Paldies, ka apmeklējāt vietni Nature.com.Jūsu izmantotajai pārlūkprogrammas versijai ir ierobežots CSS atbalsts.Lai nodrošinātu vislabāko pieredzi, ieteicams izmantot atjauninātu pārlūkprogrammu (vai atspējot saderības režīmu pārlūkprogrammā Internet Explorer).Tikmēr, lai nodrošinātu nepārtrauktu atbalstu, mēs atveidosim vietni bez stiliem un JavaScript.
Nekontrolēta asiņošana ir viens no galvenajiem nāves cēloņiem.Ātras hemostāzes sasniegšana nodrošina subjekta izdzīvošanu kā pirmo palīdzību kaujas, ceļu satiksmes negadījumu un mirstības samazināšanas operāciju laikā.Ar nanoporu šķiedru pastiprinātas kompozīta sastatnes (NFRCS), kas iegūtas no vienkāršas hemostatiskas plēvi veidojošas kompozīcijas (HFFC), kā nepārtraukta fāze var izraisīt un uzlabot hemostāzi.NFRCS izstrādes pamatā ir spāres spārna dizains.Spāres spārnu konstrukcija sastāv no šķērsvirziena un garenvirziena spārniem, un spārnu membrānas ir savienotas viena ar otru, lai saglabātu mikrostruktūras integritāti.HFFC vienmērīgi pārklāj šķiedras virsmu ar nanometru biezuma plēvi un savieno nejauši sadalīto kokvilnas biezumu (Ct) (izkliedētā fāze), veidojot nanoporainu struktūru.Nepārtraukto un izkliedēto fāžu kombinācija samazina produkta izmaksas desmit reizes, salīdzinot ar komerciāli pieejamiem produktiem.Modificētos NFRCS (tamponus vai aproces) var izmantot dažādos biomedicīnas lietojumos.In vivo pētījumos ir secināts, ka izstrādātais Cp NFRCS izraisa un uzlabo koagulācijas procesu lietošanas vietā.NFRCS var modulēt mikrovidi un darboties šūnu līmenī, pateicoties tās nanoporainajai struktūrai, kas nodrošina labāku brūču dzīšanu izgriešanas brūces modelī.
Nekontrolēta asiņošana kaujas, operācijas laikā un ārkārtas situācijās var nopietni apdraudēt ievainotā dzīvību1.Šie apstākļi vēl vairāk izraisa vispārēju perifēro asinsvadu pretestības palielināšanos, izraisot hemorāģisko šoku.Atbilstoši pasākumi asiņošanas kontrolei operācijas laikā un pēc tās tiek uzskatīti par potenciāli dzīvībai bīstamiem2,3.Lielu asinsvadu bojājumi izraisa milzīgu asins zudumu, kā rezultātā mirstība ir ≤ 50% kaujas laikā un 31% operācijas laikā1.Liels asins zudums izraisa ķermeņa tilpuma samazināšanos, kas samazina sirds izsviedi.Kopējās perifēro asinsvadu pretestības palielināšanās un progresējoši mikrocirkulācijas traucējumi izraisa dzīvības uzturēšanas orgānu hipoksiju.Hemorāģiskais šoks var rasties, ja stāvoklis turpinās bez efektīvas iejaukšanās1,4,5.Citas komplikācijas ir hipotermijas un metaboliskās acidozes progresēšana, kā arī koagulācijas traucējumi, kas kavē koagulācijas procesu.Smags hemorāģisks šoks ir saistīts ar lielāku nāves risku6,7,8.III pakāpes (progresējošā) šoka gadījumā asins pārliešana ir būtiska pacienta izdzīvošanai intraoperatīvās un pēcoperācijas saslimstības un mirstības laikā.Lai pārvarētu visas iepriekš minētās dzīvībai bīstamās situācijas, mēs esam izstrādājuši ar nanoporu šķiedru pastiprinātu kompozītmateriālu sastatnes (NFRCS), kas izmanto minimālu polimēra koncentrāciju (0, 5%), izmantojot ūdenī šķīstošu hemostatisko polimēru kombināciju.
Izmantojot šķiedru stiegrojumu, var izstrādāt rentablus produktus.Nejauši izkārtotās šķiedras atgādina spāres spārna struktūru, ko līdzsvaro horizontālās un vertikālās svītras uz spārniem.Spārna šķērseniskās un gareniskās vēnas sazinās ar spārna membrānu (1. att.).NFRCS sastāv no pastiprinātas Ct kā sastatņu sistēmas ar labāku fizisko un mehānisko izturību (1. attēls).Pieejamības un meistarības dēļ ķirurgi operāciju un pārsiešanas laikā labprātāk izmanto kokvilnas diegu mērierīces (Ct). Tādējādi, ņemot vērā tā daudzos ieguvumus, tostarp> 90% kristāliskās celulozes (nodrošina hemostatiskās aktivitātes uzlabošanos), Ct tika izmantots kā NFRCS9,10 skeleta sistēma. Tādējādi, ņemot vērā tā daudzos ieguvumus, tostarp> 90% kristāliskās celulozes (nodrošina hemostatiskās aktivitātes uzlabošanos), Ct tika izmantots kā NFRCS9,10 skeleta sistēma. Следовательно, учитывая его многочисленные преимущества, в том числе > 90% кристаллической целлютеской целлютеской целлютеспуочислозы статической активности), Ct использовали в качестве скелетной системы NFRCS9,10. Tāpēc, ņemot vērā tās daudzās priekšrocības, tostarp> 90% kristāliskās celulozes (saistīta ar paaugstinātu hemostatisko aktivitāti), Ct tika izmantots kā NFRCS skeleta sistēma9, 10.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90% 的结晶纤维素（有助于增强止伔,10 的骨架系统.因此，考虑到它的多重益处，包括> 90%Tāpēc, ņemot vērā tā daudzās priekšrocības, tostarp vairāk nekā 90% kristāliskās celulozes (palīdz uzlabot hemostatisko aktivitāti), Ct tika izmantots kā NFRCS sastatnes9,10.Ct tika virspusēji pārklāts (tika novērota nanobiezas plēves veidošanās) un savienota ar hemostatisko plēvi veidojošo sastāvu (HFFC).HFFC darbojas kā matrigelis, turot kopā nejauši novietotu Ct.Izstrādātā konstrukcija pārraida spriegumu izkliedētā fāzē (pastiprinošās šķiedras).Ir grūti iegūt nanoporainas struktūras ar labu mehānisko izturību, izmantojot minimālu polimēru koncentrāciju.Turklāt nav viegli pielāgot dažādas veidnes dažādiem biomedicīnas lietojumiem.
Attēlā parādīta NFRCS dizaina diagramma, kuras pamatā ir spāres spārna struktūra (A).Šis attēls parāda spāres spārnu struktūras salīdzinošu analoģiju (spārna krustojošās un gareniskās vēnas ir savstarpēji saistītas) un Cp NFRCS (B) šķērsgriezuma mikrofotogrāfiju.NFRCS shematisks attēlojums.
NFRC tika izstrādāti, izmantojot HFFC kā nepārtrauktu fāzi, lai novērstu iepriekš minētos ierobežojumus.HFFC sastāv no dažādiem plēvi veidojošiem hemostatiskiem polimēriem, tostarp hitozāna (kā galvenā hemostatiskā polimēra) ar metilcelulozi (MC), hidroksipropilmetilcelulozi (HPMC 50 cp) un polivinilspirtu (PVA)) (125 kDa) kā atbalsta polimēru, kas veicina trombu veidošanos.veidošanās.Polivinilpirolidīna K30 (PVP K30) pievienošana uzlaboja NFRCS mitruma absorbcijas spēju.Polietilēnglikols 400 (PEG 400) tika pievienots, lai uzlabotu polimēru šķērssavienojumu savienotajos polimēru maisījumos.Ct tika uzklātas trīs dažādas HFFC hemostatiskās kompozīcijas (Cm HFFC, Ch HFFC un Cp HFFC), proti, hitozāns ar MC (Cm), hitozāns ar HPMC (Ch) un hitozāns ar PVA (Cp).Dažādi in vitro un in vivo raksturojuma pētījumi ir apstiprinājuši NFRCS hemostatisko un brūču dzīšanas aktivitāti.NFRCS piedāvātos kompozītmateriālus var izmantot, lai pielāgotu dažādas sastatņu formas atbilstoši īpašām vajadzībām.
Turklāt NFRCS var pārveidot kā pārsēju vai rullīti, lai aptvertu visu apakšējo ekstremitāšu un citu ķermeņa daļu traumu zonu.Īpaši ekstremitāšu traumu apkarošanai paredzēto NFRCS dizainu var mainīt uz pusroku vai pilnu kāju (papildu attēls S11).No NFRCS var izgatavot aproci ar audu līmi, ko var izmantot, lai apturētu asiņošanu pēc smagiem pašnāvnieciskiem plaukstas locītavas ievainojumiem.Mūsu galvenais mērķis ir izstrādāt NFRCS ar pēc iespējas mazāku polimēru daudzumu, ko varētu nogādāt lielam iedzīvotāju skaitam (zem nabadzības sliekšņa) un ko varētu ievietot pirmās palīdzības aptieciņā.Vienkāršs, efektīvs un ekonomisks dizains NFRCS sniedz labumu vietējām kopienām, un tam var būt globāla ietekme.
Hitozāns (molekulmasa 80 kDa) un amarants tika iegādāti no Merck, Indijas.Hidroksipropilmetilceluloze 50 Cp, polietilēnglikols 400 un metilceluloze tika iegādāta no Loba Chemie Pvt.LLC, Mumbaja.Polivinilspirts (molekulmasa 125 kDa) (87-90% hidrolizēts) tika iegādāts no National Chemicals, Gujarat.Polivinilpirolidīns K30 tika iegādāts no Molychem, Mumbajā, sterili tamponi tika iegādāti no Ramaraju Surgery Cotton Mills Ltd., Tamil Nadu, ar Milli Q ūdeni (Direct-Q3 ūdens attīrīšanas sistēma, Merck, Indija) kā nesēju.
NFRCS tika izstrādāts, izmantojot liofilizācijas metodi11,12.Visas HFFC kompozīcijas (1. tabula) sagatavoja, izmantojot mehānisko maisītāju.Sagatavojiet 0,5% hitozāna šķīdumu, izmantojot 1% etiķskābi ūdenī, nepārtraukti maisot ar 800 apgr./min ar mehānisko maisītāju.Hitozāna šķīdumam pievienoja precīzu 1. tabulā norādīto iekrautā polimēra svaru un maisīja, līdz tika iegūts dzidrs polimēra šķīdums.Iegūtajam maisījumam pievienoja PVP K30 un PEG 400 1. tabulā norādītajos daudzumos un maisīšanu turpināja, līdz tika iegūts dzidrs viskozs polimēra šķīdums.Iegūtā polimēra šķīduma vanna tika apstrādāta ar ultraskaņu 60 minūtes, lai no polimēru maisījuma noņemtu iesprostotos gaisa burbuļus.Kā parādīts S1 (b) papildu attēlā, Ct tika vienmērīgi sadalīts katrā 6 bedrīšu plāksnes (veidnes) iedobē, kas papildināta ar 5 ml HFFC.
Sešu iedobju plāksne tika apstrādāta ar ultraskaņu 60 minūtes, lai panāktu vienmērīgu HFFC mitrināšanu un sadalījumu Ct tīklā.Pēc tam sešu iedobju plāksni sasaldē -20°C 8-12 stundas.Saldēšanas plāksnes tika liofilizētas 48 stundas, lai iegūtu dažādus NFRCS preparātus.To pašu procedūru izmanto, lai ražotu dažādas formas un struktūras, piemēram, tamponus vai cilindriskus tamponus, vai jebkuru citu formu dažādiem lietojumiem.
Precīzi nosvērtu hitozānu (80 kDa) (3%) izšķīdina 1% etiķskābē, izmantojot magnētisko maisītāju.Iegūtajam hitozāna šķīdumam pievienoja 1% PEG 400 un maisīja 30 minūtes.Iegūto šķīdumu ielej kvadrātveida vai taisnstūrveida traukā un 12 stundas sasaldē -80°C.Saldēti paraugi tika liofilizēti 48 stundas, lai iegūtu porainu Cs13.
Izstrādātais NFRCS tika pakļauts eksperimentiem, izmantojot Furjē transformācijas infrasarkano spektroskopiju (FTIR) (Shimadzu 8400 s FTIR, Tokija, Japāna), lai apstiprinātu hitozāna ķīmisko saderību ar citiem polimēriem14, 15.Visu pārbaudīto paraugu FTIR spektri (spektra diapazona platums no 400 līdz 4000 cm-1) iegūti, veicot 32 skenēšanas reizes.
Asins absorbcijas ātrums (BAR) visiem preparātiem tika novērtēts, izmantojot metodi, ko aprakstīja Chen et al.16 ar nelielām izmaiņām.Visu kompozīciju izstrādātie NFRK tika žāvēti vakuuma krāsnī 105 ° C temperatūrā nakti, lai noņemtu atlikušo šķīdinātāju.30 mg NFRCS (sākotnējais parauga svars – W0) un 30 mg Ct (pozitīvā kontrole) tika ievietoti atsevišķos trauciņos, kas saturēja 3,8% nātrija citrāta premiksu.Iepriekš noteiktos laika intervālos, ti, 5, 10, 20, 30, 40 un 60 sekundēs, NFRCS tika noņemti un to virsmas notīrītas no neuzsūktām asinīm, novietojot paraugus uz Ct uz 30 sekundēm.Katrā laika punktā tika ņemts vērā NFRCS 16 absorbēto asiņu galīgais svars (W1).Aprēķiniet BAR procentus, izmantojot šādu formulu:
Asins recēšanas laiks (BCT) tika noteikts, kā ziņoja Wang et al.17 .Laiks, kas nepieciešams, lai pilnas asinis (žurkas asinis, kas iepriekš sajauktas ar 3, 8% nātrija citrātu), sarecētos NFRCS klātbūtnē, tika aprēķināts kā testa parauga BCT.Dažādi NFRCS komponenti (30 mg) tika ievietoti 10 ml skrūvējamos flakonos un inkubēti 37 ° C temperatūrā.Flakonam tika pievienotas asinis (0, 5 ml) un 0, 3 ml 0, 2 M CaCl2, lai aktivizētu asins koagulāciju.Visbeidzot apgrieziet flakonu ik pēc 15 sekundēm (līdz 180°), līdz veidojas stingrs receklis.Izlases BCT tiek aprēķināts pēc apvērsumu skaita17,18.Pamatojoties uz BCT, turpmākiem raksturošanas pētījumiem tika atlasītas divas optimālas kompozīcijas no NFRCS Cm, Ch un Cp.
Ch NFRCS un Cp NFRCS kompozīciju BCT tika noteikts, ieviešot metodi, ko aprakstīja Li et al.19 .Ievietojiet 15 x 15 mm2 Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs (pozitīvā kontrole) atsevišķos Petri trauciņos (37 °C).Asinis, kas satur 3,8% nātrija citrāta, tika sajauktas ar 0,2 M CaCl2 tilpuma attiecībā 10:1, lai sāktu asins recēšanas procesu.Uz parauga virsmas uzklāja 20 µl 0,2 M CaCl2 žurku asiņu maisījuma un ievietoja tukšā Petri trauciņā.Kontrole bija asinis, kas ielietas tukšos Petri trauciņos bez Ct.Ar fiksētiem 0, 3 un 5 minūšu intervāliem pārtrauciet recēšanu, pievienojot 10 ml dejonizēta (DI) ūdens paraugam, kas satur trauku, neizjaucot trombu.Nekoagulēti eritrocīti (eritrocīti) tiek pakļauti hemolīzei dejonizēta ūdens klātbūtnē un atbrīvo hemoglobīnu.Hemoglobīns dažādos laika punktos (HA(t)) tika mērīts pie 540 nm (λmax hemoglobīns), izmantojot UV-Vis spektrofotometru.Par atsauces standartu tika ņemta hemoglobīna absolūtā absorbcija (AH(0)) 0 minūtēs 20 µl asiņu 10 ml dejonizēta ūdens.Sarecējušo asiņu relatīvais hemoglobīna uzņemšana (RHA) tika aprēķināta no attiecības HA(t)/HA(0), izmantojot to pašu asiņu partiju.
Izmantojot tekstūras analizatoru (Texture Pro CT V1.3 Build 15, Brookfield, ASV), tika noteiktas NFRK saķeres īpašības ar bojātiem audiem.Cūkgaļas ādas iekšpusei (bez tauku slāņa) piespiediet cilindrisku trauku ar atvērtu dibenu.Paraugi (Ch NFRCS un Cp NFRCS) ar kanulu tika ievietoti cilindriskās veidnēs, lai izveidotu saķeri ar cūkas ādu.Pēc 3 minūšu inkubācijas istabas temperatūrā (RT) (25°C) NFRCS adhēzijas stiprums tika reģistrēts ar nemainīgu ātrumu 0,5 mm/s.
Ķirurģisko hermētiķu galvenā iezīme ir palielināt asins recēšanu, vienlaikus samazinot asins zudumu.Bezzudumu koagulācija NFRCS tika novērtēta, izmantojot iepriekš publicētu metodi ar nelielām modifikācijām19.Izveidojiet mikrocentrifūgas mēģeni (2 ml) (iekšējais diametrs 10 mm) ar 8 × 5 mm2 caurumu vienā centrifūgas mēģenes pusē (attēlo atvērtu brūci).NFRCS tiek izmantots, lai aizvērtu atveri, un lente tiek izmantota ārējo malu blīvēšanai.Pievienojiet 20 µl 0,2 M CaCl2 mikrocentrifūgas mēģenē, kas satur 3,8% nātrija citrāta premiksu.Pēc 10 minūtēm mikrocentrifūgas mēģenes tika izņemtas no traukiem un tika noteikts trauku masas pieaugums sakarā ar asiņu aizplūšanu no NFRK (n = 3).Asins zudums Ch NFRCS un Cp NFRCS tika salīdzināti ar Cs.
NFRCS mitrā integritāte tika noteikta, pamatojoties uz Mishra un Chaudhary21 aprakstīto metodi ar nelielām izmaiņām.Ievietojiet NFRCS 100 ml Erlenmeijera kolbā ar 50 ml ūdens un virpiniet 60 sekundes, neveidojot augšdaļu.Paraugu vizuāla pārbaude un prioritāšu noteikšana, lai nodrošinātu fizisko integritāti, pamatojoties uz savākšanu.
HFFC saistīšanās stiprums ar Ct tika pētīts, izmantojot iepriekš publicētas metodes ar nelielām izmaiņām.Virsmas pārklājuma integritāte tika novērtēta, pakļaujot NFRK akustiskajiem viļņiem (ārējais stimuls) miliQ ūdens (Ct) klātbūtnē.Izstrādātie NFRCS Ch NFRCS un Cp NFRCS tika ievietoti vārglāzē, kas piepildīta ar ūdeni, un apstrādāta ar ultraskaņu attiecīgi 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 un 30 minūtes.Pēc žāvēšanas procentuālā starpība starp NFRCS sākotnējo un galīgo svaru tika izmantota, lai aprēķinātu materiāla zudumu (HFFC).In vitro BCT vēl vairāk atbalstīja saistīšanās spēku vai virsmas materiālu zudumu.HFFC saistīšanās ar Ct efektivitāte nodrošina asins koagulāciju un elastīgu pārklājumu uz Ct22 virsmas.
Izstrādātā NFRCS viendabīgums tika noteikts ar BCT paraugiem (30 mg), kas ņemti no nejauši izvēlētām vispārējām NFRCS vietām.Izpildiet iepriekš minēto BCT procedūru, lai noteiktu NFRCS atbilstību.Tuvums starp visiem pieciem paraugiem nodrošina vienmērīgu virsmas pārklājumu un HFFC nogulsnēšanos Ct tīklā.
Nominālais asins kontakta laukums (NBCA) tika noteikts, kā iepriekš ziņots ar dažām izmaiņām.Sarecēt asinis, saspiežot 20 µl asiņu starp divām Ct, Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs virsmām.Pēc 1 stundas abas stenta daļas tika atdalītas un manuāli izmērīja tromba laukumu.Trīs atkārtojumu vidējā vērtība tika uzskatīta par NBCA NFRCS19.
Dinamiskās tvaika sorbcijas (DVS) analīze tika izmantota, lai novērtētu NFRCS efektivitāti, lai absorbētu ūdeni no ārējās vides vai no traumas vietas, kas ir atbildīga par koagulācijas sākšanu.DVS novērtē vai reģistrē tvaiku uzņemšanu un zudumus paraugā gravimetriski, izmantojot īpaši jutīgu svaru ar masas izšķirtspēju ±0,1 µg.Daļēju tvaika spiedienu (relatīvais mitrums) ģenerē elektronisks masas plūsmas regulators ap paraugu, sajaucot piesātinātas un sausas nesējgāzes. Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas vadlīnijām, pamatojoties uz mitruma uzņemšanas procentuālo daudzumu paraugos, paraugi tika iedalīti 4 kategorijās (0–0,012% w/w– nehigroskopiski, 0,2–2% w/w nedaudz higroskopiski, 2–15% vidēji higroskopiski un > 15%) ļoti higroskopiski. Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas vadlīnijām, pamatojoties uz mitruma uzņemšanas procentuālo daudzumu paraugos, paraugi tika iedalīti 4 kategorijās (0–0,012% w/w– nehigroskopiski, 0,2–2% w/w viegli higroskopiski, 2–15% vidēji higroskopiski un > 15%)2.3.Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas rekomendācijām, atkarībā no mitruma absorbcijas procentiem paraugiem, paraugi tika sadalīti 4 kategorijās (0–0,012 % w/w – nehigroskopiski, 0,2–2 % w/w viegli higroskopiski, 2– piecpadsmit %).% умеренно гигроскопичен и > 15% очень гигроскопичен)23. % vidēji higroskopiski un > 15 % ļoti higroskopiski)23.根据欧洲药典指南，根据样品吸收水分的百分比，样品分为4 类（（0-0,012% w/0. /w 轻微吸湿性、2-15% 适度吸湿，> 15% 非常吸湿）23.根据 欧洲 药典 指南 ， 根据 吸收 水分 的 百分比 样品 分伺 分为 分为 分为 分为 分为 分为 分为 分为 .为 分为 .湿 性 、 、 、 、 0,2-2% W/w 轻微 、 2-15% 适度 吸湿 ，> 15 %非常吸湿）23.Saskaņā ar Eiropas Farmakopejas ieteikumiem paraugi tiek iedalīti 4 klasēs atkarībā no parauga absorbētā mitruma procentuālā daudzuma (0-0,012% no svara – nehigroskopisks, 0,2-2% no svara nedaudz higroskopisks, 2-15% no svara).% умеренно гигроскопичен, > 15 % очень гигроскопичен) 23. % vidēji higroskopiski, > 15 % ļoti higroskopiski) 23.NFCS X NFCS un TsN NFCS higroskopiskā efektivitāte tika noteikta ar analizatoru DVS TA TGA Q5000 SA.Šī procesa laikā tika iegūts darbības laiks, relatīvais mitrums (RH) un reāllaika parauga svars 25°C24 temperatūrā.Mitruma saturu aprēķina, izmantojot precīzu NFRCS masas analīzi, izmantojot šādu vienādojumu:
MC ir NFRCS mitrums.m1 – NPL sausā masa.m2 ir reāllaika NFRCS masa noteiktā RH.
Kopējais virsmas laukums tika novērtēts, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidro slāpekli pēc paraugu iztukšošanas 25 ° C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr). Kopējais virsmas laukums tika novērtēts, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidro slāpekli pēc paraugu iztukšošanas 25 ° C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr). Общая площадь поверхности оценивалась с помощью эксперимента по адсорбции азота жидким азопослом в при 25 °С в течение 10 ч (< 7 × 10–3 Торр). Kopējais virsmas laukums tika novērtēts, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentu ar šķidru slāpekli pēc tam, kad paraugi tika iztukšoti 25 ° C temperatūrā 10 stundas (< 7 × 10–3 Torr).在25°C 清空样品10 小时（< 7 × 10-3 Torr）后，使用液氮的氮吸附实验估计总表验估计总表在 25°C Общая площадь поверхности оценивалась с использованием экспериментов по адсорбции азота жидкиен пополомтов цов в течение 10 часов при 25°C (< 7 × 10-3 торр). Kopējais virsmas laukums tika novērtēts, izmantojot slāpekļa adsorbcijas eksperimentus ar šķidru slāpekli pēc tam, kad paraugi tika iztukšoti 10 stundas 25 °C temperatūrā (< 7 x 10-3 torr).Kopējais virsmas laukums, poru tilpums un NFRCS poru izmērs tika noteikts ar Quantachrome no NOVA 1000e, Austrija, izmantojot RS 232 programmatūru.
Sagatavojiet 5% sarkano asins šūnu (fizioloģisko šķīdumu kā šķīdinātāju) no pilnām asinīm.Pēc tam pārnes HFFC alikvotu daļu (0,25 ml) uz 96 iedobju plāksni un 5% RBC masu (0,1 ml).Inkubējiet maisījumu 37°C 40 minūtes.Sarkano asins šūnu un seruma maisījums tika uzskatīts par pozitīvu kontroli, bet fizioloģiskā šķīduma un sarkano asins šūnu maisījums par negatīvu kontroli.Hemaglutinācija tika noteikta pēc Stajitzky skalas.Piedāvātie mērogi ir šādi: + + + + blīvi granulēti pildvielas;+ + + gludi apakšējie spilventiņi ar izliektām malām;+ + gludi apakšas spilventiņi ar saplēstām malām;+ šauri sarkani gredzeni ap gludo paliktņu malām;– (negatīva) diskrēta sarkanā poga 12 apakšējās iedobes centrā.
NFRCS hemosaderība tika pētīta pēc Starptautiskās standartizācijas organizācijas (ISO) metodes (ISO10993-4, 1999)26,27.Singh et al. aprakstītā gravimetriskā metode.Tika veiktas nelielas izmaiņas, lai novērtētu trombu veidošanos NFRCS klātbūtnē vai uz tās virsmas.500 mg Cs, Ch NFRCS un Cp NFRCS tika inkubēti fosfātu buferšķīdumā (PBS) 24 stundas 37 ° C temperatūrā.Pēc 24 stundām PBS tika noņemts un NFRCS tika apstrādāts ar 2 ml asiņu, kas satur 3, 8% nātrija citrāta.Uz NFRCS virsmas pievieno 0,04 ml 0,1 M CaCl2 inkubētajiem paraugiem.Pēc 45 minūtēm pievienoja 5 ml destilēta ūdens, lai apturētu koagulāciju.Sarecējušās asinis uz NFRK virsmas tika apstrādātas ar 36-38% formaldehīda šķīdumu.Ar formaldehīdu fiksētos recekļus žāvēja un nosvēra.Trombozes procentuālais daudzums tika noteikts, aprēķinot stikla svaru bez asinīm un parauga (negatīvā kontrole) un stikla ar asinīm (pozitīvā kontrole).
Kā sākotnējais apstiprinājums, paraugi tika vizualizēti optiskā mikroskopā, lai saprastu HFFC virsmas pārklājuma, savstarpēji savienotā Ct un Ct tīkla spēju veidot poras.Plānās Ch un Cp daļas no NFRCS tika apgrieztas ar skalpeļa asmeni.Iegūtā sekcija tika novietota uz stikla priekšmetstikliņa, pārklāta ar segstikliņu, un malas tika nostiprinātas ar līmi.Sagatavotos priekšmetstikliņus aplūkoja optiskā mikroskopā un tika uzņemtas fotogrāfijas dažādos palielinājumos.
Polimēru nogulsnēšanās Ct tīklos tika vizualizēta, izmantojot fluorescences mikroskopiju, pamatojoties uz Rice et al.29 aprakstīto metodi. Formulēšanai izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarantu), un NFRCS (Ch & Cp) tika sagatavots saskaņā ar iepriekš minēto metodi. Formulēšanai izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (amarantu), un NFRCS (Ch & Cp) tika sagatavots saskaņā ar iepriekš minēto metodi.Formulēšanai izmantotā HFFC kompozīcija tika sajaukta ar fluorescējošu krāsvielu (amarants) un iegūta NFRCS (Ch un Cp) saskaņā ar iepriekš minēto metodi.将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR斤懢提到的FR涹将用于配方的HFFC 组合物与荧光染料（苋菜）混合，并按照前面提到的FR斤懢提到的FR涹Sastāvā izmantotais HFFC sastāvs tika sajaukts ar fluorescējošu krāsvielu (Amarants) un saņēma NFRCS (Ch un Cp), kā minēts iepriekš.No iegūtajiem paraugiem tika izgrieztas plānas NFRK sekcijas, novietotas uz stikla priekšmetstikliņiem un pārklātas ar segstikliņām.Novērojiet sagatavotos priekšmetstikliņus fluorescējošā mikroskopā, izmantojot zaļo filtru (310-380 nm).Attēli tika uzņemti ar 4x palielinājumu, lai izprastu Ct attiecības un pārmērīgu polimēru nogulsnēšanos Ct tīklā.
NFRCS Ch un Cp virsmas topogrāfija tika noteikta, izmantojot atomu spēka mikroskopu (AFM) ar īpaši asu TESP konsoli pieskaršanās režīmā: 42 N/m, 320 kHz, ROC 2-5 nm, Bruker, Taivāna.Virsmas raupjums tika noteikts ar vidējo kvadrātisko (RMS), izmantojot programmatūru (Scanning Probe Image Processor).3D attēlos tika atveidotas dažādas NFRCS vietas, lai pārbaudītu virsmas viendabīgumu.Vērtējuma standarta novirze noteiktam laukumam ir definēta kā virsmas raupjums.RMS vienādojums tika izmantots, lai kvantitatīvi noteiktu NFRCS31 virsmas raupjumu.
Uz FESEM balstīti pētījumi tika veikti, izmantojot FESEM, SU8000, HI-0876-0003, Hitachi, Tokija, lai izprastu Ch NFRCS un Cp NFRCS virsmas morfoloģiju, kas uzrādīja labāku BCT nekā Cm NFRCS.FESEM pētījums tika veikts saskaņā ar metodi, ko aprakstīja Zhao et al.32 ar nelielām izmaiņām.NFRCS 20 līdz 30 mg Ch NFRCS un Cp NFRCS tika iepriekš sajaukti ar 20 µl 3,8% nātrija citrāta, kas iepriekš sajaukts ar žurku asinīm.Ar asinīm apstrādātajiem paraugiem pievienoja 20 μl 0, 2 M CaCl2, lai uzsāktu koagulāciju, un paraugus inkubēja istabas temperatūrā 10 minūtes.Turklāt liekie eritrocīti tika noņemti no NFRCS virsmas, skalojot ar fizioloģisko šķīdumu.
Nākamos paraugus apstrādāja ar 0, 1% glutaraldehīdu un pēc tam žāvēja karstā gaisa krāsnī 37 ° C temperatūrā, lai noņemtu mitrumu.Žāvētie paraugi tika pārklāti un analizēti 32 .Citi analīzes laikā iegūtie attēli bija trombu veidošanās uz atsevišķu kokvilnas šķiedru virsmas, polimēru nogulsnēšanās starp Ct, eritrocītu morfoloģija (forma), recekļa integritāte un eritrocītu morfoloģija NFRCS klātbūtnē.Neapstrādāti NFRCS apgabali un Ch un Cp apstrādāti NFRCS apgabali, kas inkubēti ar asinīm, tika skenēti elementu jonu (nātrija, kālija, slāpekļa, kalcija, magnija, cinka, vara un selēna) noteikšanai33.Salīdziniet elementāro jonu procentuālo attiecību starp apstrādātajiem un neapstrādātajiem paraugiem, lai izprastu elementāro jonu uzkrāšanos trombu veidošanās laikā un trombu viendabīgumu.
Cp HFFC virsmas pārklājuma biezums uz Ct virsmas tika noteikts, izmantojot FESEM.Cp NFRCS šķērsgriezumi tika izgriezti no karkasa un pārklāti ar izsmidzināšanu.Iegūtos izsmidzināšanas pārklājuma paraugus novēroja ar FESEM un izmēra virsmas pārklājuma biezumu 34 , 35 , 36 .
Rentgenstaru mikro-CT nodrošina augstas izšķirtspējas 3D nesagraujošu attēlveidošanu un ļauj izpētīt NFRK iekšējo strukturālo izkārtojumu.Micro-CT izmanto rentgenstaru, kas iet cauri paraugam, lai reģistrētu paraugā esošo rentgenstaru lokālo lineāro vājinājuma koeficientu, kas palīdz iegūt morfoloģisko informāciju.Ct iekšējā atrašanās vieta Cp NFRCS un ar asinīm apstrādātajā Cp NFRCS tika pārbaudīta ar mikro-CT, lai saprastu absorbcijas efektivitāti un asins recēšanu NFRCS klātbūtnē37, 38, 39.Ar asinīm apstrādātu un neapstrādātu Cp NFRCS paraugu 3D struktūras tika rekonstruētas, izmantojot mikro-CT (V|tome|x S240, Phoenix, Vācija).Izmantojot VG STUDIO-MAX programmatūras versiju 2.2, tika uzņemti vairāki rentgena attēli no dažādiem leņķiem (ideālā gadījumā 360° pārklājums), lai izstrādātu 3D attēlus NFRCS.Apkopotie projekcijas dati tika rekonstruēti 3D tilpuma attēlos, izmantojot atbilstošo vienkāršo 3D ScanIP Academic programmatūru.
Turklāt, lai izprastu tromba sadalījumu, NFRCS tika pievienoti 20 µl iepriekš sajauktu citrētu asiņu un 20 µl 0, 2 M CaCl2, lai uzsāktu asins recēšanu.Sagatavotos paraugus atstāj sacietēt.NFRK virsmu apstrādāja ar 0, 5% glutaraldehīdu un 30 minūtes žāvēja karstā gaisa krāsnī 30–40 ° C temperatūrā.Asins receklis, kas veidojas uz NFRCS, tika skenēts, rekonstruēts un tika vizualizēts asins recekļa 3D attēls.
Antibakteriālie testi tika veikti ar Cp NFRCS (vislabāk salīdzinājumā ar Ch NFRCS), izmantojot iepriekš aprakstīto metodi ar nelielām modifikācijām.Cp NFRCS un Cp HFFC antibakteriālā aktivitāte tika noteikta, izmantojot trīs dažādus testa mikroorganismus [S.aureus (grampozitīvas baktērijas), E.coli (gramnegatīvās baktērijas) un balto Candida (C.albicans)], kas aug uz agara Petri trauciņos inkubatorā.Uz agara barotnes vienmērīgi inokulē 50 ml atšķaidītas baktēriju kultūras suspensijas ar koncentrāciju 105-106 KVV ml-1.Ielejiet barotni Petri trauciņā un ļaujiet tai sastingt.Uz agara plāksnes virsmas tika izveidotas iedobes, lai tās piepildītu ar HFFC (3 iedobes HFFC un 1 negatīvai kontrolei).Pievienojiet 200 µl HFFC 3 iedobēm un 200 µl pH 7,4 PBS 4. iedobei.Petri trauciņa otrā pusē uz sacietējušā agara novieto 12 mm Cp NFRCS disku un samitrina ar PBS (pH 7,4).Ciprofloksacīna, ampicilīna un flukonazola tabletes tiek uzskatītas par Staphylococcus aureus, Escherichia coli un Candida albicans standartiem.Izmēriet inhibīcijas zonu manuāli un uzņemiet inhibīcijas zonas digitālo attēlu.
Pēc institucionālas ētiskas apstiprināšanas pētījums tika veikts Kasturbas Medicīnas izglītības un pētniecības koledžā Manipalā, Karnatakā, Indijas dienvidos.In vitro TEG eksperimentālo protokolu ir pārskatījusi un apstiprinājusi Kasturbas Medicīnas koledžas Institucionālā ētikas komiteja Manipalā, Karnatakā (IEC: 674/2020).Subjekti tika pieņemti darbā no brīvprātīgajiem asins donoriem (vecumā no 18 līdz 55 gadiem) no slimnīcas asins bankas.Turklāt no brīvprātīgajiem tika iegūta informēta piekrišanas veidlapa asins paraugu ņemšanai.Native TEG (N-TEG) ​​tika izmantots, lai pētītu Cp HFFC preparāta ietekmi uz pilnām asinīm, kas iepriekš sajauktas ar nātrija citrātu.N-TEG ir plaši atzīts par savu lomu atdzīvināšanā aprūpes vietā, kas rada problēmas klīnicistiem, jo ​​ir iespējama klīniski nozīmīga rezultātu aizkavēšanās (parastās koagulācijas testi).N-TEG analīze tika veikta, izmantojot pilnas asinis.No visiem dalībniekiem tika iegūta informēta piekrišana un detalizēta medicīniskā vēsture.Pētījumā netika iekļauti dalībnieki ar hemostatiskām vai trombotiskām komplikācijām, piemēram, grūtniecību / pēcdzemdību vai aknu slimību.No pētījuma tika izslēgti arī subjekti, kuri lietoja zāles, kas ietekmē koagulācijas kaskādi.Visiem dalībniekiem saskaņā ar standarta procedūrām tika veikti pamata laboratorijas testi (hemoglobīns, protrombīna laiks, aktivētais tromboplastīns un trombocītu skaits).N-TEG nosaka asins recekļa viskoelastību, sākotnējo trombu struktūru, daļiņu mijiedarbību, trombu nostiprināšanos un trombu līzi.N-TEG analīze sniedz grafiskus un skaitliskus datus par vairāku šūnu elementu un plazmas kopējo ietekmi.N-TEG analīze tika veikta diviem dažādiem Cp HFFC tilpumiem (10 µl un 50 µl).Rezultātā 1 ml asiņu ar citronskābi pievienoja 10 μl Cp HFFC.Pievienojiet 1 ml (Cp HFFC + citrētas asinis), 340 µl jauktas asinis 20 µl 0,2 M CaCl2, kas satur TEG trauciņu.Pēc tam TEG trauki tika ievietoti TEG® 5000, US, lai izmērītu R, K, alfa leņķi, MA, G, CI, TPI, EPL, LY 30% asins paraugu Cp HFFC41 klātbūtnē.
In vivo pētījuma protokolu pārskatīja un apstiprināja Institucionālā dzīvnieku ētikas komiteja (IAEC), Kasturbas Medicīnas skola, Manipalas Augstākās izglītības institūts, Manipal (IAEC/KMC/69/2020).Visi eksperimenti ar dzīvniekiem tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku eksperimentu kontroles un uzraudzības komitejas (CPCSEA) ieteikumiem.Visi in vivo NFRCS pētījumi (2 × 2 cm2) tika veikti ar Wistar žurku mātītēm (sver no 200 līdz 250 g).Visi dzīvnieki tika aklimatizēti 24-26°C temperatūrā, dzīvniekiem bija brīva piekļuve standarta barībai un ūdenim ad libitum.Visi dzīvnieki tika nejauši sadalīti dažādās grupās, katrā grupā bija trīs dzīvnieki.Visi pētījumi tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku pētījumi: In vivo eksperimentu ziņojums 43 .Pirms pētījuma dzīvnieki tika anestēzēti, intraperitoneāli (ip) ievadot maisījumu no 20-50 mg ketamīna (uz 1 kg ķermeņa svara) un 2-10 mg ksilazīna (uz 1 kg ķermeņa svara).Pēc pētījuma tika aprēķināts asiņošanas apjoms, novērtējot starpību starp paraugu sākotnējo un galīgo svaru, par parauga asiņošanas apjomu tika ņemta vidējā vērtība, kas iegūta no trim testiem.
Žurku astes amputācijas modelis tika ieviests, lai izprastu NFRCS potenciālu modulēt asiņošanu traumu, kaujas vai ceļu satiksmes negadījumos (traumu modelis).Nogrieziet 50% astes ar skalpeļa asmeni un novietojiet to gaisā uz 15 sekundēm, lai nodrošinātu normālu asiņošanu.Turklāt testa paraugi tika novietoti uz žurkas astes, izdarot spiedienu (Ct, Cs, Ch NFRCS un Cp NFRCS).Tika ziņots par asiņošanu un PCT testa paraugiem (n = 3)17,45.
NFRCS spiediena kontroles efektivitāte cīņā tika pētīta uz virspusējās augšstilba artērijas modeļa.Ciskas kaula artērija tiek atklāta, caurdurta ar 24G trokāru un 15 sekunžu laikā tiek veikta asiņošana.Pēc nekontrolētas asiņošanas novērošanas testa paraugu ievieto punkcijas vietā ar spiedienu.Tūlīt pēc testa parauga uzklāšanas tika reģistrēts recēšanas laiks un hemostatiskā efektivitāte tika novērota nākamās 5 minūtes.Tāda pati procedūra tika atkārtota ar Cs un Ct46.
Dowling et al.47 ierosināja aknu bojājuma modeli, lai novērtētu hemostatisko materiālu hemostatisko potenciālu intraoperatīvas asiņošanas kontekstā.BCT tika reģistrēts Ct paraugiem (negatīvā kontrole), Cs ietvara (pozitīvā kontrole), Ch NFRCS paraugiem un Cp NFRCS paraugiem.Žurkas suprahepatiskā dobā vēna tika pakļauta, veicot vidējo laparotomiju.Pēc tam ar šķērēm tika izgriezta kreisās daivas distālā daļa.Veiciet iegriezumu aknās ar skalpeļa asmeni un ļaujiet tām dažas sekundes asiņot.Precīzi nosvērti Ch NFRCS un Cp NFRCS testa paraugi tika novietoti uz bojātās virsmas bez pozitīva spiediena un tika reģistrēti BCT.Pēc tam kontroles grupa (Ct) piemēroja spiedienu, kam sekoja Cs 30 s47, nesalaužot traumu.
In vivo brūču dzīšanas testi tika veikti, izmantojot ekscīzijas brūces modeli, lai novērtētu izstrādāto uz polimēru balstīto NFRCS brūču dzīšanas īpašības.Ekscīzijas brūču modeļi tika atlasīti un veikti saskaņā ar iepriekš publicētām metodēm ar nelielām modifikācijām 19, 32, 48.Visi dzīvnieki tika anestēzēti, kā aprakstīts iepriekš.Izmantojiet biopsijas perforatoru (12 mm), lai veiktu apļveida dziļu iegriezumu muguras ādā.Sagatavotās brūču vietas tika pārklātas ar Cs (pozitīvā kontrole), Ct (atzīstot, ka kokvilnas spilventiņi traucē dzīšanu), Ch NFRCS un Cp NFRCS (eksperimentālā grupa) un negatīvu kontroli bez jebkādas ārstēšanas.Katrā pētījuma dienā visām žurkām tika mērīts brūces laukums.Izmantojiet digitālo kameru, lai nofotografētu brūces zonu un uzliktu jaunu pārsēju.Brūces slēgšanas procentuālo daudzumu mēra pēc šādas formulas:
Pamatojoties uz brūču aizvēršanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas žurku āda tika izgriezta ((Cp NFRCS) un kontroles grupa) un pētīta ar H&E krāsošanu un Masona trihroma krāsošanu. Pamatojoties uz brūču aizvēršanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas žurku āda tika izgriezta ((Cp NFRCS) un kontroles grupa) un pētīta ar H&E krāsošanu un Masona trihroma krāsošanu.Pamatojoties uz brūču aizvēršanās procentuālo daļu pētījuma 12. dienā, labākās grupas ((Cp NFRCS) un kontroles grupas) žurku āda tika izgriezta un pārbaudīta, krāsojot ar hematoksilīna-eozīnu un Masona trihromu.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组&E)牄大鼠三色染色研究.根据研究第12天的伤口闭合百分比，切除最佳组((Cp NFRCS)和对照组&E)牄大鼠的大鼠眳组)Žurkas no labākajām grupām ((Cp NFRCS) un kontroles grupām) tika izgrieztas hematoksilīna-eozīna krāsošanai un Masona trihroma krāsošanai, pamatojoties uz brūču aizvēršanās procentuālo daudzumu pētījuma 12. dienā.Ieviestā krāsošanas procedūra tika veikta saskaņā ar iepriekš aprakstītajām metodēm49, 50.Īsumā, pēc fiksācijas 10% formalīnā, paraugi tika dehidrēti, izmantojot virkni šķirotu spirtu.Izmantojiet mikrotomu, lai iegūtu plānas (5 µm biezas) izgriezto audu daļas.Plānas kontroles un Cp NFRCS sērijas sekcijas tika apstrādātas ar hematoksilīnu un eozīnu, lai pētītu histopatoloģiskās izmaiņas.Masona trihroma traips tika izmantots, lai noteiktu kolagēna fibrilu veidošanos.Iegūtos rezultātus akli pētīja patologi.
Cp NFRCS paraugu stabilitāte tika pētīta istabas temperatūrā (25°C ± 2°C/60% RH ± 5%) 12 mēnešus51.Cp NFRCS (virsmas krāsas maiņa un mikrobu augšana) tika vizuāli pārbaudīts un pārbaudīts attiecībā uz nodilumizturību un BCT saskaņā ar iepriekš minētajām metodēm, kas aprakstītas sadaļā Materiāli un metodes.
Cp NFRCS mērogojamība un reproducējamība tika pārbaudīta, sagatavojot Cp NFRCS ar izmēru 15 × 15 cm2.Turklāt no dažādām Cp NFRCS frakcijām tika izgriezti 30 mg paraugi (n = 5), un pētīto paraugu BCT tika novērtēts, kā aprakstīts iepriekš sadaļā Metodes.
Mēs esam mēģinājuši izstrādāt dažādas formas un struktūras, izmantojot Cp NFRCS kompozīcijas dažādiem biomedicīnas lietojumiem.Šādas formas vai konfigurācijas ietver konusveida tamponus deguna asiņošanai, zobārstniecības procedūras un cilindriskus tamponus maksts asiņošanai.
Visas datu kopas ir izteiktas kā vidējā ± standarta novirze un tika analizētas ar ANOVA, izmantojot Prism 5.03 (GraphPad, Sandjego, CA, ASV), kam sekoja Bonferroni vairāku salīdzinājumu tests (*p <0,05).
Visas cilvēku pētījumos veiktās procedūras bija saskaņā ar Institūta un Nacionālās pētniecības padomes standartiem, kā arī 1964. gada Helsinku deklarāciju un tās turpmākajiem grozījumiem vai līdzīgiem ētikas standartiem.Visi dalībnieki tika informēti par pētījuma iezīmēm un tā brīvprātīgo raksturu.Dalībnieku dati pēc ievākšanas paliek konfidenciāli.In vitro TEG eksperimentālo protokolu ir pārskatījusi un apstiprinājusi Kasturbas Medicīnas koledžas Institucionālā ētikas komiteja Manipalā, Karnatakā (IEC: 674/2020).Brīvprātīgie parakstīja informētu piekrišanu asins paraugu ņemšanai.
Visas procedūras, kas veiktas pētījumos ar dzīvniekiem, tika veiktas saskaņā ar Manipalas Manipal Augstākās izglītības institūta Kastuba Medicīnas fakultāti (IAEC/KMC/69/2020).Visi paredzētie eksperimenti ar dzīvniekiem tika veikti saskaņā ar Dzīvnieku eksperimentu kontroles un uzraudzības komitejas (CPCSEA) vadlīnijām.Visi autori ievēro ARRIVE vadlīnijas.
Tika analizēti visu NFRCS FTIR spektri un salīdzināti ar hitozāna spektru, kas parādīts 2.A attēlā.Hitozāna raksturīgie spektrālie maksimumi (reģistrēti) pie 3437 cm-1 (OH un NH stiepšanās, pārklāšanās), 2945 un 2897 cm-1 (CH stiepšanās), 1660 cm-1 (NH2 celms), 1589 cm-1 (N-H liece), 1157 cm-1 (H-H liece), sekundārais stiepums 1157 cm-1 cm-1 (-bridge yl), 993 cm-1 (stiept CO, Bo-OH) 52.53.54.Papildu tabulā S1 parādītas FTIR NFRCS absorbcijas spektra vērtības hitozānam (reportierim), tīram hitozānam, Cm, Ch un Cp.Visu NFRCS (Cm, Ch un Cp) FTIR spektri uzrādīja tādas pašas raksturīgās absorbcijas joslas kā tīram hitozānam bez būtiskām izmaiņām (2.A att.).FTIR rezultāti apstiprināja ķīmiskās vai fizikālās mijiedarbības neesamību starp NFRCS izstrādei izmantotajiem polimēriem, norādot, ka izmantotie polimēri ir inerti.
Cm NFRCS, Ch NFRCS, Cp NFRCS un Cs raksturojums in vitro.(A) attēlo hitozāna un Cm NFRCS, Ch NFRCS un Cp NFRCS kompozīciju kombinētos FTIR spektrus saspiešanas laikā.(B) a) NFRCS Cm, Ch, Cp un Cg pilno asiņu uzņemšanas ātrums (n = 3);Ct paraugi uzrādīja augstāku BAR, jo vates tamponam ir augstāka absorbcijas efektivitāte;b) Asinis pēc asiņu absorbcijas Absorbētā parauga ilustrācija.Pārbaudāmā parauga C BCT grafiskais attēlojums (Cp NFRCS bija vislabākais BCT (15 s, n = 3)). Dati C, D, E un G tika parādīti kā vidējais ± SD, un kļūdu joslas attēlo SD, ***p < 0,0001. Dati C, D, E un G tika parādīti kā vidējais ± SD, un kļūdu joslas attēlo SD, ***p < 0,0001. Данные в C, D, E un G представлены как среднее ± стандартное отклонение, а планки погрешностей представлендниртноp,0 представлендниют 001. Dati C, D, E un G ir parādīti kā vidējā ± standarta novirze, un kļūdu joslas atspoguļo standarta novirzi, ***p<0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. C、D、E 和G 中的数据显示为平均值± SD，误差线代表SD，***p < 0,0001. Данные в C, D, E un G показаны как среднее значение ± стандартное отклонение, планки погрешностей, представляют 0,0001. Dati C, D, E un G ir parādīti kā vidējā ± standarta novirze, kļūdu joslas norāda standarta novirzi, ***p<0,0001.