM et Yang, XH Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM et Yang, XH. Zhang, YQ, Wu, QP, Zhang, JM & Yang, XH Effet de l'ozone sur la perméabilité membranaire et l'ultrastructure de Pseudomonas aeruginosa.J. Requête.micro-organisme.111(4), 1006-1015.https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05113.x (2011).
Russell, AD Similitudes et différences dans les réponses microbiennes aux fongicides.J. Antibiotiques.chimiothérapie.52(5), 750-763.https://doi.org/10.1093/jac/dkg422 (2003).
Whitaker, J., Brown, BS, Vidal, S. & Calcaterra, M. Conception d'un protocole qui élimine Clostridium difficile : une entreprise collaborative. Whitaker, J., Brown, BS, Vidal, S. & Calcaterra, M. Conception d'un protocole qui élimine Clostridium difficile : une entreprise collaborative.Whitaker J, Brown BS, Vidal S et Calcaterra M. Développement d'un protocole pour éliminer Clostridium difficile : une coentreprise. Whitaker, J., Brown, BS, Vidal, S. et Calcaterra, M. Whitaker, J., Brown, BS, Vidal, S. & Calcaterra, M.Whitaker, J., Brown, BS, Vidal, S. et Calcaterra, M. Développement d'un protocole pour éliminer Clostridium difficile : une coentreprise.Oui.J. Lutte contre les infections.35(5), 310-314.https://doi.org/10.1016/j.ajic.2006.08.010 (2007).
Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Sensibilité de trois espèces bactériennes sélectionnées à l'ozone. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Sensibilité de trois espèces bactériennes sélectionnées à l'ozone. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Sensibilité à l'ozone de trois espèces bactériennes sélectionnées. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Broadwater, WT, Hoehn, RC et King, PH Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH. Broadwater, WT, Hoehn, RC & King, PH Sensibilité à l'ozone de trois bactéries sélectionnées.déclaration.micro-organisme.26(3), 391–393.https://doi.org/10.1128/am.26.3.391-393.1973 (1973).
Patil, S., Valdramidis, VP, Karatzas, KA, Cullen, PJ & Bourke, P. Évaluation du mécanisme de stress oxydatif microbien du traitement à l'ozone par les réponses des mutants Escherichia coli. Patil, S., Valdramidis, VP, Karatzas, KA, Cullen, PJ & Bourke, P. Évaluation du mécanisme de stress oxydatif microbien du traitement à l'ozone par les réponses des mutants Escherichia coli.Patil, S., Valdramidis, VP, Karatzas, KA, Cullen, PJ et Burk, P. Évaluation du mécanisme du stress oxydatif microbien par traitement à l'ozone des réactions mutantes d'Escherichia coli. Patil, S., Valdramidis, VP, Karatzas, KA, Cullen, PJ et Bourke, P. Patil, S., Valdramidis, vice-président, Karatzas, KA, Cullen, PJ et Bourke, P.Patil, S., Valdramidis, VP, Karatsas, KA, Cullen, PJ et Bourque, P. Évaluation des mécanismes du stress oxydatif microbien dans le traitement à l'ozone par les réactions mutantes d'Escherichia coli.J. Requête.micro-organisme.111(1), 136-144.https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.05021.x (2011).
Greene, C., Wu, J., Rickard, AH et Xi, C. Évaluation de la capacité d'Acinetobacter baumannii à former des biofilms sur six surfaces pertinentes biomédicales différentes. Greene, C., Wu, J., Rickard, AH et Xi, C. Évaluation de la capacité d'Acinetobacter baumannii à former des biofilms sur six surfaces pertinentes biomédicales différentes.Green, K., Wu, J., Rickard, A. Kh.et Si, K. Évaluation de la capacité d'Acinetobacter baumannii à former des biofilms sur six surfaces différentes pertinentes sur le plan biomédical. Greene, C., Wu, J., Rickard, AH et Xi, C. Greene, C., Wu, J., Rickard, AH & Xi, C. Évaluation de la capacité de 鲍曼不动天生在六种 à former un biofilm sur diverses surfaces biomédicales pertinentes.Green, K., Wu, J., Rickard, A. Kh.et Si, K. Évaluation de la capacité d'Acinetobacter baumannii à former des biofilms sur six surfaces différentes pertinentes sur le plan biomédical.Wright.micro-organisme d'application 63(4), 233-239.https://doi.org/10.1111/lam.12627 (2016).
Heure de publication : 19 août 2022