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A corrosão microbiana (MIC) é um problema sério em muitas indústrias, pois pode causar grandes perdas econômicas. O aço inoxidável super duplex 2707 (2707 HDSS) tem sido usado em ambientes marinhos devido à sua excelente resistência química. No entanto, sua resistência a MIC não foi demonstrada experimentalmente. eruginosa no meio 2216E, houve uma mudança positiva no potencial de corrosão e um aumento na densidade da corrente de corrosão. A análise por espectroscopia de fotoelétrons de raios X (XPS) mostrou uma diminuição no teor de Cr na superfície da amostra abaixo do biofilme. 07 HDSS não é totalmente imune ao MIC de biofilmes de P. aeruginosa.
Os aços inoxidáveis ​​duplex (DSS) são amplamente utilizados em várias indústrias por sua combinação ideal de excelentes propriedades mecânicas e resistência à corrosão1,2. No entanto, pitting localizado ainda ocorre e afeta a integridade deste aço3,4. DSS não é resistente à corrosão microbiana (MIC)5,6. Apesar da ampla gama de aplicações do DSS, ainda existem ambientes onde a resistência à corrosão do DSS não é suficiente para uso a longo prazo. Isso significa que materiais mais caros com maior resistência à corrosão são necessários. Jeon et al7 descobriram que mesmo super aços inoxidáveis ​​duplex (SDSS) têm algumas limitações em termos de resistência à corrosão. Portanto, aços inoxidáveis ​​super duplex (HDSS) com maior resistência à corrosão são necessários em algumas aplicações. Isso levou ao desenvolvimento de HDSS altamente ligado.
A resistência à corrosão do DSS depende da proporção das fases alfa e gama e das regiões empobrecidas de Cr, Mo e W 8, 9, 10 adjacentes à segunda fase. O HDSS contém alto teor de Cr, Mo e N11, por isso tem excelente resistência à corrosão e um alto valor (45-50) Número Equivalente de Resistência ao Pitting (PREN), determinado por % em peso de Cr + 3,3 (% em peso de Mo + 0,5% em peso de W) + 16% em peso de N12 .Sua excelente resistência à corrosão depende de uma composição balanceada contendo aproximadamente 50% de ferrita (α) e 50% de fases de austenita (γ), o HDSS possui melhores propriedades mecânicas e maior resistência que o DSS convencional13.Propriedades de corrosão de cloreto. A resistência à corrosão aprimorada expande o uso de HDSS em ambientes de cloreto mais corrosivos, como ambientes marítimos.
MICs são um grande problema em muitas indústrias, como óleo e gás e serviços de água14.MIC é responsável por 20% de todos os danos causados ​​por corrosão15.MIC é corrosão bioeletroquímica que pode ser observada em muitos ambientes.Biofilmes que se formam em superfícies de metal alteram as condições eletroquímicas, afetando assim o processo de corrosão.Acredita-se amplamente que a corrosão MIC é causada por biofilmes.Microorganismos eletrogênicos corroem metais para obter energia sustentável para sobreviver17.Estudos recentes de MIC mostraram que EET ( transferência extracelular de elétrons) é o fator limitante da taxa de MIC induzida por microrganismos eletrogênicos. Zhang et al.18 demonstraram que mediadores de elétrons aceleram a transferência de elétrons entre células Desulfovibrio sessificans e aço inoxidável 304, levando a um ataque MIC mais severo. Enning et al.19 e Venzlaff et al.20 mostraram que biofilmes corrosivos de bactérias redutoras de sulfato (SRB) podem absorver elétrons diretamente de substratos metálicos, resultando em corrosão por pite severa.
Sabe-se que o DSS é suscetível a MIC em ambientes contendo SRB, bactérias redutoras de ferro (IRB), etc. 21 . Essas bactérias causam corrosão localizada nas superfícies do DSS sob biofilmes22,23. Ao contrário do DSS, o MIC do HDSS24 é pouco conhecido.
Pseudomonas aeruginosa é uma bactéria gram-negativa móvel em forma de bastonete amplamente distribuída na natureza25.Pseudomonas aeruginosa também é um importante grupo microbiano no ambiente marinho, causando MIC ao aço.Pseudomonas está intimamente envolvida em processos de corrosão e é reconhecida como colonizadora pioneira durante a formação de biofilme.Mahat et al.28 e Yuan et al.29 demonstraram que Pseudomonas aeruginosa tem tendência a aumentar a taxa de corrosão de aço doce e ligas em ambientes aquosos.
O principal objetivo deste trabalho foi investigar as propriedades MIC de 2707 HDSS causada pela bactéria aeróbica marinha Pseudomonas aeruginosa usando métodos eletroquímicos, técnicas analíticas de superfície e análise de produtos de corrosão. Estudos eletroquímicos incluindo Potencial de Circuito Aberto (OCP), Resistência de Polarização Linear (LPR), Espectroscopia de Impedância Eletroquímica (EIS) e Polarização Dinâmica de Potencial foram realizados para estudar o comportamento MIC de 2707 HDSS. Espectrômetro dispersivo de energia (EDS) foi realizada para encontrar elementos químicos na superfície corroída. Além disso, a análise de espectroscopia de fotoelétrons de raios X (XPS) foi usada para determinar a estabilidade da passivação do filme de óxido sob a influência de um ambiente marinho contendo Pseudomonas aeruginosa. A profundidade do poço foi medida sob um microscópio confocal de varredura a laser (CLSM).
A Tabela 1 lista a composição química de 2707 HDSS. A Tabela 2 mostra que 2707 HDSS tem excelentes propriedades mecânicas com um limite de elasticidade de 650 MPa. A Figura 1 mostra a microestrutura óptica de solução tratada termicamente 2707 HDSS. Faixas alongadas de fases de austenita e ferrita sem fases secundárias podem ser vistas na microestrutura contendo cerca de 50% de austenita e 50% de fases de ferrita.
A Figura 2a mostra o potencial de circuito aberto (Eocp) versus dados de tempo de exposição para 2707 HDSS em meio abiótico 2216E e caldo P. aeruginosa por 14 dias a 37 °C. s. SCE) e -236 mV (vs. SCE) para a amostra abiótica e P, respectivamente).Cupons de Pseudomonas aeruginosa, respectivamente. Após 24 horas, o valor Eocp de 2707 HDSS para P. aeruginosa foi relativamente estável em -228 mV (vs. SCE), enquanto o valor correspondente para amostras não biológicas foi de aproximadamente -442 mV (vs. SCE). Eocp na presença de P. aeruginosa foi bastante baixo.
Teste eletroquímico de 2.707 espécimes de HDSS em meio abiótico e caldo de Pseudomonas aeruginosa a 37 °C:
(a) Eocp em função do tempo de exposição, (b) curvas de polarização no dia 14, (c) Rp em função do tempo de exposição e (d) icorr em função do tempo de exposição.
A Tabela 3 lista os valores dos parâmetros de corrosão eletroquímica de 2.707 amostras de HDSS expostas a meio abiótico e meio inoculado com Pseudomonas aeruginosa por 14 dias. As tangentes das curvas anódica e catódica foram extrapoladas para chegar às interseções produzindo densidade de corrente de corrosão (icorr), potencial de corrosão (Ecorr) e inclinações de Tafel (βα e βc) de acordo com métodos padrão30,31.
Conforme mostrado na Figura 2b, o deslocamento para cima da curva de P. aeruginosa resultou em um aumento no Ecorr em comparação com a curva abiótica. O valor icorr, que é proporcional à taxa de corrosão, aumentou para 0,328 μA cm-2 na amostra de Pseudomonas aeruginosa, quatro vezes o da amostra não biológica (0,087 μA cm-2).
LPR é um método eletroquímico não destrutivo clássico para análise rápida de corrosão.Também foi usado para estudar MIC32.A Figura 2c mostra a resistência à polarização (Rp) em função do tempo de exposição.Um valor de Rp mais alto significa menos corrosão.Nas primeiras 24 horas, o Rp de 2707 HDSS atingiu um valor máximo de 1955 kΩ cm2 para amostras abióticas e 1429 kΩ cm2 para amostras de Pseudomonas aeruginosa. A Figura 2c também mostra que o valor de Rp diminuiu rapidamente após um dia e permaneceu relativamente inalterado nos 13 dias seguintes.
O valor icorr é proporcional à taxa de corrosão uniforme. Seu valor pode ser calculado a partir da seguinte equação de Stern-Geary,
Seguindo Zou et al.33, um valor típico do Tafel slope B neste trabalho foi assumido como 26 mV/dec. A Figura 2d mostra que o icorr da amostra não biológica 2707 permaneceu relativamente estável, enquanto a amostra de P. aeruginosa flutuou muito após as primeiras 24 horas.
EIS é outra técnica não destrutiva usada para caracterizar reações eletroquímicas em interfaces corroídas. Espectros de impedância e valores de capacitância calculados de espécimes expostos a meios abióticos e solução de Pseudomonas aeruginosa, resistência Rb de filme/biofilme passivo formado na superfície do espécime, resistência de transferência de carga Rct, capacitância elétrica de dupla camada Cdl (EDL ) e parâmetros de elementos de fase constante (CPE) QCPE. Esses parâmetros foram posteriormente analisados ​​ajustando os dados usando um circuito equivalente (EEC ) modelo.
A Figura 3 mostra gráficos típicos de Nyquist (a e b) e gráficos de Bode (a' e b') de 2.707 amostras de HDSS em meio abiótico e caldo de P. aeruginosa para diferentes tempos de incubação. A Figura 4 mostra as estruturas físicas baseadas em monocamada (a) e bicamada (b) e seus EECs correspondentes. CPE é introduzido no modelo EEC. Sua admitância e impedância são expressas da seguinte forma:
Dois modelos físicos e circuitos equivalentes correspondentes para ajustar o espectro de impedância do espécime 2707 HDSS:
onde Y0 é a magnitude do CPE, j é o número imaginário ou (-1)1/2, ω é a frequência angular e n é o índice de potência do CPE menor que a unidade35. O inverso da resistência à transferência de carga (ou seja, 1/Rct) corresponde à taxa de corrosão. Rct menor significa taxa de corrosão mais rápida27. Após 14 dias de incubação, o Rct das amostras de Pseudomonas aeruginosa atingiu 32 kΩ cm2, muito menor que os 489 kΩ cm2 das amostras não biológicas (Tabela 4).
As imagens CLSM e as imagens SEM na Figura 5 mostram claramente que a cobertura do biofilme na superfície do espécime 2707 HDSS após 7 dias é densa. No entanto, após 14 dias, a cobertura do biofilme era esparsa e algumas células mortas apareceram. A Tabela 5 mostra a espessura do biofilme em espécimes 2707 HDSS após exposição a P. aeruginosa por 7 e 14 dias. para 18,9 μm após 14 dias. A espessura média do biofilme também confirmou esta tendência. Diminuiu de 22,2 ± 0,7 μm após 7 dias para 17,8 ± 1,0 μm após 14 dias.
(a) imagem CLSM 3-D após 7 dias, (b) imagem CLSM 3-D após 14 dias, (c) imagem SEM após 7 dias e (d) imagem SEM após 14 dias.
A EDS revelou elementos químicos em biofilmes e produtos de corrosão em amostras expostas a P. aeruginosa por 14 dias. A Figura 6 mostra que o conteúdo de C, N, O e P em biofilmes e produtos de corrosão é muito maior do que em metais descobertos, porque esses elementos estão associados a biofilmes e seus metabólitos. Os micróbios precisam apenas de vestígios de cromo e ferro. elementos devido à corrosão.
Após 14 dias, pitting com e sem P. aeruginosa foi observado no meio 2216E. Antes da incubação, a superfície da amostra era lisa e sem defeitos (Fig. 7a). μm). A profundidade máxima da cova causada por Pseudomonas aeruginosa foi de 0,52 μm após 7 dias e 0,69 μm após 14 dias, com base na profundidade máxima média da cova de 3 amostras (10 valores máximos de profundidade da cova foram selecionados para cada amostra) atingiram 0,42 ± 0,12 μm e 0,52 ± 0,15 μm, respectivamente (Tabela 5). Esses valores de profundidade da cova são pequenos, mas importantes .
(a) Antes da exposição, (b) 14 dias em meio abiótico e (c) 14 dias em caldo Pseudomonas aeruginosa.
A Figura 8 mostra os espectros XPS de diferentes superfícies de amostra, e as composições químicas analisadas para cada superfície estão resumidas na Tabela 6. Na Tabela 6, as porcentagens atômicas de Fe e Cr na presença de P. aeruginosa (amostras A e B) foram muito menores do que as das amostras de controle não biológico (amostras C e D). 574,4, 576,6, 578,3 e 586,8 eV, que podem ser atribuídos a Cr, Cr2O3, CrO3 e Cr(OH)3, respectivamente (Fig. 9a e b). , respectivamente. A diferença mais marcante entre as amostras abióticas e de P. aeruginosa foi a presença de Cr6+ e uma maior fração relativa de Cr(OH)3 (BE de 586,8 eV) abaixo do biofilme.
Os amplos espectros XPS da superfície do espécime 2707 HDSS nos dois meios são de 7 dias e 14 dias, respectivamente.
(a) 7 dias de exposição a P. aeruginosa, (b) 14 dias de exposição a P. aeruginosa, (c) 7 dias em meio abiótico e (d) 14 dias em meio abiótico.
HDSS exibe altos níveis de resistência à corrosão na maioria dos ambientes. Kim et al.2 relatou que UNS S32707 HDSS foi definido como um DSS altamente ligado com um PREN de mais de 45. O valor PREN da amostra de HDSS 2707 neste trabalho foi 49. Isso se deve ao seu alto teor de cromo e altos níveis de molibdênio e Ni, que são benéficos em ambientes ácidos e com alto teor de cloreto. os dados experimentais neste trabalho sugerem que 2707 HDSS não é completamente imune ao MIC de biofilmes de P. aeruginosa.
Os resultados eletroquímicos mostraram que a taxa de corrosão de 2707 HDSS no caldo P. aeruginosa aumentou significativamente após 14 dias em comparação com o meio não biológico. Eocp biológico. Há motivos para acreditar que essa diferença se deve à formação de biofilme de P. aeruginosa.Na Fig. 2d, na presença de P. aeruginosa, o valor icorr de 2707 HDSS atingiu 0,627 μA cm-2, que foi uma ordem de grandeza maior que a do controle abiótico (0,063 μA cm-2), que foi consistente com o valor Rct medido por EIS. Durante os primeiros dias, imp os valores de edance no caldo de P. aeruginosa aumentaram devido à fixação de células de P. aeruginosa e à formação de biofilmes. No entanto, quando o biofilme cobre completamente a superfície da amostra, a impedância diminui. A camada protetora é atacada primeiro devido à formação de biofilmes e metabólitos de biofilme. Portanto, a resistência à corrosão diminuiu com o tempo e a fixação de P. aeruginosa causou corrosão localizada. - o controle biológico foi muito maior do que o valor correspondente das amostras expostas ao caldo P. aeruginosa. Além disso, para amostras abióticas, o valor Rct de 2707 HDSS atingiu 489 kΩ cm2 no dia 14, que foi 15 vezes o valor Rct (32 kΩ cm2) na presença de P. aeruginosa. Portanto, 2707 HDSS tem excelente resistência à corrosão em um ambiente estéril, mas não é resistente ao ataque MIC por P. .aeruginosa biofilmes.
Esses resultados também podem ser observados a partir das curvas de polarização na Fig. 2b. A ramificação anódica foi atribuída à formação do biofilme de Pseudomonas aeruginosa e reações de oxidação do metal. Ao mesmo tempo, a reação catódica é a redução do oxigênio. 29 descobriram que a densidade de corrente de corrosão da liga Cu-Ni 70/30 aumentou sob desafio de biofilme de P. aeruginosa. Isso pode ser devido à biocatálise da redução de oxigênio por biofilmes de Pseudomonas aeruginosa. Esta observação também pode explicar a MIC de 2707 HDSS neste trabalho. o MIC neste trabalho.
Dickinson e outros.38 sugeriram que as taxas de reações químicas e eletroquímicas podem ser diretamente afetadas pela atividade metabólica de bactérias sésseis na superfície da amostra e pela natureza dos produtos de corrosão. Conforme mostrado na Figura 5 e na Tabela 5, tanto o número de células quanto a espessura do biofilme diminuíram após 14 dias. da matriz HDSS 2707. Esta é uma limitação dos experimentos em lote.
Neste trabalho, o biofilme de P. aeruginosa promoveu a depleção local de Cr e Fe abaixo do biofilme na superfície do 2707 HDSS (Fig. 6). é comparável ao encontrado na água do mar natural. A presença de 17700 ppm Cl- foi a principal razão para a redução de Cr nas amostras abióticas de 7 e 14 dias analisadas pelo XPS. de superfícies de aço por biofilmes de P. aeruginosa, como sugerido por Chen e Clayton.
Devido ao crescimento bacteriano, os valores de pH do meio antes e depois do cultivo foram de 7,4 e 8,2, respectivamente. Portanto, abaixo do biofilme P. aeruginosa, é improvável que a corrosão do ácido orgânico seja um fator contribuinte para este trabalho devido ao pH relativamente alto no meio a granel. O pH do meio de controle não biológico não mudou significativamente (de 7,4 inicial para 7,5 final) durante o período de teste de 14 dias. A redução foi devida à atividade metabólica de P. aeruginosa e mostrou ter o mesmo efeito sobre o pH na ausência de tiras de teste.
Conforme mostrado na Figura 7, a profundidade máxima da cavidade causada pelo biofilme de P. aeruginosa foi de 0,69 μm, muito maior do que a do meio abiótico (0,02 μm). Resistência C em comparação com o DSS 2205. Isso não deve ser uma surpresa, pois o HDSS 2707 tem um teor de cromo mais alto, proporcionando uma passivação mais duradoura, devido à estrutura de fase balanceada sem precipitados secundários nocivos, tornando mais difícil para P. aeruginosa despassivar e eclipsar os pontos iniciais.
Em conclusão, pitting MIC foi encontrado na superfície de 2707 HDSS em caldo de P. aeruginosa em comparação com pitting insignificante em meio abiótico. Este trabalho mostra que 2707 HDSS tem melhor resistência a MIC do que 2205 DSS, mas não é totalmente imune a MIC devido ao biofilme de P. aeruginosa. Essas descobertas ajudam na seleção de aços inoxidáveis ​​adequados e vida útil estimada para o ambiente marinho.
O cupom para 2707 HDSS é fornecido pela Escola de Metalurgia da Northeastern University (NEU) em Shenyang, China. A composição elementar de 2707 HDSS é mostrada na Tabela 1, que foi analisada pelo NEU Materials Analysis and Testing Department. granulado com papel de carboneto de silício e posteriormente polido com uma suspensão de pó de Al2O3 de 0,05 μm. As laterais e o fundo são protegidos por tinta inerte. Após a secagem, os espécimes foram enxaguados com água deionizada estéril e esterilizados com etanol a 75% (v/v) por 0,5 h. Em seguida, foram secos ao ar sob luz ultravioleta (UV) por 0,5 horas antes do uso.
A cepa de Pseudomonas aeruginosa marinha MCCC 1A00099 foi adquirida no Xiamen Marine Culture Collection Center (MCCC), China. A Pseudomonas aeruginosa foi cultivada aerobiamente a 37°C em frascos de 250 ml e células de vidro eletroquímicas de 500 ml usando meio líquido Marine 2216E (Qingdao Hope Biotechnology Co., Ltd., Qingdao, China).Meio (g/L): 19 0,45 NaCl, 5,98 MgCl2, 3,24 Na2SO4, 1,8 CaCl2, 0,55 KCl, 0,16 Na2CO3, 0,08 KBr, 0,034 SrCl2, 0,08 SrBr2, 0,022 H3BO3, 0,004 NaSiO3, 0016 NH3, 0016 NH3, 0016 NaH2PO4, 5,0 peptona, 1,0 extrato de levedura e 0,1 citrato férrico. Autoclavar a 121°C por 20 minutos antes da inoculação. Contar células sésseis e planctônicas usando um hemocitômetro sob um microscópio de luz com ampliação de 400X.
Os testes eletroquímicos foram realizados em uma célula de vidro clássica de três eletrodos com um volume médio de 500 ml. Uma folha de platina e um eletrodo de calomelano saturado (SCE) foram conectados ao reator através de capilares Luggin preenchidos com pontes salinas, servindo como contra eletrodos e eletrodos de referência, respectivamente. , as amostras foram colocadas em meio 2216E e mantidas a uma temperatura de incubação constante (37 °C) em banho-maria. Os dados de OCP, LPR, EIS e polarização dinâmica potencial foram medidos usando um potenciostato Autolab (Referência 600TM, Gamry Instruments, Inc., EUA). O IS foi realizado com uma onda senoidal na faixa de frequência de 0,01 a 10.000 Hz usando uma tensão aplicada de 5 mV em estado estacionário Eocp. Antes da varredura de potencial, os eletrodos estavam no modo de circuito aberto até que um valor estável de potencial de corrosão livre fosse alcançado. As curvas de polarização foram executadas de -0,2 a 1,5 V vs. Eocp a uma taxa de varredura de 0,166 mV/s. Cada teste foi repetido 3 vezes com e sem P. aeruginosa.
As amostras para análise metalográfica foram polidas mecanicamente com papel de SiC úmido de 2000 grit e, em seguida, polidas com suspensão de pó Al2O3 de 0,05 μm para observação óptica. A análise metalográfica foi realizada usando um microscópio óptico. As amostras foram atacadas com solução de hidróxido de potássio a 10% em peso 43.
Após a incubação, as amostras foram lavadas 3 vezes com solução salina tamponada com fosfato (PBS) (pH 7,4 ± 0,2) e então fixadas com glutaraldeído 2,5% (v/v) por 10 horas para fixar biofilmes. etanol antes da secagem ao ar. Finalmente, a superfície da amostra é pulverizada com um filme de ouro para fornecer condutividade para observação SEM. As imagens SEM foram focadas nos pontos com as células de P. aeruginosa mais sésseis na superfície de cada espécime. Realizar análise EDS para encontrar elementos químicos. m, a peça de teste foi primeiro limpa de acordo com o Padrão Nacional Chinês (CNS) GB/T4334.4-2000 para remover os produtos de corrosão e o biofilme na superfície da peça de teste.
A análise de espectroscopia de fotoelétrons de raios-X (XPS, sistema de análise de superfície ESCALAB250, Thermo VG, EUA) foi realizada usando uma fonte de raios-X monocromática (linha Kα de alumínio a 1500 eV de energia e 150 W de potência) em uma ampla faixa de energia de ligação 0 sob condições padrão -1350 eV. Os espectros de alta resolução foram registrados usando 50 eV de energia de passagem e 0,2 eV de tamanho de passo.
As amostras incubadas foram removidas e enxaguadas suavemente com PBS (pH 7,4 ± 0,2) por 15 s45. Para observar a viabilidade bacteriana dos biofilmes nas amostras, os biofilmes foram corados usando o kit de viabilidade bacteriana LIVE/DEAD BacLight (Invitrogen, Eugene, OR, EUA). No CLSM, pontos com verde fluorescente e vermelho representam células vivas e mortas, respectivamente. Para coloração, uma mistura de 1 ml contendo 3 μl de SYTO-9 e 3 μl de solução de PI foi incubada por 20 minutos em temperatura ambiente (23 oC) no escuro. Posteriormente, as amostras coradas foram observadas em dois comprimentos de onda (488 nm para células vivas e 559 nm para células mortas) usando uma máquina Nikon CLSM (C2 Plus, Nikon, Japão).Bio a espessura do filme foi medida no modo de varredura 3-D.
Como citar este artigo: Li, H. et al.Corrosão microbiana do aço inoxidável super duplex 2707 por biofilme marinho de Pseudomonas aeruginosa.science.Rep.6, 20190;doi: 10.1038/srep20190 (2016).
Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. Rachadura por corrosão sob tensão do aço inoxidável duplex LDX 2101 em solução de cloreto na presença de thiosulfate.coros.science.80, 205–212 (2014).
Kim, ST, Jang, SH, Lee, IS & Park, YS Efeito do tratamento térmico de solução e nitrogênio no gás de proteção na resistência à corrosão por pites de aço inoxidável super duplex welds.coros.science.53, 1939–1947 (2011).
Shi, X., Avci, R., Geiser, M. & Lewandowski, Z. Um estudo químico comparativo de corrosão microbiana e por pite induzida eletroquimicamente em aço inoxidável 316L.coros.science.45, 2577–2595 (2003).
Luo, H., Dong, CF, Li, XG & Xiao, K. Comportamento eletroquímico do aço inoxidável duplex 2205 em soluções alcalinas de diferentes pH na presença de cloreto.Electrochim.Journal.64, 211–220 (2012).
Pouco, BJ, Lee, JS & Ray, RI O efeito de biofilmes marinhos na corrosão: uma revisão concisa.Electrochim.Journal.54, 2-7 (2008).