ການຈັດຫາ ແລະ ການແຈກຢາຍສານອາຫານປະສົມປະສານການລ້ຽງແມງໄມ້ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ. ເພື່ອຊົດເຊີຍການຂາດສານອາຫານສະເພາະໃນຂັ້ນຕອນຊີວິດທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ແມງໄມ້ສາມາດໄດ້ຮັບສານອາຫານເຫຼົ່ານີ້ຜ່ານການໃຫ້ອາຫານເສີມ, ຕົວຢ່າງ, ໂດຍການໃຫ້ອາຫານຂອງສິ່ງເສດເຫຼືອຈາກກະດູກສັນຫຼັງໃນຂະບວນການທີ່ເອີ້ນວ່າ puddles. ຍຸງ Anopheles arabiani ປະກົດວ່າມີສານອາຫານ ແລະ ເປົ້າໝາຍ, ການມີທາດອາຫານທີ່ມີປະໂຫຍດ ແລະ ເປົ້າໝາຍ. ການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອປະເມີນວ່າ An. ການກະຕຸ້ນຂອງ arabiensis ໃນປັດສະວະງົວສໍາລັບການໄດ້ຮັບສານອາຫານປັບປຸງຄຸນລັກສະນະປະຫວັດສາດຊີວິດ.
ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າມັນປອດໄພ.arabiensis ໄດ້ຖືກດຶງດູດເອົາກິ່ນຂອງສົດ, 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງປັດສະວະງົວ, ແລະຊອກຫາເຈົ້າພາບແລະໃຫ້ເລືອດ (48 ຊົ່ວໂມງຫຼັງຈາກອາຫານເລືອດ) ແມ່ຍິງໄດ້ຖືກວັດແທກໃນ olfactometer ທໍ່ Y, ແລະການວິເຄາະທາງເຄມີຂອງແມ່ຍິງຖືພາໄດ້ຖືກນໍາມາໃຊ້ຮ່ວມກັນ. ຈາກນັ້ນໃຊ້ເພື່ອກວດຫາທາດປະສົມທາງຊີວະພາບໃນນ້ຳຍ່ຽວງົວໃນ 4 ໝວດອາຍຸ. ການປະສົມສັງເຄາະຂອງທາດປະສົມທາງຊີວະພາບໄດ້ຖືກປະເມີນໃນທໍ່ Y ແລະການທົດລອງໃນພາກສະໜາມ. ເພື່ອກວດຫານ້ຳຍ່ຽວງົວ ແລະ ທາດປະສົມທີ່ມີໄນໂຕຣເຈນຫຼັກຂອງ urea ເປັນອາຫານເສີມທີ່ມີທ່າແຮງສຳລັບພະຍາດໄຂ້ມາເລເລຍ, ຕົວກໍານົດການໃຫ້ອາຫານ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດໄດ້ຖືກວັດແທກ. ອັດຕາສ່ວນຂອງການດູດຊຶມຂອງເພດຍິງ ແລະ ຍຸງຮ່ວມ. ຫຼັງຈາກການໃຫ້ອາຫານ, ແມ່ຍິງໄດ້ຖືກປະເມີນສໍາລັບການຢູ່ລອດ, ການບິນຜ່ານສາຍ, ແລະການສືບພັນ.
ສະແຫວງຫາເລືອດ ແລະ ທາດອາຫານຂອງເຈົ້າພາບ. ໃນຫ້ອງທົດລອງ ແລະ ການສຶກສາພາກສະໜາມ, ຊາວອາຣັບໄດ້ດຶງດູດເອົາກິ່ນທຳມະຊາດ ແລະ ສັງເຄາະຂອງນ້ຳຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ອາຍຸ. ຜູ້ຍິງຖືພາບໍ່ສົນໃຈການຕອບສະ ໜອງ ຂອງຍ່ຽວງົວຢູ່ບ່ອນວາງໄຂ່. ຜູ້ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບແລະດູດເລືອດແມ່ນດູດເອົານ້ ຳ ຍ່ຽວງົວແລະຊັບພະຍາກອນທັງ ໝົດ ຂອງຊີວິດແລະ ashurea. ການທໍາງານຂອງສະຖານະ physiological ສໍາລັບການບິນ, ການຢູ່ລອດ, ຫຼືການສືບພັນ.
Anopheles arabinis ໄດ້ມາແລະການແຜ່ກະຈາຍຂອງປັດສະວະງົວສໍາລັບການປັບປຸງລັກສະນະປະຫວັດສາດຊີວິດ.ການເສີມຂອງປັດສະວະງົວມີຜົນກະທົບຄວາມສາມາດ vector ໂດຍກົງໂດຍການເພີ່ມຄວາມຢູ່ລອດປະຈໍາວັນແລະຄວາມຫນາແຫນ້ນຂອງ vector, ແລະທາງອ້ອມໂດຍການປ່ຽນແປງກິດຈະກໍາການບິນແລະດັ່ງນັ້ນຄວນຈະພິຈາລະນາໃນຮູບແບບໃນອະນາຄົດ.
ການຈັດຫາ ແລະ ການແຈກຢາຍສານອາຫານປະສົມປະສານການໃຫ້ແມງໄມ້ ແລະ ລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ [1,2,3].ແມງໄມ້ສາມາດເລືອກ ແລະໄດ້ມາອາຫານ ແລະປະຕິບັດການໃຫ້ອາຫານທົດແທນໂດຍອີງໃສ່ຄວາມພ້ອມຂອງອາຫານ ແລະຄວາມຕ້ອງການທາດອາຫານ [1, 3].ການແຈກຢາຍສານອາຫານແມ່ນຂຶ້ນກັບຂະບວນການຊີວະປະຫວັດຊີວິດ ແລະອາດນໍາໄປສູ່ຄວາມຕ້ອງການທີ່ແຕກຕ່າງກັນສໍາລັບຄຸນນະພາບອາຫານ ແລະປະລິມານຂອງຊີວິດ [2]. ສໍາລັບການຂາດສານອາຫານສະເພາະ, ແມງໄມ້ສາມາດໄດ້ຮັບສານອາຫານເຫຼົ່ານີ້ຜ່ານການໃຫ້ອາຫານເສີມ, ເຊັ່ນ: ຂີ້ຕົມ, ຂີ້ຕົມ ແລະສິ່ງເສດເຫຼືອຂອງສັດທີ່ມີກະດູກສັນຫຼັງ, ແລະ carrion, ຂະບວນການທີ່ເອີ້ນວ່າ puddles [2]. ເຖິງແມ່ນວ່າແນວພັນຂອງ butterfly ແລະ moth ໄດ້ຖືກອະທິບາຍຕົ້ນຕໍ, ການຫົດນ້ໍາຂຸມເຫຼົ່ານີ້ຍັງເກີດຂື້ນໃນລັກສະນະອື່ນໆຂອງແມງໄມ້ທີ່ມີຜົນຕໍ່ອາຫານແລະການລ້ຽງສັດ. life-history traits [2, 4, 5, 6] ,7].The malaria mosquito Anopheles gambiae sensu lato (sl) emerges as a 'malnourished' adult [8], ດັ່ງນັ້ນການຫົດນໍ້າອາດມີບົດບາດສໍາຄັນໃນລັກສະນະປະຫວັດສາດຊີວິດຂອງມັນ, ແຕ່ພຶດຕິກໍານີ້ໄດ້ຖືກລະເລີຍມາເຖິງຕອນນັ້ນ .ການໃຊ້ຄວາມວຸ້ນວາຍໃນສົງຄາມທີ່ມີຄວາມສໍາຄັນນີ້ອາດຈະມີຄວາມສໍາຄັນ. ຜົນສະທ້ອນລະບາດວິທະຍາທີ່ສໍາຄັນ.
ການໄດ້ຮັບໄນໂຕຣເຈນໃນຍຸງ Anopheles ຂອງແມ່ຍິງຜູ້ໃຫຍ່ແມ່ນຈໍາກັດເນື່ອງຈາກການສະຫງວນແຄລໍລີ່ຕ່ໍາຈາກຂັ້ນຕອນຂອງຕົວອ່ອນແລະການນໍາໃຊ້ອາຫານເລືອດທີ່ບໍ່ມີປະສິດທິພາບ [9]. ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວ Ann.gambiae sl ເພດຍິງຈະຊົດເຊີຍສໍາລັບການນີ້ໂດຍການເພີ່ມອາຫານທີ່ມີເລືອດເສີມ [10, 11], ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງເຮັດໃຫ້ປະຊາຊົນມີຄວາມສ່ຽງຕໍ່ການເປັນພະຍາດໄຂ້ເລືອດອອກຫຼາຍ. ຍຸງສາມາດໃຊ້ການໃຫ້ອາຫານເສີມຂອງສິ່ງເສດເຫຼືອຈາກກະດູກສັນຫຼັງເພື່ອໃຫ້ໄດ້ສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ຊ່ວຍເພີ່ມການປັບຕົວ ແລະ ຄວາມຄ່ອງແຄ້ວຂອງການບິນ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນໂດຍແມງໄມ້ອື່ນໆ [2]. ໃນເລື່ອງນີ້, ຄວາມດຶງດູດທີ່ແຂງແຮງ ແລະ ແຕກຕ່າງຂອງສັດທີ່ເປັນພີ່ນ້ອງກັນພາຍໃນ An.The Gambian sl species complex, Anopheles arabinis, ສົດ, 123 ໂຕ, ງົວສົດ ແລະ ອາຍຸ 12 ໂຕ. Anopheles arabinis ສວຍໂອກາດໃນຄວາມມັກເປັນເຈົ້າພາບ ແລະ ເປັນທີ່ຮູ້ກັນວ່າຮ່ວມກັບ ແລະ ລ້ຽງງົວ. ປັດສະວະງົວເປັນຊັບພະຍາກອນທີ່ອຸດົມໄປດ້ວຍທາດໄນໂຕຣເຈນ, ໂດຍມີ urea ກວມເອົາ 50-95% ຂອງໄນໂຕຣເຈນທັງໝົດໃນປັດສະວະສົດ [15, 16]. ໃນຂະນະທີ່ປັດສະວະງົວຊ່ວຍຫຼຸດທາດໄນໂຕຣເຈນໄວ້ 4 ອາຍຸການຍ່ອຍສະຫຼາຍຂອງຈຸລິນຊີ. ຊົ່ວໂມງ [15].ດ້ວຍການເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງໄວວາຂອງແອມໂມເນຍ, ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບການຫຼຸດລົງຂອງໄນໂຕຣເຈນອິນຊີ, ຈຸລິນຊີທີ່ເປັນດ່າງ (ຫຼາຍອັນທີ່ຜະລິດສານປະກອບທີ່ເປັນພິດຕໍ່ຍຸງ) ຈະເລີນເຕີບໂຕ [15], ເຊິ່ງອາດເປັນເພດຍິງ Ann.arabiensis ມັກຈະດຶງດູດເອົານໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ ຫຼືໜ້ອຍກວ່າ [13., 14].
ໃນການສຶກສານີ້, ໂຮສ ແລະ Ans ທີ່ໃຫ້ອາຫານເລືອດໄດ້ຖືກຊອກຫາ. ໃນລະຫວ່າງຮອບວຽນ gonadotropin ທໍາອິດຂອງມັນ, arabiensis ໄດ້ຖືກປະເມີນສໍາລັບການໄດ້ມາຂອງທາດປະສົມໄນໂຕຣເຈນ, ລວມທັງ urea, ດ້ວຍການປະສົມປັດສະວະ. ຕໍ່ໄປ, ຊຸດທົດລອງໄດ້ຖືກດໍາເນີນເພື່ອປະເມີນວ່າຍຸງເພດຍິງຈັດສັນຊັບພະຍາກອນທີ່ມີທ່າແຮງຂອງສານອາຫານທີ່ມີຊີວິດຊີວາ. ກິ່ນຂອງປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸໄດ້ຖືກປະເມີນເພື່ອກໍານົດວ່າສິ່ງເຫຼົ່ານີ້ສະຫນອງຂໍ້ຄຶດທີ່ຫນ້າເຊື່ອຖືສໍາລັບເຈົ້າພາບແລະເລືອດ An. ໃນການຄົ້ນຫາຂອງເຂົາເຈົ້າສໍາລັບຊັບພະຍາກອນໂພຊະນາການທີ່ມີທ່າແຮງນີ້, arabiensis ຄົ້ນພົບຄວາມສໍາພັນທາງເຄມີທີ່ຢູ່ເບື້ອງຫລັງຄວາມດຶງດູດຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ສັງເກດເຫັນ. ປະສົມກິ່ນສັງເຄາະຂອງທາດປະສົມອິນຊີທີ່ລະຄາຍເຄືອງ (VOCs) ໄດ້ຖືກລະບຸໃນ 24-24-eva ເພີ່ມເຕີມ, ເງື່ອນໄຂການຂະຫຍາຍ 24-eva ຂອງພວກເຮົາ. ໄດ້ຮັບພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຫ້ອງທົດລອງແລະສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງຜົນກະທົບຂອງກິ່ນປັດສະວະ bovine ກ່ຽວກັບລັດ physiological ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ. Mosquito attraction.ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ໄດ້ຮັບຢືນຢັນວ່າ An. arabiensis ໄດ້ມາແລະແຈກຢາຍທາດປະສົມໄນໂຕຣເຈນທີ່ພົບເຫັນຢູ່ໃນປັດສະວະທີ່ມີກະດູກສັນຫຼັງເພື່ອສ້າງອິດທິພົນຕໍ່ຄຸນລັກສະນະປະຫວັດສາດຂອງຊີວິດ. ຜົນໄດ້ຮັບເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນໄດ້ປຶກສາຫາລືໃນແງ່ຂອງຜົນສະທ້ອນທາງລະບາດວິທະຍາແລະວິທີທີ່ພວກມັນສາມາດຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການເຝົ້າລະວັງ vector ແລະການຄວບຄຸມ.
Anopheles arabicans (Dongola strain) ໄດ້ຖືກຮັກສາໄວ້ທີ່ 25 ± 2 ° C, 65 ± 5% RH ແລະແສງສະຫວ່າງ 12:12 h: ວົງຈອນຊ້ໍາ. ຕົວອ່ອນຖືກລ້ຽງໃນຖາດພາດສະຕິກ (20 cm × 18 cm × 7 cm) ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ໍາກັ່ນແລະລ້ຽງTetramin®, ປາ, ອາຫານ. ໃນຈອກ 30 ມລ (Nolato Hertila, Åstorp, SE) ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນໄດ້ໂອນເຂົ້າໄປໃນ cages Bugdorm (30 cm × 30 cm × 30 cm; MegaView Science, Taichung, ໄຕ້ຫວັນ) ເພື່ອໃຫ້ເກີດການເກີດຂອງຜູ້ໃຫຍ່. ຜູ້ໃຫຍ່ໄດ້ຖືກສະຫນອງການແກ້ໄຂ sucrose 10% ad libitum ຈົນກ່ວາ 4 ມື້ຫຼັງຈາກເກີດການເກີດເປັນເຈົ້າພາບ, ແມ່ຍິງເປັນເຈົ້າພາບໃນທັນທີ (dpe) ການທົດລອງ. ຫຼືຖືກອຶດຫິວຄ້າງຄືນດ້ວຍນ້ໍາກັ່ນກ່ອນການທົດລອງ, ດັ່ງທີ່ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງລຸ່ມນີ້. ແມ່ຍິງທີ່ໃຊ້ໃນການທົດລອງທໍ່ບິນແມ່ນຫິວພຽງແຕ່ 4-6 ຊົ່ວໂມງດ້ວຍການດູດນ້ໍາ. ເພື່ອກະກຽມຍຸງດູດເລືອດສໍາລັບ bioassays ຕໍ່ມາ, ແມ່ຍິງ 4 dpe ໄດ້ຖືກສະຫນອງດ້ວຍເລືອດແກະ defibrotic (Håtunalab, ລະບົບການໃຫ້ອາຫານ), Bros. Accrington, ປະເທດອັງກິດ).ແມ່ຍິງທີ່ແອອັດເຕັມທີ່ໄດ້ຖືກຍົກຍ້າຍໄປຢູ່ໃນ cages ສ່ວນບຸກຄົນແລະໃຫ້ອາຫານໂດຍກົງ, ດັ່ງທີ່ອະທິບາຍຂ້າງລຸ່ມນີ້, ຫຼື 10% sucrose ad libitum ສໍາລັບ 3 ມື້ກ່ອນການທົດລອງທີ່ອະທິບາຍຂ້າງລຸ່ມນີ້. ແມ່ຍິງຄົນສຸດທ້າຍໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການ bioassays ທໍ່ບິນແລະໂອນໄປຫ້ອງທົດລອງ, ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນໄດ້ກັ່ນນ້ໍາ adlibitum ກ່ອນການທົດລອງ 4-6 ຊົ່ວໂມງ.
ການວິເຄາະການໃຫ້ອາຫານໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປະເມີນປະລິມານການບໍລິໂພກປັດສະວະແລະ urea ໃນຜູ້ໃຫຍ່ An.Arab ແມ່ຍິງ. ແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບແລະໃຫ້ເລືອດໄດ້ຖືກສະຫນອງອາຫານທີ່ມີປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸ 1% ເຈືອຈາງ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea, ແລະການຄວບຄຸມສອງຢ່າງ (10% sucrose ແລະນ້ໍາ) ສໍາລັບ 48 h. ນອກຈາກນັ້ນ, ການໃສ່ສີອາຫານ 1 ມລກ. 2650-17-1 ; ຍຸງ 10 ໂຕໃນຖ້ວຍ Petri ຂະຫນາດໃຫຍ່ (ເສັ້ນຜ່າກາງ 12 ຊຕມແລະຄວາມສູງ 6 ຊຕມ; Semadeni, Ostermundigen, CH; ຮູບ 1A) ໃນຄວາມມືດທີ່ສົມບູນຢູ່ທີ່ 25 ± 2 ຊມ°C ແລະ 65 ± 5% ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນພີ່ນ້ອງ. ການທົດລອງເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກເຮັດຊ້ໍາອີກ 5 ຫາ 10 ເທື່ອ. ຫຼັງຈາກການສໍາຜັດກັບຍຸງ, 2°C ເພີ່ມເຕີມ ການວິເຄາະອາຫານ.
ຊອກຫາປັດສະວະໃນທ້ອງ ແລະ urea ດູດໂດຍແມ່ບ້ານ ແລະ ດູດເລືອດ Anopheles arabianus ເພດຍິງ. ໃນການທົດລອງໃຫ້ອາຫານ (A), ຍຸງເພດຍິງໄດ້ຖືກສະຫນອງອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea, sucrose (10%), ແລະນ້ໍາກັ່ນ (H2O). ການດູດເລືອດຂອງແມ່ຫຼາຍກວ່າ (Host-see) (ການດູດເລືອດ). ການທົດສອບອາຫານອື່ນໆ. ກະລຸນາຮັບຊາບວ່າຜູ້ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໄດ້ດູດເອົາຍ່ຽວງົວ 72 ຊົ່ວໂມງໜ້ອຍກວ່າຍ່ຽວງົວ 168 ຊົ່ວໂມງ (B).ປະລິມານໄນໂຕຣເຈນສະເລ່ຍ (± ມາດຕະຖານ deviation) ຂອງປັດສະວະແມ່ນສະແດງຢູ່ໃນ inset. ຜູ້ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (D, F) ແລະການດູດເລືອດ (E, G) ແມ່ຍິງກິນໃນປະລິມານທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນ. (D, E) ທີ່ມີຊື່ຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນມີຄວາມແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກກັນແລະກັນ (ANOVA ເສັ້ນທາງດຽວໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະ post hoc ຂອງ Tukey; p < 0.05). ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຄ່າສະເລ່ຍ (BE).ເສັ້ນ dashed ຊື່ເປັນຕົວແທນຂອງເສັ້ນ regression log-linear (F, G)
ເພື່ອປົດປ່ອຍອາຫານທີ່ຖືກດູດຊຶມ, ຍຸງໄດ້ຖືກຈັດໃສ່ເປັນສ່ວນບຸກຄົນເຂົ້າໄປໃນທໍ່ microcentrifuge 1.5 ມລທີ່ມີນ້ໍາກັ່ນ 230 µl ແລະເນື້ອເຍື່ອຖືກລົບກວນໂດຍໃຊ້ pestle ຖິ້ມແລະມໍເຕີໄຮ້ສາຍ (VWR International, Lund, SE), ຕິດຕາມດ້ວຍ centrifugation ຢູ່ທີ່ 10 krpm ສໍາລັບ 10 min 20 µl (60na super). microplate (Sigma-Aldrich) ແລະການດູດຊຶມ (λ620) ໄດ້ຖືກກໍານົດໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງອ່ານ microplate ທີ່ອີງໃສ່ spectrophotometer (SPECTROStar® Nano, BMG Labtech, Ortenberg, DE) nm).ອີກທາງເລືອກ, ຍຸງໄດ້ຖືກດິນໃນ 1 ml ຂອງນ້ໍາກັ່ນ, 900 µl ຂອງການວິເຄາະເພື່ອການວັດແທກ 20 μl (UV λ60); 1800, Shimadzu, Kista, SE).ເພື່ອປະເມີນປະລິມານການກິນອາຫານ, ເສັ້ນໂຄ້ງມາດຕະຖານໄດ້ຖືກກະກຽມໂດຍການເຈືອຈາງຕາມລໍາດັບເພື່ອໃຫ້ຜົນຜະລິດ 0.2 µl ຫາ 2.4 µl ຂອງ 1 mg ml-1 xylene cyanide. ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ຄວາມຫນາແຫນ້ນຂອງ optical ຂອງຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງສີຍ້ອມສີທີ່ຮູ້ຈັກໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອກໍານົດປະລິມານຂອງອາຫານແຕ່ລະຊະນິດ.
ຂໍ້ມູນປະລິມານໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະທາງດຽວຂອງຄວາມຜັນຜວນ (ANOVA) ຕິດຕາມດ້ວຍການປຽບທຽບ post hoc pairwise ຂອງ Tukey (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc., Cary, NC, US, 1989–2007).ການວິເຄາະການຖົດຖອຍແບບເສັ້ນໄດ້ອະທິບາຍເຖິງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea hosting intakes ແລະການຕອບສະ ໜອງ ຂອງເລືອດຂອງ urea hostee. (GraphPad Prism v8.0.0 ສໍາລັບ Mac, GraphPad Software, San Diego, CA, US).
ປະມານ 20 µl ຂອງຕົວຢ່າງນໍ້າຍ່ຽວຈາກແຕ່ລະກຸ່ມອາຍຸໄດ້ຖືກຜູກມັດໃສ່ Chromosorb® W/AW (10 mg 80/100 mesh, Sigma Aldrich) ແລະຖືກຫຸ້ມໃສ່ໃນແຄບຊູນກົ່ວ (8 mm × 5 mm). ແຄບຊູນໄດ້ຖືກໃສ່ເຂົ້າໄປໃນຫ້ອງເຜົາໃຫມ້ຂອງປາ (0r2 CH, The CH) ວິທະຍາສາດ, Waltham, MA, U.S.) ເພື່ອກໍານົດປະລິມານໄນໂຕຣເຈນໃນປັດສະວະສົດແລະອາຍຸຕາມ protocol ຂອງຜູ້ຜະລິດ. ໄນໂຕຣເຈນທັງຫມົດ (g N l-1) ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ໂດຍອີງໃສ່ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ urea ທີ່ຮູ້ຈັກນໍາໃຊ້ເປັນມາດຕະຖານ.
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງອາຫານຕໍ່ການຢູ່ລອດຂອງແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບແລະການດູດເລືອດ, ຍຸງໄດ້ຖືກຈັດໃສ່ເປັນສ່ວນບຸກຄົນໃນຖ້ວຍ Petri ຂະຫນາດໃຫຍ່ (ເສັ້ນຜ່າກາງ 12 ຊຕມແລະຄວາມສູງ 6 ຊຕມ; Semadeni) ທີ່ມີຮູຕາຫນ່າງໃນຝາປິດ (ເສັ້ນຜ່າກາງ 3 ຊຕມ) ສໍາລັບການລະບາຍອາກາດແລະການສະຫນອງອາຫານ. ອາຫານໄດ້ຖືກສະຫນອງໂດຍກົງຫຼັງຈາກ 4 aged 1% coluted ແລະສົດ. ຂອງ urea, ແລະສອງການຄວບຄຸມ, 10% sucrose ແລະນ້ໍາ. ອາຫານແຕ່ລະຄົນໄດ້ຖືກ pipetted ໃສ່ tampon ແຂ້ວ (DAB Dental AB, Uplands Väsby, SE) ໃສ່ເຂົ້າໄປໃນ syringe 5 ມລ (Thermo Fisher Scientific, Gothenburg, SE), plunger ເອົາອອກ, ແລະວາງໄວ້ເທິງສຸດຂອງອາຫານ 1Ch. ມື້. ຮັກສາຫ້ອງທົດລອງດັ່ງທີ່ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງເທິງ. ຍຸງທີ່ລອດຊີວິດຖືກນັບມື້ລະ 2 ເທື່ອ, ໃນຂະນະທີ່ຍຸງຕາຍຖືກຖິ້ມຈົນກ່ວາຍຸງລາຍສຸດທ້າຍຕາຍ (n = 40 ຕໍ່ການປິ່ນປົວ).ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງທີ່ກິນໃນຄາບອາຫານຕ່າງໆແມ່ນໄດ້ຖືກວິເຄາະທາງສະຖິຕິໂດຍໃຊ້ເສັ້ນໂຄ້ງການຢູ່ລອດຂອງ Kaplan-Meyer ແລະການສົມທຽບການຈໍາໜ່າຍຂອງສານ IBMSS (ການແຈກຢາຍແບບບັນທຶກ IBMSS). ສະຖິຕິ 24.0.0.0).
ໂຮງງານຜະລິດຍຸງບິນແບບກຳນົດເອງໂດຍອ້າງອີງຈາກ Attisano et al.[17], ເຮັດດ້ວຍແຜງອາຄິລິກໜາ 5 ມມ (ກວ້າງ 10 ຊຕມ x ຍາວ 10 ຊຕມ x ສູງ 10 ຊຕມ) ໂດຍບໍ່ມີແຜງດ້ານໜ້າ ແລະ ດ້ານຫຼັງ (ຮູບ 3: ດ້ານເທິງ).ການປະກອບແກນກັບທໍ່ຕັ້ງທີ່ເຮັດດ້ວຍຖັນແກ໊ສໂຄມາຕາກຣາກຣີ (0.25 ມມ. ຕ້ອງການເສັ້ນກາວ 5 ມມ). ໂຈະລະຫວ່າງແມ່ເຫຼັກ neodymium ຄູ່ໜຶ່ງທີ່ຫ່າງກັນ 9 ຊມ.ທໍ່ແນວນອນທີ່ເຮັດດ້ວຍວັດສະດຸດຽວກັນ (6.5 ຊຕມ) ແຍກທໍ່ແນວຕັ້ງເພື່ອສ້າງເປັນສາຍແຂນ ແລະແຂນທີ່ເອົາແຜ່ນອາລູມີນຽມອັນນ້ອຍໆເປັນສັນຍານລົບກວນ.
ແມ່ຍິງທີ່ອຶດຫິວ 24 ຊົ່ວໂມງແມ່ນໄດ້ຮັບອາຫານຂ້າງເທິງເປັນເວລາ 30 ນາທີກ່ອນການຍັບຍັ້ງ. ຍຸງເພດຍິງທີ່ໃຫ້ອາຫານເຕັມທີ່ແລ້ວໄດ້ຖືກນຳມາໃສ່ຢາສະລົບເປັນສ່ວນຕົວໃສ່ນ້ຳກ້ອນເປັນເວລາ 2-3 ນາທີ ແລະ ຕິດກັບເຂັມແມງໄມ້ດ້ວຍນ້ຳເຜິ້ງ (Joel Svenssons Vaxfabrik AB, Munka Ljungby, SE) ແລະຈາກນັ້ນກໍ່ເອົາທໍ່ແຂນ. Mill.Revolutions ຕໍ່ຖ້ຽວບິນຖືກບັນທຶກໂດຍຕົວບັນທຶກຂໍ້ມູນທີ່ສ້າງຂຶ້ນເອງ, ຈາກນັ້ນເກັບຮັກສາ ແລະສະແດງໂດຍໃຊ້ຊອບແວ PC-Lab 2000™ (v4.01; Velleman, Gavere, BE).ໂຮງການບິນຖືກວາງໄວ້ໃນຫ້ອງທີ່ຄວບຄຸມສະພາບອາກາດ (12 h:12 h, ແສງສະຫວ່າງ: ມືດ, 25 ± 2 °C), 6% ± 5 °C.
ເພື່ອຈິນຕະນາການຮູບແບບຂອງກິດຈະກໍາການບິນ, ໄລຍະທາງບິນທັງຫມົດ (m) ແລະຈໍານວນກິດຈະກໍາການບິນຕິດຕໍ່ກັນທັງຫມົດໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ຕໍ່ຊົ່ວໂມງໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ. ນອກຈາກນັ້ນ, ໄລຍະທາງສະເລ່ຍທີ່ບິນໂດຍແມ່ຍິງແຕ່ລະຄົນໄດ້ຖືກປຽບທຽບໃນທົ່ວການປິ່ນປົວແລະການວິເຄາະໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະທາງດຽວ ANOVA ແລະ Tukey's post hoc analysis (JMP Pro, v14.0.0), ການປິ່ນປົວໂດຍສະເລ່ຍຂອງ SAS vient Institute Inc. ປັດໄຈເອກະລາດ.ນອກຈາກນັ້ນ, ຈໍານວນສະເລ່ຍຂອງຮອບແມ່ນຄິດໄລ່ໃນ 10 ນາທີເພີ່ມຂຶ້ນ.
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງອາຫານຕໍ່ປະສິດທິພາບການຈະເລີນພັນຂອງ An.arabiensis, ແມ່ຍິງຫົກຄົນ (4 dpe) ໄດ້ຖືກໂອນໂດຍກົງໃສ່ Bugdorm cages (30 cm × 30 cm × 30 cm) ຫຼັງຈາກການເກັບເລືອດແລະຫຼັງຈາກນັ້ນໃຫ້ອາຫານທົດລອງເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງຕາມທີ່ໄດ້ກ່າວໄວ້ຂ້າງເທິງ. ອາຫານໄດ້ຖືກໂຍກຍ້າຍອອກແລະວາງໄຂ່ (30 ml) ຈອກທີສາມຂອງ Nolato distil 0 30 ມລ. ມື້ຫນຶ່ງເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງ, ການປ່ຽນແປງທຸກໆ 24 ຊົ່ວໂມງ. ເຮັດຊ້ໍາແຕ່ລະອາຫານ 20-50 ເທື່ອ. ໄຂ່ໄດ້ຖືກນັບແລະບັນທຶກສໍາລັບແຕ່ລະ cage ທົດລອງ. ຕົວຢ່າງຂອງໄຂ່ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປະເມີນຄວາມແຕກຕ່າງກັນຂະຫນາດແລະຄວາມຍາວຂອງໄຂ່ແຕ່ລະຄົນ (n ≥ 200 ຕໍ່ຄາບອາຫານ) ໂດຍໃຊ້ກ້ອງຈຸລະທັດ Dialux-20 (DM1000, Wetz, Wetzlarst, Wetzlarst, DM1000); ກ້ອງ Leica (DFC) 320 R2; Leica Microsystems Ltd., DE).ໄຂ່ທີ່ຍັງເຫຼືອຖືກເກັບຮັກສາໄວ້ໃນຫ້ອງທີ່ຄວບຄຸມສະພາບອາກາດພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂການລ້ຽງແບບມາດຕະຖານເປັນເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ, ແລະຕົວຢ່າງຍ່ອຍຂອງຕົວອ່ອນທີ່ເກີດໃໝ່ເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້ (n ≥ 200 ໂຕຕໍ່ຄາບອາຫານ) ໄດ້ຖືກວັດແທກ, ດັ່ງທີ່ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງເທິງ. ຈຳນວນໄຂ່ ແລະ ຂະໜາດຂອງໄຂ່ ແລະ ຕົວອ່ອນແມ່ນໄດ້ຖືກປຽບທຽບລະຫວ່າງວິທີການປິ່ນປົວ ແລະ ໂຕອ່ອນຂອງ NOMP. Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ການເກັບຕົວຢ່າງນໍ້າຍ່ຽວສົດ (1 ຊົ່ວໂມງຫຼັງການເກັບຕົວຢ່າງ), 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ ແມ່ນໄດ້ເກັບເອົາຕົວຢ່າງທີ່ເກັບມາຈາກງົວ Zebu, ເຊື້ອຊາດ Arsi. ເພື່ອຄວາມສະດວກສະບາຍ, ການເກັບຕົວຢ່າງປັດສະວະໃນຕອນເຊົ້າຕອນເຊົ້າໃນຂະນະທີ່ງົວຍັງຢູ່ໃນຖັງ. ຕົວຢ່າງປັດສະວະໄດ້ຖືກເກັບຕົວຢ່າງແຕ່ລະຕົວເປັນ 1002 ml. ຖົງອົບ polyamide (Toppits Cofresco, Frischhalteprodukte GmbH ແລະ Co., Minden, DE) ໃນ 3 l polyamide ທີ່ມີຝາປິດໃນ vinyl chloride plastic drums.Headspace volatiles ຈາກແຕ່ລະຕົວຢ່າງປັດສະວະ bovine ໄດ້ຖືກເກັບກໍາໂດຍກົງ (ສົດ) ຫຼືຫຼັງຈາກການເຕີບໂຕເຕັມທີ່ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ, ແຕ່ລະ h 7 6, 24 h. ເປັນຕົວແທນຂອງແຕ່ລະກຸ່ມອາຍຸ.
ສໍາລັບການເກັບຕົວລະເຫີຍໃນ headspace, ລະບົບວົງປິດໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອແຜ່ກະແສອາຍແກັສການກັ່ນຕອງກາກບອນທີ່ເປີດໃຊ້ງານ (100 ml min-1) ຜ່ານຖົງ polyamide ໄປຫາຖັນ adsorption ເປັນເວລາ 2.5 ຊົ່ວໂມງໂດຍການນໍາໃຊ້ປັ໊ມສູນຍາກາດ diaphragm (KNF Neuberger, Freiburg, DE).ໃນຖານະເປັນການຄວບຄຸມ, ການເກັບເອົາຄໍລໍາ adsorption ຫວ່າງເປົ່າແມ່ນເຮັດຈາກຖົງຢາງ. ທໍ່ Teflon (5.5 cm x 3 mm id) ບັນຈຸ 35 mg ຂອງ Porapak Q (50/80 mesh; Waters Associates, Milford, MA, US) ລະຫວ່າງປລັກຂົນແກະແກ້ວ. ກ່ອນທີ່ຈະໃຊ້, ຖັນໄດ້ຖືກລ້າງດ້ວຍ 1 ml redistilled n-hexane (Merck, Darmstadt) ບໍລິສຸດ 19% DE, 90 ml. ເກຣດ, Sigma Aldrich).ການລະເຫີຍທີ່ດູດຊຶມໄດ້ຖືກ eluted ດ້ວຍ 400 μl ຂອງ pentane. ການເກັບກ່ຽວ headspace ໄດ້ຖືກລວມກັນແລະຫຼັງຈາກນັ້ນເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ -20 ° C ຈົນກ່ວາການນໍາໃຊ້ສໍາລັບການວິເຄາະເພີ່ມເຕີມ.
ການຕອບສະໜອງດ້ານພຶດຕິກຳຂອງສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍຂອງ An.Headspace ທີ່ເກັບມາຈາກປັດສະວະສົດ, 24-h, 72-h, ແລະ 168-h ໄດ້ຖືກວິເຄາະສໍາລັບສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍຈາກຍຸງ Arabidopsis ໂດຍໃຊ້ olfactometer ທໍ່ແກ້ວຊື່ [18]. ການທົດລອງ, 13 ໄລຍະເວລາຂອງ Z. ກິດຈະກຳຊອກຫາບ້ານ.Arab [19].ເຄື່ອງວັດແທກທໍ່ແກ້ວ (80 cm × 9.5 cm id) ຖືກແສງດ້ວຍແສງສີແດງ 3 ± 1 lx ຈາກຂ້າງເທິງ. ຖ່ານທີ່ກັ່ນຕອງ ແລະ ລະບາຍອາກາດທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ (25 ± 2°C, 65 ± 2% ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນພີ່ນ້ອງ) ຜ່ານທາງສະແຕນເລດ 3 ຊັງຕີແມັດຜ່ານເຫຼັກກ້າ 1 cm. ຫນ້າຈໍ, ການສ້າງການໄຫຼຂອງ laminar ແລະໂຄງສ້າງ plume ເອກະພາບ.Dental tampon dispenser (4 cm × 1 cm; L:D; DAB Dental AB), ໂຈະຈາກ coil 5 cm ຢູ່ປາຍ windward ຂອງ olfactometer, ມີການປ່ຽນແປງ stimulator ທຸກໆ 5 ນາທີ. ສໍາລັບການວິເຄາະ, 10 μlຂອງແຕ່ລະ headspace extract, diluted ນໍາໃຊ້ເປັນ 10e ຈໍານວນ 10e. ການຄວບຄຸມ. ຍຸງທີ່ຊອກຫາແມ່ບ້ານ ຫຼື ດູດເລືອດ ໄດ້ຖືກຈັດໃສ່ໃນຄອກປ່ອຍຕົວບຸກຄົນ 2-3 ຊົ່ວໂມງກ່ອນເລີ່ມການທົດລອງ. ກະຕ່າປ່ອຍໄດ້ຖືກວາງໄວ້ທາງລຸ່ມຂອງ olfactometer, ແລະ ຍຸງໄດ້ຖືກອະນຸຍາດໃຫ້ acclimate ເປັນເວລາ 1 ນາທີ, ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນໄດ້ເປີດວາວ butterfly ຂອງ cage ເພື່ອວິເຄາະການຕິດຕໍ່ຂອງສັດສ່ວນ. ກັບແຫຼ່ງພາຍໃນ 5 ນາທີຂອງການປ່ອຍອອກມາ. ແຕ່ລະຫົວທີ່ສະກັດແລະຄວບຄຸມການລະເຫີຍຂອງ headspace ໄດ້ຖືກ replicated ຢ່າງຫນ້ອຍ 30 ເທື່ອ, ແລະເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການຜົນກະທົບຂອງມື້ຫນຶ່ງ, ຈໍານວນດຽວກັນຂອງການປິ່ນປົວແລະການຄວບຄຸມໄດ້ຖືກທົດສອບໃນແຕ່ລະມື້ທົດລອງ. ຊອກຫາຄໍາຕອບຈາກ host ແລະ blood-fed Ans.Arabic versus headspace sets ໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ nominal logistic regression, ຕາມດ້ວຍອັດຕາສ່ວນ progression J. v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ການຕອບສະໜອງການວາງໄຂ່ຂອງ An. ສານສະກັດຫົວຈາກປັດສະວະງົວສົດ ແລະ ອາຍຸຖືກວິເຄາະໃນຄອກ Bugdorm (30 cm × 30 cm × 30 cm; MegaView Science). ຖ້ວຍພາດສະຕິກ (30 ມລ; Nolato Hertila) ເຕັມໄປດ້ວຍນ້ໍາກັ່ນ 20 ມລໄດ້ສະຫນອງການວາງໄຂ່ຂອງ substrate ແລະຖືກຈັດໃສ່ໃນມຸມກົງກັນຂ້າມ 4 cm. ດ້ວຍ 10 μlຂອງແຕ່ລະຫົວສະກັດຢູ່ທີ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ 1:10. ປະລິມານທີ່ເທົ່າທຽມກັນຂອງ pentane ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປັບຈອກຄວບຄຸມ. ການປິ່ນປົວແລະຈອກຄວບຄຸມໄດ້ຖືກແລກປ່ຽນລະຫວ່າງແຕ່ລະການທົດລອງເພື່ອຄວບຄຸມຜົນກະທົບຕໍາແຫນ່ງ. ແມ່ຍິງທີ່ກິນເລືອດສິບຄົນໄດ້ຖືກປ່ອຍອອກມາໃນ cages ທົດລອງທີ່ ZT 9-11 ແລະໄຂ່ໃນຈອກໄດ້ຖືກນັບ 24 ຊົ່ວໂມງຕໍ່ມາຂອງສູດການຄິດໄລ່. ໃນຈອກການປິ່ນປົວ – ຈໍານວນຂອງໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້ໃນຈອກຄວບຄຸມ)/(ຈໍານວນໄຂ່ທັງຫມົດວາງໄວ້).ແຕ່ລະການປິ່ນປົວແມ່ນຊ້ໍາ 8 ເທື່ອ.
ການວິເຄາະຮູບແບບການຊອກຄົ້ນຫາແບບແກັສໂຄຣມາຕາກຣາຟິກ ແລະເສົາອາກາດອີເລັກໂທຣນິກ (GC-EAD) ຂອງເພດຍິງ An.arabiensis ໄດ້ຖືກປະຕິບັດຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ກ່ອນໜ້ານີ້ [20]. ໂດຍຫຍໍ້, ສານສະກັດຈາກຊ່ອງຫົວທີ່ສົດຊື່ນຖືກແຍກອອກໂດຍໃຊ້ Agilent Technologies 6890 GC (Santa Clara, CA, US) ພ້ອມກັບຖັນ HP-5 m20, 3. μmຄວາມຫນາຂອງຮູບເງົາ, ເຕັກໂນໂລຊີ Agilent). ແລະ urine aging.Hydrogen ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນໄລຍະມືຖືທີ່ມີອັດຕາການໄຫຼຂອງເສັ້ນສະເລ່ຍຂອງ 45 cm s-1.ແຕ່ລະຕົວຢ່າງ (2 μl) ໄດ້ຖືກສີດສໍາລັບ 30 ວິນາທີໃນຮູບແບບ splitless ກັບອຸນຫະພູມ inlet ຂອງ 225 °C. ອຸນຫະພູມເຕົາອົບ GC ໄດ້ດໍາເນີນໂຄງການຈາກ 35 °C (3 ນາທີຖື) ກັບ 300 ° C) ນາທີ (1-300 ° C). ຕົວແຍກນໍ້າເສຍ, 4 psi ຂອງໄນໂຕຣເຈນໄດ້ຖືກເພີ່ມແລະແຍກ 1: 1 ໃນ Gerstel 3D / 2 ຕ່ໍາປະລິມານຕາຍຂ້າມ (Gerstel, Mülheim, DE) ລະຫວ່າງເຄື່ອງກວດຈັບ ionization flame ແລະ EAD. The GC effluent capillary ສໍາລັບ EAD ໄດ້ຖືກສົ່ງຜ່ານສາຍໂອນ Gerstel ODP-2, ເຊິ່ງບວກກັບທໍ່ 5 ° C, ອຸນຫະພູມ 5 C.C. ມມ), ບ່ອນທີ່ມັນຖືກປະສົມກັບອາກາດທີ່ກັ່ນຕອງກາກບອນ, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ (1.5 ລິດນາທີ−1).ເສົາອາກາດຖືກວາງໄວ້ 0.5 ຊຕມຈາກຮູທໍ່ນັ້ນ.
ການກໍານົດທາດປະສົມທາງຊີວະພາບໃນບ່ອນເກັບມ້ຽນຂອງປັດສະວະສົດ ແລະ ອາຍຸ ໂດຍໃຊ້ GC ແລະ spectrometer ມະຫາຊົນ (GC-MS; 6890 GC ແລະ 5975 MS; Agilent Technologies) ເພື່ອເອົາການຕອບສະ ໜອງ ຂອງແມ່ທ້ອງໃນການວິເຄາະ GC-EAD, ປະຕິບັດການໃນໂຫມດ ionization ຜົນກະທົບຂອງເອເລັກໂທຣນິກທີ່ 70-UIMS. fused silica capillary column (60 m × 0.25 mm ເສັ້ນຜ່າສູນກາງພາຍໃນ, ຄວາມຫນາຂອງຮູບເງົາ 0.25 μm) ໂດຍໃຊ້ helium ເປັນໄລຍະມືຖືທີ່ມີອັດຕາການໄຫຼຂອງເສັ້ນສະເລ່ຍຂອງ 35 cm s-1.A 2 μlຕົວຢ່າງຖືກສີດໂດຍໃຊ້ການຕັ້ງຄ່າ injector ດຽວກັນແລະອຸນຫະພູມເຕົາອົບສໍາລັບການວິເຄາະ GC-EAD.Compounds ໂດຍອີງໃສ່ການຍຶດຫມັ້ນຂອງພວກມັນ (ເວລາແລະດັດຊະນີມະຫາຊົນ) ຂອງພວກມັນ. spectra ປຽບທຽບກັບຫ້ອງສະຫມຸດທີ່ກໍາຫນົດເອງແລະຫ້ອງສະຫມຸດ NIST14 (Agilent).ທາດປະສົມທີ່ຖືກກໍານົດໄດ້ຖືກຢືນຢັນໂດຍການສີດມາດຕະຖານຂອງແທ້ຈິງ (ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S2). ສໍາລັບປະລິມານ, heptyl acetate (10 ng, ຄວາມບໍລິສຸດທາງເຄມີ 99.8%, Aldrich) ໄດ້ຖືກສີດເປັນມາດຕະຖານພາຍນອກ.
ການປະເມີນປະສິດທິພາບຂອງສານປະສົມກິ່ນສັງເຄາະທີ່ປະກອບດ້ວຍສານປະກອບທາງຊີວະພາບທີ່ລະບຸໄວ້ໃນນໍ້າຍ່ຽວສົດ ແລະ ອາຍຸເພື່ອດຶງດູດ Ans.arabiensis ທີ່ເປັນເຈົ້າພາບ ແລະດູດເລືອດ, ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງວັດແທກ olfactometer ແລະໂປໂຕຄອນດຽວກັນກັບຂ້າງເທິງ. ທາດປະສົມສັງເຄາະໄດ້ເຮັດຕາມອົງປະກອບ ແລະອັດຕາສ່ວນຂອງທາດປະສົມຢູ່ໃນຫົວປະສົມຂອງສານລະລາຍສົດ-4, ສານສະກັດຈາກສົດ-4, 4 ທາດລະລາຍ. ຍ່ຽວອາຍຸ 72 ຊົ່ວໂມງ ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບ 5D-G; ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S2).ສຳລັບການວິເຄາະ, ໃຫ້ໃຊ້ 10 μl ຂອງສານປະສົມສັງເຄາະເຕັມທີ່ 1:100, ອັດຕາການປ່ອຍຕົວໂດຍລວມຕັ້ງແຕ່ປະມານ 140-2400 ng h-1, ສໍາລັບເລືອດທີ່ດຶງດູດ ແລະ 1. mosquitoes.ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ການທົດສອບແມ່ນດໍາເນີນຢູ່ໃນສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນ, ໃນນັ້ນການຫັກລົບຂອງທາດປະສົມດຽວຂອງປະສົມທີ່ສົມບູນໄດ້ຖືກໂຍກຍ້າຍອອກ. ຊອກຫາຄໍາຕອບຈາກເຈົ້າພາບແລະເລືອດ Ans.Arab vs ຂອງປະສົມສັງເຄາະແລະລົບໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ regression logistic nominal ຕິດຕາມດ້ວຍການປຽບທຽບຄູ່ສໍາລັບອັດຕາສ່ວນຄີກ (JMP.0.0). ສະຖາບັນ S., v14.
ເພື່ອປະເມີນວ່າປັດສະວະງົວສາມາດເປັນບ່ອນຢູ່ອາໄສຂອງຍຸງໄຂ້ຍຸງ, ນໍ້າຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ອາຍຸ, ເກັບເອົາຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງເທິງ, ແລະ ນ້ຳໃສ່ໃນຕາໜ່າງ 3 ຖັງ (100 ມລ) ແລະ ວາງໃສ່ກັບດັກເຫຍື່ອ. (ສະບັບ BG-HDT; BioGents, Regensburg, DE). 10 ດັກຖືກວາງໄວ້ຫ່າງກັນ 50 m ໃນທົ່ງຫຍ້າ, 400 m ຈາກຊຸມຊົນບ້ານ (Silay, Ethiopia, 5°53´24´´N, 37°29´24´E) ແລະບໍ່ມີງົວ, ຢູ່ໃນບ່ອນລ້ຽງສັດແບບຖາວອນແລະບ້ານທີ່ມີກັບດັກ 5 ທີ່ມີຄວາມຮ້ອນ, ຫ້າບ່ອນທີ່ມີເຈົ້າພາບ. unheated.ແຕ່ລະສະຖານທີ່ການປິ່ນປົວແມ່ນ rotated ໃນຕອນກາງຄືນເປັນຈໍານວນທັງຫມົດຫ້າຄືນ.ຕົວເລກຂອງຍຸງຈັບໃນກັບດັກ baited ກັບປັດສະວະຂອງອາຍຸທີ່ແຕກຕ່າງກັນໄດ້ຖືກປຽບທຽບໂດຍໃຊ້ logistic regression ດ້ວຍການແຈກຢາຍ beta binomial (JMP Pro, v14.0.0, SAS Institute Inc.).
ຢູ່ໃນບ້ານທີ່ເປັນພະຍາດໄຂ້ຍຸງໃກ້ກັບເມືອງ Maki, ພາກພື້ນ Oromia, ປະເທດເອທິໂອເປຍ (8° 11′ 08″ N, 38° 81′ 70″ E; ຮູບ 6A). ໃນເຂດນອກບ້ານໄດ້ຖືກຄັດເລືອກເພື່ອສຶກສາ (ຮູບທີ 6A).ມາດຖານທີ່ໃຊ້ໃນການເລືອກບ້ານຄື: ຫ້າມລ້ຽງສັດໃນເຮືອນ, ຫ້າມເຮັດອາຫານພາຍໃນເຮືອນ (ຟືນ ຫຼື ຖ່ານ) (ຢ່າງນ້ອຍໃນໄລຍະທົດລອງ), ແລະ ເຮືອນທີ່ມີປະຊາກອນສູງສຸດ 2 ຄົນ, ນອນຢູ່ໃນເຮືອນທີ່ບໍ່ມີຢາຂ້າແມງໄມ້. ພາຍໃຕ້ຜ້າກັນຍຸງທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ. ການອະນຸມັດດ້ານຈັນຍາບັນໄດ້ຮັບການອະນຸມັດຈາກຄະນະກໍາມະການກວດກາດ້ານຈັນຍາບັນຂອງການຄົ້ນຄວ້າຂອງສະຖາບັນ (IRB/022/2016) ຂອງຄະນະວິທະຍາສາດທໍາມະຊາດ (CNS-IRB), ມະຫາວິທະຍາໄລ Addis Ababa, ອີງຕາມຂໍ້ແນະນໍາທີ່ສ້າງຕັ້ງຂຶ້ນໂດຍຖະແຫຼງການຂອງສະມາຄົມການແພດໂລກຂອງ Helsinki. ການຍິນຍອມເຫັນດີຈາກແຕ່ລະຫົວຫນ້າຄອບຄົວຂອງຂະບວນການບໍລິຫານທັງຫມົດແມ່ນໄດ້ຮັບ. ລະດັບເມືອງ ແລະອຸປະຖໍາ ('kebele'). ການອອກແບບທົດລອງປະຕິບັດຕາມການອອກແບບສີ່ຫຼ່ຽມລາຕິນ 2 × 2, ເຊິ່ງການປະສົມສັງເຄາະ ແລະການຄວບຄຸມໄດ້ຖືກມອບໝາຍໃຫ້ເຮືອນຄູ່ໃນຄືນທຳອິດ ແລະ ແລກປ່ຽນລະຫວ່າງເຮືອນໃນຄືນທົດລອງຕໍ່ໄປ. ຂັ້ນຕອນນີ້ແມ່ນເຮັດຊ້ຳອີກ 10 ເທື່ອ. ນອກຈາກນັ້ນ, ເພື່ອຄາດຄະເນການເຄື່ອນໄຫວຂອງຍຸງໃນເຮືອນທີ່ເລືອກ, ການທົດລອງ CDC ໄດ້ຖືກກຳນົດໄວ້ໃນຕອນກາງຄືນ ແລະ ດຳເນີນໄປຫ້າຕອນກາງຄືນ. ເວລາຂອງມື້.
ທາດປະສົມສັງເຄາະທີ່ບັນຈຸທາດປະສົມທາງຊີວະພາບ 6 ຊະນິດຖືກລະລາຍໃນ heptane (97.0% ທາດລະລາຍ GC ເກຣດ, Sigma Aldrich) ແລະປ່ອຍອອກມາເມື່ອ 140 ng h-1 ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງເຮັດຜ້າຝ້າຍຝ້າຍ [20].ເຄື່ອງປັ່ນ wick ອະນຸຍາດໃຫ້ທາດປະສົມທັງໝົດຖືກປ່ອຍອອກມາໃນອັດຕາສ່ວນຄົງທີ່ຕະຫຼອດໄລຍະທົດລອງ 12 ຊົ່ວໂມງ. ຂັ້ນຕອນຕໍ່ໄປຂອງ Heptane ແມ່ນໃຊ້ເປັນຕົວຄວບຄຸມ. ຈັ່ນຈັບແສງສູນຄວບຄຸມ ແລະ ປ້ອງກັນພະຍາດ (CDC) (ບໍລິສັດ John W. Hock, Gainesville, FL, ສະຫະລັດ; ຮູບ 6A). ຈັ່ນຈັບຖືກແຂວນໄວ້ສູງຈາກໜ້າດິນ 0.8 – 1 ແມັດ, ໃກ້ກັບຕີນຕຽງ, ແລະ ອາສາສະໝັກຄົນໜຶ່ງໄດ້ນອນຢູ່ໃຕ້ຕາໜ່າງທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ ແລະ ດຳເນີນການລະຫວ່າງເວລາ 18:00 – 06:00 ໂມງ ແລະ ສະຖານະການຮ່ວມເພດຂອງ Mosquis: 3. (unfed, fed, semi-pregnant, ແລະຖືພາ [21] ຕໍ່ມາໄດ້ຖືກກວດກາໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະລະບົບຕ່ອງໂສ້ polymerase (PCR) ເພື່ອກໍານົດຊະນິດ morphologically ກໍານົດເປັນ A. gambiae sl. ສະມາຊິກຂອງສະລັບສັບຊ້ອນ [23]. ໃນການສຶກສາພາກສະຫນາມ, ການໃສ່ກັບດັກຂອງເຮືອນຄູ່ໄດ້ຖືກວິເຄາະໂດຍໃຊ້ຕົວແບບ logistic ທີ່ເຫມາະກັບການປິ່ນປົວແບບນາມສະກຸນແລະການຄວບຄຸມ (vantaris). ຜົນກະທົບຄົງທີ່ (JMP® 14.0. 0. SAS Institute Inc.).
ປະເມີນວ່າມັນປອດໄພຫຼືບໍ່.arabiensis ສາມາດໄດ້ຮັບນໍ້າຍ່ຽວ, ແຫຼ່ງໄນໂຕຣເຈນຫຼັກຂອງມັນ, ຢູເຣຍ, ໂດຍການໃຫ້ອາຫານໂດຍກົງ, ພາຍໃນ 48 ຊົ່ວໂມງຂອງການບໍລິຫານເປັນເວລາ 4 ມື້ຫຼັງຈາກການທົດລອງຊອກຫາເຈົ້າພາບ (dpe) ແລະການໃຫ້ອາຫານເພດຍິງ (ຮູບ 1A).ທັງການໃຫ້ອາຫານທີ່ເປັນເຈົ້າພາບ ແລະແມ່ຍິງດູດເລືອດແມ່ນດູດຊຶມໄດ້ຫຼາຍກວ່າການກິນອາຫານຫຼາຍກວ່າ 6 ດອກ, suc (25 ນ້ໍາ) ຫຼາຍກວ່າອາຫານອື່ນໆ. 20.15, p < 0.0001 ແລະ F(5,299) = 56.00, p < 0.0001, ຕາມລໍາດັບ; ດູດຊຶມ urea ຫຼາຍຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຢູ່ທີ່ 2.69 mM ເມື່ອປຽບທຽບກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນແລະນ້ໍາອື່ນໆທັງຫມົດ, ໃນຂະນະທີ່ບໍ່ສາມາດແຍກອອກຈາກ 10% sucrose (F(10,813) = 15.72, p < 0.0001; ຮູບ 1D). ນີ້ແມ່ນກົງກັນຂ້າມກັບການຕອບສະຫນອງຂອງອາຫານທີ່ດູດຊຶມໃນເລືອດຂອງແມ່ຍິງຫຼາຍກວ່າປົກກະຕິ, ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ເຖິງວ່າຈະມີ sucrose ຫນ້ອຍກວ່າ 10% ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (F(10,557) = 78.35, p < 0.0001; ຮູບ 1).1E). ນອກຈາກນັ້ນ, ເມື່ອປຽບທຽບລະຫວ່າງສອງລັດທາງກາຍະພາບ, ແມ່ຍິງ phlebotomized ດູດຊຶມ urea ຫຼາຍກ່ວາແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໃນປະລິມານຕ່ໍາສຸດແລະຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງເພດຍິງເຫຼົ່ານີ້. (F(1,953)= 78.82, p < 0.0001; Fig. 1F, G). ໃນຂະນະທີ່ການໄດ້ຮັບຈາກອາຫານທີ່ມີທາດ urea ປະກົດວ່າມີຄຸນຄ່າທີ່ດີທີ່ສຸດ (ຮູບ 1D,E), ເພດຍິງໃນທັງສອງລັດທາງສະລີລະວິທະຍາສາມາດປັບປະລິມານຂອງລະດັບຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ urea ຂອງ urea ທີ່ດູດຊຶມໄດ້. 1F,G). ) ເຊັ່ນດຽວກັນ, ຍຸງເບິ່ງຄືວ່າຈະຄວບຄຸມການດູດຊຶມໄນໂຕຣເຈນຂອງພວກມັນໂດຍການຄວບຄຸມປະລິມານການດູດຊຶມຂອງປັດສະວະ, ເນື່ອງຈາກວ່າປະລິມານໄນໂຕຣເຈນໃນປັດສະວະແມ່ນສະທ້ອນໃຫ້ເຫັນໃນປະລິມານທີ່ຖືກດູດຊຶມ (ຮູບ 1B, C ແລະ B insets).
ເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງປັດສະວະແລະ urea ຕໍ່ການຢູ່ລອດຂອງຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບແລະການດູດເລືອດ, ແມ່ຍິງໄດ້ຖືກປ້ອນປັດສະວະຂອງອາຍຸທັງສີ່ (ສົດ, 24 ຊົ່ວໂມງ, 72 ຊົ່ວໂມງ, ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງຫຼັງການຊຶມເຊື້ອ) ແລະລະດັບຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ urea, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບນ້ໍາກັ່ນແລະ 10% A2 ການວິເຄາະ sucure ຄວບຄຸມ. ອາຫານມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ຄວາມຢູ່ລອດໂດຍລວມໃນແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (ຍ່ຽວ: χ2 = 108.5, df = 5, p < 0.0001; urea: χ2 = 122.8, df = 5, p < 0.0001; Fig. 2B, C) ແລະ urine-fed 9 = 2 ແມ່ຍິງ. 5, p < 0.0001 ; ຍ່ຽວທີ່ມີກິ່ນເໝັນສະແດງອັດຕາການລອດຕາຍທີ່ແຕກຕ່າງ, ໂດຍທີ່ປັດສະວະທີ່ກິນ 72-h (p = 0.016) ມີຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງການຢູ່ລອດຕໍ່າສຸດ (ຮູບ 2B). ນອກຈາກນັ້ນ, ແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ກິນ urea 135 mM ລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າການຄວບຄຸມນ້ໍາ (p < C, 0.0). ຍ່ຽວ ແລະ ຍ່ຽວ 24 ຊົ່ວໂມງ ລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າ (p = 0.001 ແລະ p = 0.012, ຕາມລໍາດັບ; ຮູບ 2D), ໃນຂະນະທີ່ຜູ້ຍິງທີ່ກິນດ້ວຍປັດສະວະ 72 ຊົ່ວໂມງ ລອດຊີວິດໄດ້ດົນກວ່າແມ່ຍິງທີ່ກິນປັດສະວະສົດສັ້ນ ແລະ ຍ່ຽວອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ (p < 0.0001; p < 0.0001 ແລະ 1.0001. 2D).ເມື່ອປ້ອນ urea 135 mM, ຜູ້ຍິງທີ່ກິນເລືອດຈະຢູ່ລອດໄດ້ດົນກວ່າຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea ແລະນ້ໍາອື່ນໆທັງໝົດ (p <0.013; ຮູບ 2E).
ການຢູ່ລອດຂອງແມ່ບ້ານ ແລະ ດູດເລືອດ Anopheles arabinis ຜູ້ຍິງທີ່ກິນປັດສະວະງົວ ແລະ urea. ໃນ bioassay (A), ຍຸງເພດຍິງໄດ້ຖືກສະຫນອງອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງທາດ urea, sucrose (10%) ແລະນ້ໍາກັ່ນ (H2O). ການຢູ່ລອດຂອງ Buck-D (ເລືອດ), ສັດຕູພືດ, ເຊື້ອສາຍແລະເຊື້ອພະຍາດ. ຍຸງໄດ້ຖືກບັນທຶກທຸກໆ 12 ຊົ່ວໂມງຈົນກ່ວາແມ່ຍິງທັງຫມົດທີ່ກິນອາຫານດ້ວຍປັດສະວະ (B, D) ແລະ urea (C, E), ແລະການຄວບຄຸມ, Sucrose ແລະນ້ໍາ, ຕາຍ.
ໄລຍະທາງທັງໝົດ ແລະຈຳນວນຮອບທີ່ກຳນົດໄວ້ໃນການທົດສອບເຄື່ອງບິນໃນຮອບ 24 ຊົ່ວໂມງ ມີຄວາມແຕກຕ່າງກັນລະຫວ່າງຍຸງຊອກຫາເຈົ້າພາບ ແລະ ຍຸງດູດເລືອດ, ເຊິ່ງສະແດງໃຫ້ເຫັນເຖິງການເຄື່ອນໄຫວການບິນໜ້ອຍລົງ (ຮູບ 3). ຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບທີ່ສະໜອງນ້ຳຍ່ຽວ ຫຼື ນ້ຳຊູໂຄສ ແລະ ນ້ຳ ສະແດງໃຫ້ເຫັນຮູບແບບການບິນທີ່ແຕກຕ່າງ (ຮູບທີ່ 3, ຜູ້ຍິງກຳລັງໃຫ້ອາຫານສົດໆ, ໃນຮູບ 3). ຍຸງທີ່ໃຫ້ອາຫານ 24- ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງທີ່ກິນປັດສະວະສະແດງໃຫ້ເຫັນຮູບແບບການບິນທີ່ແຕກຕ່າງກັນ ແລະເປັນປະຈໍາທຸກວັນ. ລະດັບຂອງກິດຈະກໍາໃນຕອນກາງຄືນແລະຕອນເຊົ້າ, ໃນຂະນະທີ່ຜູ້ທີ່ກິນປັດສະວະອາຍຸ 72 ຊົ່ວໂມງມີປະສົບການຫຼຸດລົງຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງຂອງກິດຈະກໍາໃນໄລຍະ 24 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບ 3).
ການປະຕິບັດການບິນຂອງ Anopheles arabinis ຜູ້ຍິງທີ່ດູດເລືອດຜູ້ລ່າສັດທີ່ໃຫ້ອາຫານໃນປັດສະວະງົວ ແລະ urea. ໃນການທົດສອບການບິນ, ຍຸງເພດຍິງທີ່ກິນໃນປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸ, ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຕ່າງໆຂອງ urea, sucrose (10%), ແລະນ້ໍາກັ່ນ (H2O) ໄດ້ຖືກຜູກມັດໄວ້, ສໍາລັບການວາງສາຍແຂນ (horizonov) ຢ່າງເສລີ. ຜູ້ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (ຊ້າຍ) ແລະດູດເລືອດ (ຂວາ) ເພດຍິງ, ໄລຍະທາງລວມ ແລະຈໍານວນຖ້ຽວບິນຕໍ່ຊົ່ວໂມງສໍາລັບແຕ່ລະຄາບອາຫານໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງໄດ້ຖືກບັນທຶກໄວ້ (ຊ້ໍາ: ສີເທົາ; ແສງສະຫວ່າງ: ສີຂາວ).ໄລຍະທາງສະເລ່ຍ ແລະຈໍານວນການແຂ່ງຂັນໂດຍສະເລ່ຍແມ່ນສະແດງຢູ່ດ້ານຂວາຂອງກຣາຟກິດຈະກໍາ circadian. ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງການວິເຄາະຄ່າສະເລ່ຍ.
ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວ, ການເຄື່ອນໄຫວການບິນໂດຍລວມຂອງຜູ້ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບປະຕິບັດຕາມຮູບແບບທີ່ຄ້າຍຄືກັບໄລຍະທາງການບິນໃນໄລຍະເວລາ 24 ຊົ່ວໂມງ. ໄລຍະທາງການບິນໂດຍສະເລ່ຍໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກອາຫານທີ່ກິນແລ້ວ (F(5, 138) = 28.27, p < 0.0001), ແລະຜູ້ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບກິນໄດ້ < 72 ຊົ່ວໂມງຂອງຄາບອາຫານທີ່ຍາວກວ່ານີ້ (ທຽບກັບໄລຍະຫ່າງຂອງປັດສະວະທັງໝົດ) 0.0001), ແລະຍຸງທີ່ກິນ sucrose ບິນໄດ້ດົນກວ່າຂອງສົດ (p = 0.022) ແລະປັດສະວະອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ (p = 0.022)-fed mosquitoes. ກົງກັນຂ້າມກັບຮູບແບບກິດຈະກໍາການບິນທີ່ອະທິບາຍໄວ້ໂດຍອາຫານຍ່ຽວ, ກິດຈະກໍາທີ່ໃຫ້ແມ່ເຈົ້າພາບກິນ urea-fed ຫຼາຍກວ່າ 2 ປີ, p. ໃນໄລຍະເຄິ່ງທີ່ສອງຂອງໄລຍະທີ່ມືດ (ຮູບ 3).ເຖິງແມ່ນວ່າຮູບແບບກິດຈະກໍາຈະຄ້າຍຄືກັນ, ແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໃຫ້ອາຫານ urea ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ ໄລຍະການບິນສະເລ່ຍຂຶ້ນກັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ຖືກດູດຊຶມ (F(5, 138) = 1310.91, p < 0.0001).ແມ່ຍິງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບໃຫ້ອາຫານຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ urea ຫຼາຍກວ່າເພດຍິງ 0.0p (supec 3).
ການເຄື່ອນໄຫວການບິນໂດຍລວມຂອງຍຸງດູດເລືອດແມ່ນຄົງທີ່ ແລະ ຄົງຕົວໃນໄລຍະ 24 ຊົ່ວໂມງໃນທຸກຄາບອາຫານ, ໂດຍມີການເຄື່ອນໄຫວຍ່ຽວເພີ່ມຂຶ້ນໃນຊ່ວງເຄິ່ງທີ່ສອງຂອງໄລຍະທີ່ມືດສຳລັບຜູ້ຍິງທີ່ກິນນ້ຳ ແລະ ຜູ້ຍິງທີ່ກິນສົດ ແລະ ອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບ 3). ໃນຂະນະທີ່ອາຫານປັດສະວະມີຜົນກະທົບຢ່າງໃຫຍ່ຫຼວງຕໍ່ໄລຍະການບິນຂອງແມ່ຍິງທີ່ໃຫ້ເລືອດ (F = 18, 38, 5). 0.0004), ອາຫານ urea ບໍ່ໄດ້ (F(5, 138) = 1.36, p = 0.24).ກັບປັດສະວະອື່ນໆແລະອາຫານຄວບຄຸມ (ສົດ, p = 0.0091; 72 ຊົ່ວໂມງ, p = 0.0022; 168 ຊົ່ວໂມງ, p = 0.001; p = 0.001; sucrose, 20; p = 0.001; 0.036).
ຜົນກະທົບຂອງການໃຫ້ນໍ້າຍ່ຽວ ແລະ ຢູເຣຍ ຕໍ່ພາລາມິເຕີການຈະເລີນພັນ ໄດ້ຖືກປະເມີນໃນ bioassays ການວາງໄຂ່ (ຮູບ 4A) ແລະ ໄດ້ຖືກກວດສອບຕາມຈໍານວນໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້ໂດຍແມ່ຍິງແຕ່ລະຄົນ, ຂະຫນາດຂອງໄຂ່, ແລະຕົວອ່ອນຂອງ instar ທໍາອິດທີ່ເກີດໃຫມ່.ຈໍານວນໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້.Urine-fed Arab females varied by diet,2.24 (F) = 5.2,28. 0.0008; Fig. 4B).ແມ່ຍິງກິນປັດສະວະຕະຫຼອດ 24 ຊົ່ວໂມງ, ຄາບອາຫານໃນເລືອດຈະວາງໄຂ່ຫຼາຍກວ່າແມ່ຍິງທີ່ໃຫ້ອາຫານປັດສະວະອື່ນໆ ແລະ ຄ້າຍຄືກັນກັບອາຫານທີ່ກິນດ້ວຍນໍ້າຍ່ຽວ (ຮູບທີ 4B). ເຊັ່ນດຽວກັນ, ຂະໜາດຂອງໄຂ່ທີ່ຍິງໃສ່ປັດສະວະແມ່ນແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມອາຫານ (F 2. = 5,1 p. 2). 0.0001), ທີ່ມີປັດສະວະ 24 ຊົ່ວໂມງແລະແມ່ຍິງທີ່ກິນ sucrose ວາງໄຂ່ຂະຫນາດໃຫຍ່ກວ່າແມ່ຍິງທີ່ກິນນ້ໍາ, ໃນຂະນະທີ່ໄຂ່ຂອງແມ່ຍິງທີ່ກິນດ້ວຍນໍ້າປັດສະວະ 168 ຊົ່ວໂມງແມ່ນນ້ອຍລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (ຮູບ 4C). ນອກຈາກນັ້ນ, ອາຫານປັດສະວະມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ຂະຫນາດຕົວອ່ອນ (F(5, 70.18), p. ຕົວອ່ອນທີ່ໃຫຍ່ກວ່າທີ່ອອກມາຈາກໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້ໂດຍຜູ້ຍິງທີ່ກິນປັດສະວະອາຍຸ 24 ແລະ 72 ຊົ່ວໂມງກວ່າໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້ຈາກໄຂ່. ແມ່ທີ່ລ້ຽງລູກດ້ວຍນໍ້າ ແລະ 168 ຊົ່ວໂມງ (ຮູບ 4D).
ປະສິດທິພາບການຈະເລີນພັນຂອງ Anopheles arabinis ເພດຍິງທີ່ໃຫ້ອາຫານໃສ່ຍ່ຽວງົວ ແລະ urea. ຍຸງເພດຍິງທີ່ປ້ອນເລືອດແມ່ນອາຫານທີ່ປະກອບດ້ວຍນໍ້າຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ອາຍຸ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea, sucrose (10%), ແລະ ນ້ຳກັ່ນ (H2O) ເປັນເວລາ 48 ຊົ່ວໂມງກ່ອນທີ່ຈະເອົາໄຂ່ໃສ່ໃນ bioassays ຈໍານວນ 4 ຊົ່ວໂມງ. (B, E), ຂະໜາດໄຂ່ (C, F) ແລະ ຂະໜາດຕົວອ່ອນ (D, G) ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກອາຫານທີ່ສະໜອງໃຫ້ (ປັດສະວະງົວ: BD; urea: EG).ຄວາມໝາຍຂອງແຕ່ລະພາລາມິເຕີທີ່ວັດແທກດ້ວຍຊື່ຕົວອັກສອນທີ່ແຕກຕ່າງກັນແມ່ນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກແຕ່ລະຕົວ ( ANOVA ແບບວິທີດຽວທີ່ໃຊ້ການວິເຄາະຫຼັງຂອງ Tukey; p < 0.05). error ໝາຍເຖິງມາດຕະຖານມາດຕະຖານ.
ໃນຖານະທີ່ເປັນອົງປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ສໍາຄັນຂອງປັດສະວະ, urea, ໃນເວລາທີ່ສະຫນອງໃຫ້ເປັນອາຫານສໍາລັບແມ່ຍິງທີ່ກິນເລືອດ, ຜົນກະທົບຕໍ່ການຈະເລີນພັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນທຸກການສຶກສາ. ຈໍານວນຂອງໄຂ່ທີ່ວາງໄວ້ໂດຍແມ່ຍິງທີ່ປ້ອນ urea, ຫຼັງຈາກອາຫານເລືອດ, ຂຶ້ນກັບຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ urea (F(11, 360) = 4.69; p < 0.0001a 4 µMurea ເພດຍິງ) 1.34 mM ວາງໄຂ່ຫຼາຍ (ຮູບທີ 4E). ແມ່ຍິງທີ່ກິນໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ urea 134 µM ຫຼືສູງກວ່ານັ້ນວາງໄຂ່ໃຫຍ່ກວ່າແມ່ຍິງທີ່ລ້ຽງໃນນ້ໍາ (F(10, 4245) = 36.7; p < 0.0001; ຮູບ 4F), ແລະຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງຕົວອ່ອນ, ເຖິງແມ່ນວ່າຈະມີຜົນກະທົບ (1 Furea) ຂອງແມ່. 3305) = 37.9; p < 0.0001) ແມ່ນຕົວແປຫຼາຍ (ຮູບ 4G).
ຄວາມດຶ່ງດູດໂດຍລວມຕໍ່ກັບສານສະກັດຈາກທາງເດີນປັດສະວະທີ່ສະແຫວງຫາເຈົ້າພາບ.The arabiensis ທີ່ຖືກປະເມີນໃນ olfactometer ທໍ່ແກ້ວ (ຮູບ 5A) ໄດ້ຮັບຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໂດຍອາຍຸປັດສະວະ (χ2 = 15.9, df = 4, p = 0.0032; Fig. 5B ການວິເຄາະ stale24 ຊົ່ວໂມງ). ເຮັດໃຫ້ລະດັບຄວາມດຶງດູດທີ່ສູງຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອປຽບທຽບກັບການປິ່ນປົວອື່ນໆທັງຫມົດ (72 ຊົ່ວໂມງ: p = 0.0060, 168 ຊົ່ວໂມງ: p = 0.012, pentane: p = 0.00070), ຍົກເວັ້ນການມີກິ່ນຫອມຂອງປັດສະວະສົດ (p = 0.13; ຮູບ 5B). ເຖິງແມ່ນວ່າຄວາມດຶງດູດຂອງຍຸງຈະບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. 8.78, df = 4, p = 0.067; ຮູບ 5C), ເພດຍິງເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກພົບເຫັນວ່າມີຄວາມດຶງດູດຫຼາຍຕໍ່ສານສະກັດຈາກຫົວທີ່ລະຄາຍເຄືອງເມື່ອທຽບໃສ່ກັບປັດສະວະທີ່ມີອາຍຸ 72 ຊົ່ວໂມງທຽບກັບການຄວບຄຸມ (p = 0.0066; ຮູບ 5C).
ການຕອບສະໜອງພຶດຕິກຳຕໍ່ກັບກິ່ນປັດສະວະງົວຕາມທຳມະຊາດ ແລະ ສັງເຄາະໃນການຄົ້ນຫາຕົວໂຮສ ແລະ ເລືອດ Anopheles arabianus.Schematic of the glass tube olfactometer (A).ການດຶງດູດເອົາສານສະກັດຈາກນ້ຳຍ່ຽວງົວສົດ ແລະ ອາຍຸມາເປັນເຈົ້າພາບ (B) ແລະ ການດູດເລືອດ (C) ຂອງຍຸງແມ່ນປະຕິກິລິຍາຂອງສານສະກັດຈາກຮັງນົກ. ສົດ (D), 24-hour (E), 72-hour (F), ແລະ 168-hour (G) ຍ່ຽວງົວທີ່ມີອາຍຸຖືກສະແດງ. ການກວດຫາສາຍອາກາດເອເລັກໂຕຣນິກ (EAD) ສະແດງໃຫ້ເຫັນການປ່ຽນແປງແຮງດັນໃນການຕອບສະໜອງຕໍ່ສານປະກອບທາງຊີວະພາບໃນ headspace eluted ຈາກອາຍແກັສ chromatograph ແລະກວດພົບໂດຍ flame ionization scale). ທຽບກັບເວລາເກັບຮັກສາ (s).ຄຸນສົມບັດ ແລະອັດຕາການປ່ອຍ (µg h-1) ຂອງທາດປະສົມທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວທາງຊີວະພາບໄດ້ຖືກສະແດງ. ດາວດ່ຽວ (*) ສະແດງເຖິງການຕອບສະໜອງຄວາມກວ້າງຂອງກາງຕໍ່າທີ່ສອດຄ່ອງກັນ. ດາວຄູ່ (**) ຊີ້ບອກເຖິງການຕອບສະໜອງທີ່ບໍ່ສາມາດແຜ່ພັນໄດ້. ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (H) ແລະທາດດູດເລືອດ (I) ມີສ່ວນປະສົມຂອງ An.arabien ສົດ. ກິ່ນປັດສະວະ.ອັດຕາສ່ວນສະເລ່ຍຂອງຍຸງທີ່ດຶງດູດເອົາຊື່ຕົວອັກສອນແຕກຕ່າງກັນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກແຕ່ລະຕົວ (ANOVA ເສັ້ນທາງດຽວໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະຫຼັງຂອງ Tukey; p < 0.05). ແຖບຄວາມຜິດພາດສະແດງເຖິງຄວາມຜິດພາດມາດຕະຖານຂອງຂະໜາດ.
ເພດຍິງ Ann.arabiensis, 72 h ແລະ 120 h ຫຼັງຈາກອາຫານເລືອດ, ໃນລະຫວ່າງການວາງໄຂ່, ບໍ່ມີການສະແດງໃຫ້ເຫັນຄວາມມັກຂອງສານສະກັດທີ່ລະເຫີຍໃນ headspace ຈາກປັດສະວະງົວສົດແລະອາຍຸເມື່ອທຽບກັບການຄວບຄຸມ pentane (χ2 = 3.07, p > 0.05; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: Fig. S1).
ສໍາລັບແມ່ຍິງ Ann.arabiensis, ການວິເຄາະ GC-EAD ແລະ GC-MS ໄດ້ກໍານົດແປດ, ຫົກ, ສາມແລະສາມທາດປະສົມທາງຊີວະພາບ (ຮູບ 5D-G). ເຖິງແມ່ນວ່າຄວາມແຕກຕ່າງຂອງຈໍານວນທາດປະສົມທີ່ເຮັດໃຫ້ເກີດການຕອບໂຕ້ electrophysiological ໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນ, ທາດປະສົມເຫຼົ່ານີ້ສ່ວນໃຫຍ່ມີຢູ່ໃນແຕ່ລະຫົວທີ່ລະເຫີຍທີ່ສະກັດເອົາມາຈາກສານສະກັດຈາກສົດແລະອາຍຸ, ທາດປະສົມທີ່ຜະລິດຈາກສານສະກັດຈາກທາດອາລູມິນຽມສົດແລະອາຍຸເທົ່ານັ້ນ. ການຕອບສະ ໜອງ ຈາກສາຍອາກາດເພດຍິງທີ່ສູງກວ່າເກນໄດ້ຖືກລວມເຂົ້າໃນການວິເຄາະຕື່ມອີກ.
ອັດຕາການປ່ອຍຕົວລະເຫີຍທັງໝົດຂອງທາດປະສົມທາງຊີວະພາບໃນບ່ອນເກັບມ້ຽນ headspace ເພີ່ມຂຶ້ນຈາກ 29 µg h-1 ໃນປັດສະວະສົດເປັນ 242 µg h-1 ໃນປັດສະວະທີ່ມີອາຍຸ 168 ຊົ່ວໂມງ, ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຍ້ອນ p-cresol ແລະ m-formaldehyde Phenol ເພີ່ມຂຶ້ນເຊັ່ນດຽວກັນກັບ phenol. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ອັດຕາການປ່ອຍຕົວເຊັ່ນ: ທາດປະສົມ 1-2-cloneh ແລະອື່ນໆ. decanal, ຫຼຸດລົງຕາມອາຍຸຂອງປັດສະວະທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນ, ເຊິ່ງກ່ຽວຂ້ອງກັບການຫຼຸດລົງທີ່ສັງເກດເຫັນໃນຄວາມເຂັ້ມຂອງສັນຍານ (ຄວາມອຸດົມສົມບູນ) ໃນ chromatogram (ຮູບ 5D)-G ກະດານຊ້າຍ) ແລະການຕອບສະຫນອງທາງ physiological ກັບທາດປະສົມເຫຼົ່ານີ້ (ຮູບ 5D-G ກະດານຂວາ).
ໂດຍລວມແລ້ວ, ທາດປະສົມສັງເຄາະມີອັດຕາສ່ວນທໍາມະຊາດທີ່ຄ້າຍຄືກັນຂອງທາດປະສົມທາງຊີວະພາບທີ່ລະບຸໄວ້ໃນສານສະກັດຈາກລະເຫີຍຂອງຫົວຍ່ຽວສົດ ແລະອາຍຸ (ຮູບ 5D–G) ແລະບໍ່ປາກົດວ່າມີການອຸທອນທີ່ສໍາຄັນໃນການຊອກຫາໂຮດ (χ2 = 8.15, df = 4, p = χ 0.083; mosquitos) = 2.5-H. 4.91, df = 4, p = 0.30; ຮູບ 5I).ແນວໃດກໍ່ຕາມ, ການປຽບທຽບແບບ post hoc ຄູ່ລະຫວ່າງການປິ່ນປົວໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບແມ່ນມີຄວາມດຶງດູດຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ກັບການປະສົມສັງເຄາະຂອງປັດສະວະທີ່ມີອາຍຸ 24-h ທຽບກັບການຄວບຄຸມ pentane (p = 0.00586).
ເພື່ອປະເມີນບົດບາດຂອງອົງປະກອບສ່ວນບຸກຄົນໃນສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຂອງນໍ້າຍ່ຽວທີ່ມີອາຍຸ 24 ຊົ່ວໂມງ, ທາດປະສົມລົບ 6 ຊະນິດໄດ້ຖືກປະເມີນຕໍ່ກັບການປະສົມທີ່ສົມບູນໃນການກວດ Y-tube, ເຊິ່ງສານປະກອບສ່ວນບຸກຄົນໄດ້ຖືກໂຍກຍ້າຍອອກ. ສໍາລັບຍຸງທີ່ຊອກຫາເຈົ້າພາບ, ການຫັກອອກຂອງທາດປະສົມສ່ວນບຸກຄົນອອກຈາກສ່ວນປະສົມທີ່ສົມບູນມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ການຕອບສະຫນອງທາງດ້ານພຶດຕິກໍາ (χ2 = 1,9) 0.0032 ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S2A), ການປະສົມລົບທັງໝົດແມ່ນມີຄວາມດຶງດູດກວ່າຂະຫນາດນ້ອຍກວ່າການປະສົມຢ່າງສົມບູນ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການກໍາຈັດທາດປະສົມສ່ວນບຸກຄົນອອກຈາກສ່ວນປະສົມສັງເຄາະຢ່າງສົມບູນບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການຕອບສະຫນອງທາງດ້ານພຶດຕິກໍາຂອງຍຸງດູດເລືອດ (χ2 = 11.38, df = 0.6, p. ລະດັບຕ່ໍາເມື່ອທຽບກັບການປະສົມທີ່ສົມບູນ Attraction (p = 0.022; ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S2B).
ຢູ່ໃນບ້ານທີ່ເປັນພະຍາດໄຂ້ຍຸງໃນປະເທດເອທິໂອເປຍ, ປະສິດທິພາບຂອງສານປະສົມສັງເຄາະຂອງປັດສະວະງົວ 24 ຊົ່ວໂມງໃນການດຶງດູດຍຸງພາຍໃຕ້ສະພາບພາກສະຫນາມໄດ້ຖືກປະເມີນເປັນເວລາ 10 ຄືນ (ຮູບ 6A). ຈໍານວນຍຸງທັງໝົດ 4,861 ໂຕໄດ້ຖືກຈັບ ແລະ ກວດພົບ, ໃນນັ້ນມີ 45.9% ambiae, 8% ຂອງເຊື້ອພະຍາດ. Anopheles pharoensis ແລະ 35.4% ແມ່ນ Culex spp.(ເອກະສານເພີ່ມເຕີມ 1: ຕາຕະລາງ S1).Anopheles arabinis ແມ່ນສະມາຊິກພຽງຊະນິດດຽວຂອງ An.Gambian species complex ທີ່ຖືກລະບຸໂດຍ PCR analysis. ໂດຍສະເລ່ຍແລ້ວ, ຍຸງ 320 ໂຕໄດ້ຖືກຈັບຕໍ່ຄືນ, ໃນລະຫວ່າງເວລານັ້ນ ຈັບກັບດັກດ້ວຍຍຸງທີ່ຈັບໄດ້ຫຼາຍກວ່າ 2 ຄູ່ (20 ໂຕ) 3196) = 170.0, p < 0.0001) .ຈັ່ນຈັບແບບບໍ່ມີເຫຍື່ອຖືກຕັ້ງໃນແຕ່ລະຄືນການຄວບຄຸມຫ້າຕອນຕົ້ນ, ກາງ, ແລະຕອນທ້າຍຂອງການທົດລອງ. ຈຳນວນຍຸງທີ່ຄ້າຍຄືກັນໄດ້ຖືກຈັບໃນແຕ່ລະຄູ່ຂອງຈັ່ນຈັບ, ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າບໍ່ມີອະຄະຕິລະຫວ່າງເຮືອນ (χ2(0, 19061) > = 160.501). ບໍ່ມີປະຊາກອນຫຼຸດລົງໃນລະຫວ່າງໄລຍະເວລາຂອງການສຶກສາ. ເມື່ອປຽບທຽບກັບດັກຄວບຄຸມ, ຈໍານວນຍຸງທີ່ຈັບໄດ້ໃນໃສ່ກັບດັກທີ່ມີສ່ວນປະສົມສັງເຄາະແມ່ນເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ: ການຊອກຫາເຈົ້າພາບ (χ2(0, 2107) = 138.7, p < 0.0001), ການໃຫ້ເລືອດຫຼ້າສຸດ (χ2(0, 650) = < 32.0(p, 210), ການຖືພາ .
ການປະເມີນຜົນພາກສະໜາມຂອງປະສິດທິພາບຂອງສານປະສົມກິ່ນນໍ້າຍ່ຽວງົວທີ່ສັງເຄາະຕະຫຼອດ 24 ຊົ່ວໂມງ. ການທົດລອງໃນພາກສະໜາມໄດ້ດໍາເນີນຢູ່ໃນພາກກາງຂອງເອທິໂອເປຍ (ແຜນທີ່), ໃກ້ກັບເມືອງມາກີ (ໃສ່), ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງດັກຈັບແສງຂອງສູນຄວບຄຸມພະຍາດ (CDC) (ຂວາ) ຢູ່ໃນເຮືອນຄູ່, ມີການອອກແບບຮູບສີ່ຫຼ່ຽມມົນລະຕິນ (ພາບຖ່າຍທາງອາກາດ) ແລະຮູບຖ່າຍຈາກອາກາດ (Aerial photo) . Anopheles arabesques ເພດຍິງ (B), ແຕ່ບໍ່ແມ່ນ Anopheles farroes (C), ໃນລັກສະນະທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ຜົນກະທົບທາງ physiological state-dependent. ນອກຈາກນັ້ນ, ດັກເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຈັບຈໍານວນທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຂອງ host Culex mosquitoes.(D) ເມື່ອປຽບທຽບກັບ control.The bars ທາງດ້ານຊ້າຍເປັນຕົວແທນຂອງດັດຊະນີການຄັດເລືອກສະເລ່ຍຂອງ mosquitos ຈັບໄດ້ເປັນຄູ່ (greopen) ແລະການຄວບຄຸມ (Nodoren). 10), ໃນຂະນະທີ່ແຖບດ້ານຂວາເປັນຕົວແທນຂອງດັດຊະນີການຄັດເລືອກສະເລ່ຍໃນຄູ່ຂອງດັກຄວບຄຸມ (ເປີດ; N = 5). ) .ເຄື່ອງໝາຍດາວສະແດງເຖິງລະດັບຄວາມສຳຄັນທາງສະຖິຕິ (*p = 0.01 ແລະ ***p < 0.0001).
3 ຊະນິດໄດ້ຖືກຈັບແຕກຕ່າງກັນໃນດັກທີ່ມີສານປະສົມສັງເຄາະ. ຊອກຫາເຈົ້າພາບ (χ2(1, 1345) = 71.7, p < 0.0001), ການໃຫ້ເລືອດ (χ2(1, 517) = 16.7, p < 0.0001) ແລະການຖືພາ (χ2(1, 6401) = 16.7, p < 0.0001) ແລະການຖືພາ (χ2(1, 6401) = 180. .arabiensis ຖືກຕິດຢູ່ໃນຈັ່ນຈັບທີ່ປ່ອຍທາດປະສົມສັງເຄາະ (ຮູບ 6B), ໃນຂະນະທີ່ປະລິມານຂອງ An ບໍ່ແຕກຕ່າງກັນ. Pharoensis ຢູ່ໃນສະພາບທາງກາຍະພາບທີ່ແຕກຕ່າງກັນໄດ້ຖືກພົບເຫັນ (ຮູບ 6C).ສຳລັບ Culex, ມີພຽງແຕ່ການເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຂອງຍຸງທີ່ຊອກຫາ hosts ໃນໃສ່ກັບດັກ baited ກັບທາດປະສົມ = ​​12.19, ສັງເຄາະ (12.19), p. 0.0004; ຮູບ 6D), ປຽບທຽບກັບດັກຄວບຄຸມ.
ເຄື່ອງມືຈັ່ນຈັບເຫຍື່ອທີ່ຕັ້ງຢູ່ນອກສະຖານທີ່ມີທ່າແຮງລະຫວ່າງສະຖານທີ່ລ້ຽງສັດ ແລະຊຸມຊົນຊົນນະບົດໃນປະເທດເອທິໂອເປຍ ເພື່ອປະເມີນວ່າຍຸງເປັນໄຂ້ມາເລເຣຍໃຊ້ກິ່ນນໍ້າຍ່ຽວງົວເປັນບ່ອນຢູ່ອາໄສຂອງເຈົ້າພາບຫຼືບໍ່.ໃນກໍລະນີທີ່ບໍ່ມີຕົວຊ່ວຍ, ຄວາມຮ້ອນ, ແລະບໍ່ມີ ຫຼືບໍ່ມີນໍ້າຍ່ຽວງົວ, ບໍ່ມີຍຸງຖືກຈັບໄດ້). ກິ່ນນໍ້າຍ່ຽວງົວ, ຍຸງໄຂ້ຍຸງເພດຍິງຖືກດຶງດູດ ແລະ ຈັບໄດ້, ແມ້ວ່າມີຈໍານວນໜ້ອຍ, ບໍ່ຂຶ້ນກັບອາຍຸຂອງນໍ້າຍ່ຽວ (χ2(5, 25) = 2.29, p = 0.13; ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ 1: ຮູບ S3 ).ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ການຄວບຄຸມນໍ້າບໍ່ໄດ້ຈັບຕົວຍຸງໄຂ້ມາເລເລຍ (ຮູບພາບເພີ່ມເຕີມ 3 ໄຟລ໌ເພີ່ມເຕີມ: ຮູບທີ່ 3).
ຍຸງໄຂ້ມາເລເລຍໄດ້ຮັບ ແລະແຈກຢາຍທາດປະສົມທີ່ມີໄນໂຕຣເຈນຜ່ານການໃຫ້ອາຫານທົດແທນນໍ້າຍ່ຽວງົວ (ເຊັ່ນ: ໜອງ) ເພື່ອເພີ່ມລັກສະນະປະຫວັດຊີວິດ, ຄ້າຍຄືກັບແມງໄມ້ອື່ນໆ [2, 4, 24, 25, 26]. ນໍ້າຍ່ຽວງົວເປັນຊັບພະຍາກອນທີ່ສາມາດທົດແທນຄືນໄດ້ສໍາລັບພະຍາດໄຂ້ຍຸງທີ່ສູງ, ສັດລ້ຽງລູກດ້ວຍນໍ້ານົມ. ພືດພັນຢູ່ໃກ້ກັບບ້ານຊົນນະບົດ ແລະສະຖານທີ່ວາງໄຂ່. ຍຸງເພດຍິງຊອກຫາແຫຼ່ງນີ້ໂດຍການມີກິ່ນຫອມ ແລະສາມາດຄວບຄຸມການດູດຊຶມຂອງທາດໄນໂຕຣເຈນໃນປັດສະວະ, ລວມທັງ urea, ອົງປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ສໍາຄັນໃນປັດສະວະ [15, 16]. ແມ່ນຂຶ້ນກັບສະພາບທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງຍຸງເພດຍິງ, ທາດອາຫານທັງໝົດໃນໂຕແມ່ຂອງໂຕແມ່ຈະເພີ່ມການດູດຊືມອາຫານ. ຍຸງ, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບລັກສະນະການຢູ່ລອດແລະການຈະເລີນພັນຂອງບຸກຄົນທີ່ກິນເລືອດໃນລະຫວ່າງຮອບວຽນ gonadotropic ທໍາອິດ. ດັ່ງນັ້ນ, ການປະສົມນໍ້າປັດສະວະຈຶ່ງມີບົດບາດສໍາຄັນທາງໂພຊະນາການສໍາລັບພະຍາດໄຂ້ຍຸງທີ່ຖືກປິດຄືກັບຜູ້ໃຫຍ່ທີ່ຂາດສານອາຫານ [8], ຍ້ອນວ່າມັນໃຫ້ຍຸງເພດຍິງມີຄວາມສາມາດທີ່ຈະໄດ້ຮັບສານປະກອບໄນໂຕຣເຈນທີ່ມີຄວາມສໍາຄັນຫນ້ອຍໂດຍການໃຫ້ອາຫານທີ່ມີສ່ວນພົວພັນຫນ້ອຍ. ຜົນສະທ້ອນ, ຍ້ອນວ່າແມ່ຍິງເພີ່ມອາຍຸຍືນ, ກິດຈະກໍາແລະຜົນຜະລິດການຈະເລີນພັນ, ທັງຫມົດທີ່ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມສາມາດຂອງ vector. ນອກຈາກນັ້ນ, ພຶດຕິກໍານີ້ອາດຈະເປັນເປົ້າຫມາຍຂອງໂຄງການຄຸ້ມຄອງ vector ໃນອະນາຄົດ.