Благодарим вас за посещение Nature.com. Используемая вами версия браузера имеет ограниченную поддержку CSS. Для получения наилучших результатов мы рекомендуем вам использовать обновленный браузер (или отключить режим совместимости в Internet Explorer). Тем временем, чтобы обеспечить постоянную поддержку, мы будем отображать сайт без стилей и JavaScript.
Микробная коррозия (МИК) является серьезной проблемой во многих отраслях промышленности, поскольку она может привести к огромным экономическим потерям. Супердуплексная нержавеющая сталь 2707 (2707 HDSS) использовалась в морской среде из-за ее превосходной химической стойкости. Однако ее устойчивость к МИК не была экспериментально продемонстрирована. domonas aeruginosa в среде 2216E наблюдалось положительное изменение коррозионного потенциала и увеличение плотности тока коррозии. Анализ рентгеновской фотоэлектронной спектроскопии (XPS) показал снижение содержания Cr на поверхности образца под биопленкой. Визуальный анализ ямок показал, что биопленка P. aeruginosa дала максимальную глубину ямок 0,69 мкм в течение 14 дней инкубации. Хотя это мало , это указывает на то, что 2707 HDSS не полностью иммунен к MIC биопленок P. aeruginosa.
Дуплексные нержавеющие стали (DSS) широко используются в различных отраслях промышленности благодаря идеальному сочетанию превосходных механических свойств и коррозионной стойкости1,2. Однако локальная точечная коррозия все еще имеет место, что влияет на целостность этой стали3,4.DSS не устойчива к микробной коррозии (MIC)5,6. что даже супердуплексные нержавеющие стали (SDSS) имеют некоторые ограничения с точки зрения коррозионной стойкости. Поэтому в некоторых случаях требуются супердуплексные нержавеющие стали (HDSS) с более высокой коррозионной стойкостью. Это привело к разработке высоколегированных HDSS.
Коррозионная стойкость DSS зависит от соотношения альфа- и гамма-фаз и обедненных Cr, Mo и W областей 8, 9, 10, примыкающих ко второй фазе. HDSS содержит высокое содержание Cr, Mo и N11, поэтому обладает отличной коррозионной стойкостью и высоким значением (45-50) эквивалентного числа сопротивления точечной коррозии (PREN), определяемого массовым % Cr + 3,3 (масс. % Mo + 0,5 масс. % W) + 16 мас.% N12. Его превосходная коррозионная стойкость зависит от сбалансированного состава, содержащего примерно 50% ферритной (α) и 50% аустенитной (γ) фаз. HDSS имеет лучшие механические свойства и более высокую стойкость, чем обычный DSS13.Коррозионные свойства хлоридов. Улучшенная коррозионная стойкость расширяет возможности использования HDSS в более агрессивных хлоридных средах, таких как морские среды.
MIC представляют собой серьезную проблему во многих отраслях промышленности, таких как нефть, газ и водоснабжение. перенос) является фактором, ограничивающим скорость МИК, индуцированной электрогенными микроорганизмами. Zhang et al.18 продемонстрировали, что электронные медиаторы ускоряют перенос электронов между клетками Desulfovibrio sessificans и нержавеющей сталью 304, что приводит к более серьезной атаке MIC. Enning et al.19 и Venzlaff et al.20 показали, что биопленки вызывающих коррозию сульфатредуцирующих бактерий (SRB) могут напрямую поглощать электроны с металлических подложек, что приводит к сильной точечной коррозии.
Известно, что DSS восприимчив к MIC в средах, содержащих SRB, железоредуцирующие бактерии (IRB) и т. д. 21. Эти бактерии вызывают локальные ямки на поверхности DSS под биопленками 22, 23. В отличие от DSS, MIC HDSS24 плохо изучен.
Pseudomonas aeruginosa представляет собой грамотрицательную подвижную бактерию палочковидной формы, которая широко распространена в природе25. Pseudomonas aeruginosa также является основной микробной группой в морской среде, обуславливающей превращение MIC в сталь. Pseudomonas активно участвует в процессах коррозии и признана пионером-колонизатором во время образования биопленки. Mahat et al.28 и Юань и др.29 показано, что Pseudomonas aeruginosa имеет тенденцию увеличивать скорость коррозии мягкой стали и сплавов в водной среде.
Основная цель этой работы состояла в том, чтобы исследовать свойства MIC 2707 HDSS, вызванные морской аэробной бактерией Pseudomonas aeruginosa, с использованием электрохимических методов, методов поверхностного анализа и анализа продуктов коррозии. Для обнаружения химических элементов на корродированной поверхности был проведен анализ методом ЭДС. Кроме того, методом рентгенофотоэлектронной спектроскопии (РФЭС) была определена стабильность пассивации оксидной пленки под воздействием морской среды, содержащей Pseudomonas aeruginosa. Глубина язвы измерялась под конфокальным лазерным сканирующим микроскопом (КЛСМ).
В таблице 1 приведен химический состав 2707 HDSS. В таблице 2 показано, что 2707 HDSS имеет отличные механические свойства с пределом текучести 650 МПа. На рис. 1 показана оптическая микроструктура 2707 HDSS, подвергнутого термообработке на твердый раствор. Удлиненные полосы аустенитной и ферритной фаз без вторичных фаз можно увидеть в микроструктуре, содержащей около 50% аустенитной и 50% ферритной фаз.
На рис. 2а показан потенциал разомкнутой цепи (Eocp) в зависимости от времени экспозиции для 2707 HDSS в абиотической среде 2216E и бульоне P. aeruginosa в течение 14 дней при 37 °C. Он показывает, что самое большое и значимое изменение Eocp происходит в течение первых 24 часов. Значения Eocp в обоих случаях достигли пика на уровне -145 мВ (по сравнению с SCE) около 16 часов, а затем резко упали, достигнув -477 мВ. (по сравнению с SCE) и -236 мВ (по сравнению с SCE) для абиотического образца и P соответственно).Купоны Pseudomonas aeruginosa, соответственно. Через 24 часа значение Eocp 2707 HDSS для P. aeruginosa было относительно стабильным и составляло -228 мВ (по сравнению с SCE), в то время как соответствующее значение для небиологических образцов составляло примерно -442 мВ (по сравнению с SCE). Eocp в присутствии P. aeruginosa было довольно низким.
Электрохимическое исследование 2707 образцов HDSS в абиотической среде и бульоне Pseudomonas aeruginosa при 37 °C:
(а) Eocp как функция времени экспозиции, (b) поляризационные кривые на 14-й день, (c) Rp как функция времени экспозиции и (d) icorr как функция времени экспозиции.
В таблице 3 приведены значения параметров электрохимической коррозии 2707 образцов HDSS, подвергавшихся воздействию абиотической среды и зараженной Pseudomonas aeruginosa среде в течение 14 дней. Касательные анодных и катодных кривых были экстраполированы для получения пересечений, дающих плотность тока коррозии (icorr), коррозионный потенциал (Ecorr) и наклон Тафеля (βα и βc) в соответствии со стандартными методами30,31.
Как показано на рис. 2b, сдвиг кривой P. aeruginosa вверх привел к увеличению Ecorr по сравнению с абиотической кривой. Значение icorr, пропорциональное скорости коррозии, увеличилось до 0,328 мкА см-2 в образце Pseudomonas aeruginosa, что в четыре раза больше, чем у небиологического образца (0,087 мкА см-2).
LPR является классическим неразрушающим электрохимическим методом для быстрого анализа коррозии. Он также использовался для изучения MIC32. На рис. 2c показано сопротивление поляризации (Rp) в зависимости от времени воздействия. Более высокое значение Rp означает меньшую коррозию. В течение первых 24 часов Rp 2707 HDSS достиг максимального значения 1955 кОм см2 для абиотических образцов и 1429 кОм см2 для образцов Pseudomonas aeruginosa. Рисунок 2c также показывает, что значение Rp быстро уменьшилось через один день, а затем оставалось относительно неизменным в течение следующих 13 дней. Значение Rp образца Pseudomonas aeruginosa составляет около 40 кОм см2, что намного ниже значения 450 кОм см2 небиологического образца.
Значение icorr пропорционально скорости однородной коррозии. Его значение можно рассчитать по следующему уравнению Штерна-Гири:
Вслед за Цзоу и соавт.33, типичное значение тафелевского наклона B в этой работе было принято равным 26 мВ/дек. На рис. 2d показано, что icorr небиологического образца 2707 оставался относительно стабильным, в то время как образец P. aeruginosa сильно колебался после первых 24 часов. Значения icorr образцов P. aeruginosa были на порядок выше, чем у небиологических контролей. Эта тенденция согласуется с результатами по устойчивости к поляризации.
EIS - еще один неразрушающий метод, используемый для характеристики электрохимических реакций на корродированных поверхностях. Спектры импеданса и расчетные значения емкости образцов, подвергшихся воздействию абиотической среды и раствора Pseudomonas aeruginosa, сопротивление Rb пассивной пленки / биопленки, сформированной на поверхности образца, сопротивление переносу заряда Rct, емкость электрического двойного слоя Cdl (EDL) и параметры элемента постоянной фазы QCPE (CPE). Эти параметры были дополнительно проанализированы путем подгонки данных. используя модель эквивалентной схемы (EEC).
На рисунке 3 показаны типичные графики Найквиста (а и b) и графики Боде (a' и b') для 2707 образцов HDSS в абиотической среде и бульоне P. aeruginosa для разного времени инкубации. Диаметр кольца Найквиста уменьшается в присутствии Pseudomonas aeruginosa. График Боде (рис. 3b') показывает увеличение величины полного импеданса. Может быть предоставлена ​​информация о постоянной времени релаксации. по фазовым максимумам. На рисунке 4 показаны физические структуры на основе монослоя (а) и бислоя (б) и соответствующие им EEC. CPE вводится в модель EEC. Его проводимость и импеданс выражаются следующим образом:
Две физические модели и соответствующие эквивалентные схемы для подбора спектра импеданса образца 2707 HDSS:
где Y0 — величина CPE, j — мнимое число или (-1)1/2, ω — угловая частота, n — индекс мощности CPE, меньший единицы35. Инверсия сопротивления переноса заряда (т.е. 1/Rct) соответствует скорости коррозии. Чем меньше Rct, тем выше скорость коррозии27. , что намного меньше, чем 489 кОм см2 небиологических образцов (таблица 4).
Изображения CLSM и изображения SEM на рисунке 5 ясно показывают, что покрытие биопленкой на поверхности образца 2707 HDSS через 7 дней является плотным. Однако через 14 дней покрытие биопленкой было редким и появилось некоторое количество мертвых клеток. В таблице 5 показана толщина биопленки на образцах 2707 HDSS после воздействия P. aeruginosa в течение 7 и 14 дней. 7 сут до 18,9 мкм через 14 сут. Средняя толщина биопленки также подтвердила эту тенденцию. Она уменьшилась с 22,2 ± 0,7 мкм через 7 сут до 17,8 ± 1,0 мкм через 14 сут.
(a) 3-D изображение CLSM через 7 дней, (b) 3-D изображение CLSM через 14 дней, (c) изображение SEM через 7 дней и (d) изображение SEM через 14 дней.
ЭДС выявил химические элементы в биопленках и продуктах коррозии на образцах, подвергшихся воздействию P. aeruginosa в течение 14 дней. На рис. 6 показано, что содержание C, N, O и P в биопленках и продуктах коррозии намного выше, чем в голых металлах, поскольку эти элементы связаны с биопленками и их метаболитами. Микробам нужны только следовые количества хрома и железа. потерянные элементы из-за коррозии.
Через 14 дней в среде 2216E наблюдались ямки с P. aeruginosa и без них. До инкубации поверхность образцов была гладкой и без дефектов (рис. 7а). глубина ямки 0,02 мкм). Максимальная глубина ямки, вызванная Pseudomonas aeruginosa, составила 0,52 мкм через 7 дней и 0,69 мкм через 14 дней, исходя из средней максимальной глубины ямки из 3 образцов (для каждого образца было выбрано 10 максимальных значений глубины ямки) и достигла 0,42 ± 0,12 мкм и 0,52 ± 0,15 мкм соответственно (табл. 5). ).Эти значения глубины ямы небольшие, но важные.
(а) до воздействия, (б) 14 дней в абиотической среде и (в) 14 дней в бульоне Pseudomonas aeruginosa.
На рисунке 8 показаны XPS-спектры различных поверхностей образцов, а химические составы, проанализированные для каждой поверхности, обобщены в таблице 6. В таблице 6 атомные процентные содержания Fe и Cr в присутствии P. aeruginosa (образцы A и B) были намного ниже, чем в небиологических контрольных образцах (образцы C и D). 574,4, 576,6, 578,3 и 586,8 эВ, которые можно отнести к Cr, Cr2O3, CrO3 и Cr(OH)3 соответственно (рис. 9а и б). Для небиологических образцов спектр остовного уровня Cr 2p содержит два основных пика для Cr (573,80 эВ для BE) и Cr2O3 (575,90 эВ для BE). ) на рис. 9c и d соответственно. Наиболее ярким различием между абиотическими образцами и образцами P. aeruginosa было присутствие Cr6+ и более высокая относительная доля Cr(OH)3 (BE 586,8 эВ) под биопленкой.
Широкие XPS-спектры поверхности образца 2707 HDSS в двух средах составляют 7 и 14 дней соответственно.
(a) 7 дней воздействия P. aeruginosa, (b) 14 дней воздействия P. aeruginosa, (c) 7 дней в абиотической среде и (d) 14 дней в абиотической среде.
HDSS демонстрирует высокий уровень коррозионной стойкости в большинстве сред. Kim et al.2 сообщается, что UNS S32707 HDSS был определен как высоколегированный DSS с PREN более 45. Значение PREN образца 2707 HDSS в этой работе составляло 49. Это связано с высоким содержанием в нем хрома и высоким уровнем молибдена и никеля, которые полезны в кислых средах и средах с высоким содержанием хлоридов. Кроме того, хорошо сбалансированный состав и бездефектная микроструктура полезны для структурной стабильности и коррозионной стойкости. , экспериментальные данные в этой работе позволяют предположить, что 2707 HDSS не полностью иммунен к MIC биопленок P. aeruginosa.
Электрохимические результаты показали, что скорость коррозии 2707 HDSS в бульоне P. aeruginosa значительно увеличилась через 14 дней по сравнению с небиологической средой. На рис. 2а снижение Eocp наблюдалось как в абиотической среде, так и в бульоне P. aeruginosa в течение первых 24 часов. чем у небиологического Eocp. Есть основания полагать, что это различие связано с образованием биопленки P. aeruginosa. На рис. 2г в присутствии P. aeruginosa значение icorr 2707 HDSS достигло 0,627 мкА см-2, что на порядок выше, чем у абиотического контроля (0,063 мкА см-2), что согласуется со значением Rct, измеренным с помощью EIS. Первые несколько дней значения импеданса в бульоне P. aeruginosa увеличивались из-за прикрепления клеток P. aeruginosa и образования биопленок. Однако, когда биопленка полностью покрывает поверхность образца, импеданс снижается. Защитный слой подвергается атаке в первую очередь из-за образования биопленок и метаболитов биопленки. коррозионная стойкость небиологического контроля была намного выше, чем соответствующее значение образцов, подвергшихся воздействию бульона P. aeruginosa. Кроме того, для абиотических образцов значение Rct 2707 HDSS достигло 489 кОм см2 на 14-й день, что в 15 раз превышает значение Rct (32 кОм см2) в присутствии P. aeruginosa. Таким образом, 2707 HDSS обладает отличной коррозионной стойкостью в стерильной среде, но не устойчивы к атаке МИК биопленками P. aeruginosa.
Эти результаты также можно наблюдать на поляризационных кривых на рис. 2б. Анодное разветвление объясняется образованием биопленки Pseudomonas aeruginosa и реакциями окисления металлов. В то же время катодной реакцией является восстановление кислорода. Присутствие P. aeruginosa значительно увеличивает плотность тока коррозии, примерно на порядок выше, чем абиотический контроль. и др.29 обнаружили, что плотность тока коррозии сплава Cu-Ni 70/30 увеличилась под воздействием биопленки P. aeruginosa. Это может быть связано с биокатализом восстановления кислорода биопленками Pseudomonas aeruginosa. ВПК в этой работе.
Дикинсон и др.38 предположили, что на скорость химических и электрохимических реакций могут напрямую влиять метаболическая активность сидячих бактерий на поверхности образца и природа продуктов коррозии. Как показано на рисунке 5 и в таблице 5, количество клеток и толщина биопленки уменьшились через 14 дней. Это можно разумно объяснить тем, что через 14 дней большинство сидячих клеток на поверхности 2707 HDSS погибло из-за истощения питательных веществ в среде 2216E или выделения токсичного металла. ионы из матрицы 2707 HDSS. Это ограничение периодических экспериментов.
В этой работе биопленка P. aeruginosa способствовала локальному истощению Cr и Fe под биопленкой на поверхности 2707 HDSS (рис. 6). В таблице 6 показано снижение Fe и Cr в образце D по сравнению с образцом C, что указывает на то, что растворенные Fe и Cr, вызванные биопленкой P. aeruginosa, сохранялись в течение первых 7 дней. Среда 2216E используется для имитации морской среды. Cl-, что сравнимо с тем, что содержится в природной морской воде. Присутствие 17700 ppm Cl- было основной причиной снижения Cr в 7- и 14-дневных абиотических образцах, проанализированных с помощью XPS. По сравнению с образцами P. aeruginosa растворение Cr в абиотических образцах было намного меньше из-за сильной устойчивости 2707 HDSS к Cl- в абиотических средах. На рис. 9 показано присутствие Cr6+ в пассивирующей пленке. может участвовать в удалении хрома со стальных поверхностей биопленками P. aeruginosa, как предположили Чен и Клейтон.
Из-за бактериального роста значения pH среды до и после культивирования составляли 7,4 и 8,2 соответственно. Таким образом, ниже биопленки P. aeruginosa коррозия органическими кислотами вряд ли будет способствовать этой работе из-за относительно высокого pH в объеме среды. абация была обусловлена ​​метаболической активностью P. aeruginosa и было обнаружено, что она оказывает такое же влияние на рН в отсутствие тест-полосок.
Как показано на рис. 7, максимальная глубина ямки, вызванная биопленкой P. aeruginosa, составляла 0,69 мкм, что намного больше, чем у абиотической среды (0,02 мкм). Это согласуется с электрохимическими данными, описанными выше. лучшая устойчивость к МПК по сравнению с 2205 DSS. Это не должно вызывать удивления, поскольку 2707 HDSS имеет более высокое содержание хрома, обеспечивая более продолжительную пассивацию благодаря сбалансированной фазовой структуре без вредных вторичных осадков, что затрудняет депассивацию P. aeruginosa и затмение точек начала.
В заключение следует отметить, что на поверхности 2707 HDSS в бульоне P. aeruginosa была обнаружена точечная точечная коррозия по сравнению с незначительной точечной коррозией в абиотической среде. Эта работа показывает, что 2707 HDSS имеет лучшую устойчивость к MIC, чем 2205 DSS, но она не полностью невосприимчива к MIC из-за биопленки P. aeruginosa. Эти результаты помогают в выборе подходящих нержавеющих сталей и расчетном сроке службы для морской среды.
Купон для 2707 HDSS предоставлен Школой металлургии Северо-восточного университета (NEU) в Шэньяне, Китай. Элементный состав 2707 HDSS показан в таблице 1, которая была проанализирована Отделом анализа и испытаний материалов NEU. Все образцы были обработаны на твердый раствор при 1180 °C в течение 1 часа. 000 наждачной бумагой из карбида кремния и дополнительно отполированы суспензией порошка Al2O3 размером 0,05 мкм. Боковые стороны и дно защищены инертной краской. После сушки образцы промывали стерильной деионизированной водой и стерилизовали 75% (об./об.) этанолом в течение 0,5 ч. Затем их сушили на воздухе в ультрафиолетовом (УФ) свете в течение 0,5 ч перед использованием.
Морской штамм Pseudomonas aeruginosa MCCC 1A00099 был приобретен в Xiamen Marine Culture Collection Center (MCCC), Китай. Pseudomonas aeruginosa выращивали в аэробных условиях при 37°C в колбах на 250 мл и электрохимических стеклянных ячейках на 500 мл с использованием жидкой среды Marine 2216E (Qingdao Hope Biotechnology Co., Ltd., Циндао, Китай). Среда (г/л): 19.45 NaCl, 5.98 MgCl2, 3.24 Na2SO4, 1.8 CaCl2, 0.55 KCl, 0.16 Na2CO3, 0.08 KBr, 0.034 SrCl2, 0.08 SrBr2, 0.022 H3BO3, 0.004 NaSiO3, 0016 NH3, 0016 NH3 , 0016 NaH2PO4 , 5,0 пептона, 1,0 дрожжевого экстракта и 0,1 цитрата железа. Автоклавировать при 121°C в течение 20 минут перед инокуляцией. Подсчитать сидячие и планктонные клетки с помощью гемоцитометра под световым микроскопом при 400-кратном увеличении. мл.
Электрохимические испытания проводили в классической трехэлектродной стеклянной кювете с объемом среды 500 мл. Платиновый лист и насыщенный каломельный электрод (НКЭ) подключались к реактору через капилляры Луггина, заполненные солевыми мостиками, и служили противоэлектродами и электродами сравнения соответственно. 2216E и поддерживали при постоянной температуре инкубации (37 °C) на водяной бане. Данные OCP, LPR, EIS и потенциальной динамической поляризации измеряли с помощью потенциостата Autolab (Reference 600TM, Gamry Instruments, Inc., США). Тесты LPR регистрировали при скорости сканирования 0,125 мВ с-1 в диапазоне -5 и 5 мВ с Eocp и частотой дискретизации 1 Гц. с синусоидой в диапазоне частот от 0,01 до 10 000 Гц с использованием приложенного напряжения 5 мВ при устойчивом состоянии Eocp. Перед разверткой потенциала электроды находились в режиме разомкнутой цепи до тех пор, пока не было достигнуто стабильное значение потенциала свободной коррозии. Затем измерялись поляризационные кривые от -0,2 до 1,5 В в зависимости от Eocp со скоростью сканирования 0,166 мВ/с. Каждое испытание повторялось 3 раза с P. aeruginosa и без него. .
Образцы для металлографического анализа механически полировали влажной SiC-бумагой с зернистостью 2000, а затем дополнительно полировали 0,05 мкм порошковой суспензией Al2O3 для оптического наблюдения. Металлографический анализ проводили с использованием оптического микроскопа. Образцы травили 10 мас.% раствором гидроксида калия 43.
После инкубации образцы промывали 3 раза раствором фосфатно-солевого буфера (PBS) (pH 7,4 ± 0,2), а затем фиксировали 2,5% (об./об.) глутаральдегидом в течение 10 часов для фиксации биопленок. Наконец, на поверхность образца напыляют золотую пленку, чтобы обеспечить проводимость для наблюдения с помощью СЭМ. СЭМ-изображения были сфокусированы на пятнах с наибольшим количеством сидячих клеток P. aeruginosa на поверхности каждого образца. Выполните анализ ЭДС для обнаружения химических элементов. Сначала образец был очищен в соответствии с китайским национальным стандартом (CNS) GB/T4334.4-2000 для удаления продуктов коррозии и биопленки с поверхности образца.
Рентгенофотоэлектронный спектроскопический анализ (XPS, система анализа поверхности ESCALAB250, Thermo VG, США) проводили с использованием источника монохроматического рентгеновского излучения (Kα-линия алюминия при энергии 1500 эВ и мощности 150 Вт) в широком диапазоне энергий связи 0 в стандартных условиях –1350 эВ. Спектры высокого разрешения регистрировали при энергии пропускания 50 эВ и шаге 0,2 эВ.
Инкубированные образцы удаляли и осторожно промывали PBS (pH 7,4 ± 0,2) в течение 15 с45. Для наблюдения за бактериальной жизнеспособностью биопленок на образцах биопленки окрашивали с использованием набора LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability Kit (Invitrogen, Eugene, OR, USA). Набор включает два флуоресцентных красителя: зеленый флуоресцентный краситель SYTO-9 и красный флуоресцентный пропид. краситель йодид (PI). В CLSM точки с флуоресцентным зеленым и красным цветом представляют живые и мертвые клетки соответственно. Для окрашивания 1 мл смеси, содержащей 3 мкл SYTO-9 и 3 мкл раствора PI, инкубировали в течение 20 минут при комнатной температуре (23 oC) в темноте. Аппарат CLSM (C2 Plus, Nikon, Япония). Толщину биопленки измеряли в режиме 3-D сканирования.
Как цитировать эту статью: Li, H. et al. Микробная коррозия супердуплексной нержавеющей стали 2707 морской биопленкой Pseudomonas aeruginosa.6, 20190;doi: 10.1038/srep20190 (2016).
Zanotto, F., Grassi, V., Balbo, A., Monticelli, C. & Zucchi, F. Коррозионное растрескивание под напряжением дуплексной нержавеющей стали LDX 2101 в растворе хлорида в присутствии тиосульфата.coros.science.80, 205–212 (2014).
Ким, С.Т., Джанг, С.Х., Ли, И.С. и Парк, Ю.С. Влияние термообработки на твердый раствор и азота в защитном газе на стойкость к точечной коррозии сварных швов из супердуплексной нержавеющей стали.coros.science.53, 1939–1947 (2011).
Ши, X., Авчи, Р., Гейзер, М. и Левандовски, З. Сравнительное химическое исследование микробиологической и электрохимически вызванной точечной коррозии в нержавеющей стали 316L. coros.science.45, 2577–2595 (2003).
Луо Х., Донг К.Ф., Ли Х.Г. и Сяо К. Электрохимическое поведение дуплексной нержавеющей стали 2205 в щелочных растворах с различным рН в присутствии хлорида. Электрохим. Журнал. 64, 211–220 (2012).
Литтл, Б.Дж., Ли, Дж.С. и Рэй, Р.И. Влияние морских биопленок на коррозию: краткий обзор. Электрохим. Журнал. 54, 2-7 (2008).